การตรวจการติดเชื้อราในเล็บด้วยวิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์ การเพาะเชื้อ และการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอ

Main Article Content

กัญญานัฐ ครองบุญ
ถวัลย์ ฤกษ์งาม
เอนก ภู่ทอง
จีระภา ดำรงโภคภัณฑ์
สมคิด อุบลวัฒน์
จิรัฐฐิกาญจน์ สุรินทร์
ธีระนา บุนนาค
ประไพพิศ เชาวลิต

บทคัดย่อ

บทคัดย่อ


โรคเชื้อราที่เล็บเป็นโรคที่มีอาการไม่รุนแรง แต่ส่งผลต่อคุณภาพชีวิตของผู้ป่วยได้ การตรวจวินิจฉัยที่ถูกต้องมีความสำคัญต่อความสำเร็จในการรักษาโรคดังกล่าว แต่การตรวจทางห้องปฏิบัติการด้วยวิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์และการเพาะเชื้อจากขุยเล็บที่ใช้อยู่ในปัจจุบันยังมีข้อจำกัดหลายประการ การศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินการตรวจการติดเชื้อราในเล็บด้วยวิธีการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอ โดยตรวจหาเชื้อราในตัวอย่างเล็บเท้า จำนวน 168 ตัวอย่าง ด้วยการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอและเปรียบเทียบผลการทดสอบกับวิธีดั้งเดิม ผลการศึกษาพบว่าวิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์ การเพาะเชื้อ และการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอมีอัตราผลบวกเท่ากับ 32.1, 24.4 และ 32.7 % ตามลำดับ การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอมีผลตรวจที่สอดคล้องกับการเพาะเชื้อที่เป็นวิธีมาตรฐานเท่ากับ 75.0 % โดยมีความไว ความจำเพาะ ค่าการทำนายผลบวก และค่าการทำนายผลลบเท่ากับ 65.9, 78.0, 49.1 และ 87.6 % ตามลำดับ เมื่อใช้การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอรวมกับการเพาะเชื้อพบว่าให้อัตราผลบวกเท่ากับ 41.1 % ผลการศึกษานี้สนับสนุนการใช้การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอร่วมกับวิธีดั้งเดิม เพื่อให้การตรวจวิเคราะห์ราในตัวอย่างเล็บมีความถูกต้อง 


คำสำคัญ : โรคเชื้อราที่เล็บ; วิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์; การเพาะเชื้อ; การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอ

Article Details

ประเภทบทความ
Medical Sciences
ประวัติผู้แต่ง

กัญญานัฐ ครองบุญ

ภาควิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

ถวัลย์ ฤกษ์งาม

ภาควิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

เอนก ภู่ทอง

ภาควิชาเทคนิคการแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

จีระภา ดำรงโภคภัณฑ์

สถาบันโรคผิวหนัง กรมการแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข ถนนราชวิถี แขวงทุ่งพญาไท เขตราชเทวี กรุงเทพมหานคร 10400

สมคิด อุบลวัฒน์

สถาบันโรคผิวหนัง กรมการแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข ถนนราชวิถี แขวงทุ่งพญาไท เขตราชเทวี กรุงเทพมหานคร 10400

จิรัฐฐิกาญจน์ สุรินทร์

สถาบันโรคผิวหนัง กรมการแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข ถนนราชวิถี แขวงทุ่งพญาไท เขตราชเทวี กรุงเทพมหานคร 10400

ธีระนา บุนนาค

สถาบันโรคผิวหนัง กรมการแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข ถนนราชวิถี แขวงทุ่งพญาไท เขตราชเทวี กรุงเทพมหานคร 10400

ประไพพิศ เชาวลิต

สถาบันโรคผิวหนัง กรมการแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข ถนนราชวิถี แขวงทุ่งพญาไท เขตราชเทวี กรุงเทพมหานคร 10400

เอกสารอ้างอิง

[1] Welsh, O., Vera-Cabrera, L. and Welsh, E., 2010, Onychomycosis, Clin. Dermatol. 28: 151-159.
[2] Szepietowski, J.C., Reich, A., Pacan, P., Garlowska, E. and Baran, E., 2007, On behalf of the Polish Onychomycosis Study Group: Evaluation of quality of life in patients with toenail onychomycosis by Polish version of an international onychomycosis-specific questionnaire, J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 21: 491-496.
[3] Chacon, A., Franca, K., Fernandez, A. and Nouri, K., 2013, Psychosocial impact of onychomycosis: a review, Int. J. Dermatol. 52: 1300-13007.
[4] Szepietowski, J.C., Reich, A., Garlowska, E., Kulig, M. and Baran, E., 2006, Factors influencing coexistence of toenail onychomycosis with tineapedis and other dermatomycoses: A survey of 2761 patients, Arch. Dermatol. 142: 1279-1284.
[5] Ghannoum, M.A., Hajjeh, R.A., Scher, R., Konnikov, N., Gupta, A.K. and Summer bell, R., 2000, A large-scale North American study of fungal isolates from nails: the frequency of onychomycosis, fungal distribution, and antifungal susceptibility patterns, J. Am. Acad. Dermatol. 43: 641-648.
[6] Gupta, A.K., Drummond-Main, C., Cooper, EA., Brintnell, W., Piraccini, B.M. and Tosti, A., 2012, Systematic review of nondermatophyte mold onychomycosis: Diagnosis, clinical types, epidemiology, and treatment, J. Am. Acad. Dermatol. 66: 494-502.
[7] Ungpakorn, R., Lohaprathan, S. and Reangchainam, S., 2004, Prevalence of foot diseases in outpatients attending the Institute of Dermatology Bangkok Thailand, Clin. Exp. Dermatol. 29: 87-90.
[8] Cribier, B.J. and Paul, C., 2001, Long-term efficacy of antifungals in toenail onychomycosis: A critical review, Br. J. Dermatol. 145: 446-452.
[9] Bueno, J.G., Martinez, C., Zapata, B., Sanclemente, G., Gallego, M. and Mesa, A.C., 2010, In vitro activity of fluconazole, itraconazole, voriconazole and terbinafine against fungi causing onychomycosis, Clin. Exp. Dermatol. 35: 658-663.
[10] Weinberg, J.M., Koestenblatt, E.K., Tutrone, W.D., Tishler, H.R. and Najarian, L., 2003, Comparison of diagnostic methods in the evaluation of onychomycosis, J. Am. Acad. Dermatol. 49: 193-197.
[11] Panasiti, V., Borroni, R.G., Devirgiliis, V., Rossi, M., Fabbrizio, L. and Masciangelo, R., 2006, Comparison of diagnostic methods in the diagnosis of dermatomycoses and onychomycoses, Mycoses 49: 26-29.
[12] Mehregan, D.C. and Gee, S.L., 1999, The cost effectiveness of testing for onychomycosis versus empiric treatment of onychodystrophies with oral antifungal agents, Cutis 64: 407-410.
[13] Lau, A., Chen, S., Sorrell, T., Carter, D., Malik, R., Martin, P. and Halliday, C., 2007, Development and clinical application of a panfungal PCR assay to detect and identify fungal DNA in tissue specimens, J. Clin. Microbiol. 45: 380-385.
[14] Ciardo, D.E., Schar, G., Altwegg, M. and Bottger, E.C., Bosshard P.P., 2007, Identification of moulds in the diagnostic laboratory – an algorithm implementing molecular and phenotypic methods, Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 59: 49-60.
[15] Mcginnis, M.R., 1980, Laboratory Handbook of Medical Mycology, Academic Press, New York, 661 p.
[16] Hendolin, P.H., Lars, P., Koukila-Kahkola, P., Anttila V.J., Malmberg, H., Richardson, M., and Ylikoski, J., 2000, Panfungal PCR and multiplex liquid hybridization for detection of fungi in tissue specimens, J. Clin. Microbiol. 38: 4186-4192.
[17] Chen, Y.C., Eisner, J. D., Kattar, M.M., Rassoulian-Barrett, S.L., Lafe, K., Bui, U., Limaye, A.P., and Cookson, B.T., 2001, Polymorphic internal transcribed spacer region 1 DNA sequences identify medically important yeasts, J. Clin. Microbiol. 39: 4042-4051
[18] Leaw, S.N., Chang, H.C., Sun, H.F., Barton, R., Bouchara, J.P. and Chang, T.C., 2006. Identification of medically important yeast species by sequence analysis of the internal transcribed spacer regions, J. Clin. Microbiol. 44: 693-699.
[19] Sontakke, S., Cadenas, M.B., Maggi, R.G., Diniz, P.P. and Breitschwerdt, E.B., 2009, Use of broad range 16S rDNA PCR in clinical microbiology, J. Microbiol. Methods. 76: 217-225.
[20] Paugam, A., L'Ollivier, C., Viguié, C., Anaya, L., Mary, C., de Ponfilly, G. and Ranque, S., 2013, Comparison of real-time PCR with conventional methods to detect dermatophytes in samples from patients with suspected dermatophytosis, J. Microbiol. Methods 95: 218-222.
[21] Winter, I., Uhrlaß, S., Krüger, C., Herrmann, J., Bezold, G., Winter, A., Barth, S., Simon, J.C., Gräser, Y. and Nenoff, P., 2013, Molecular biological detection of dermatophytes in clinical samples when onychomycosis or tineapedis is suspected: A prospective study comparing conventional dermatomycological diagnostics and polymerase chain reaction, Hautarzt 64: 283-289.