การตรวจการติดเชื้อราในเล็บด้วยวิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์ การเพาะเชื้อ และการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอ
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทคัดย่อ
โรคเชื้อราที่เล็บเป็นโรคที่มีอาการไม่รุนแรง แต่ส่งผลต่อคุณภาพชีวิตของผู้ป่วยได้ การตรวจวินิจฉัยที่ถูกต้องมีความสำคัญต่อความสำเร็จในการรักษาโรคดังกล่าว แต่การตรวจทางห้องปฏิบัติการด้วยวิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์และการเพาะเชื้อจากขุยเล็บที่ใช้อยู่ในปัจจุบันยังมีข้อจำกัดหลายประการ การศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินการตรวจการติดเชื้อราในเล็บด้วยวิธีการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอ โดยตรวจหาเชื้อราในตัวอย่างเล็บเท้า จำนวน 168 ตัวอย่าง ด้วยการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอและเปรียบเทียบผลการทดสอบกับวิธีดั้งเดิม ผลการศึกษาพบว่าวิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์ การเพาะเชื้อ และการวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอมีอัตราผลบวกเท่ากับ 32.1, 24.4 และ 32.7 % ตามลำดับ การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอมีผลตรวจที่สอดคล้องกับการเพาะเชื้อที่เป็นวิธีมาตรฐานเท่ากับ 75.0 % โดยมีความไว ความจำเพาะ ค่าการทำนายผลบวก และค่าการทำนายผลลบเท่ากับ 65.9, 78.0, 49.1 และ 87.6 % ตามลำดับ เมื่อใช้การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอรวมกับการเพาะเชื้อพบว่าให้อัตราผลบวกเท่ากับ 41.1 % ผลการศึกษานี้สนับสนุนการใช้การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอร่วมกับวิธีดั้งเดิม เพื่อให้การตรวจวิเคราะห์ราในตัวอย่างเล็บมีความถูกต้อง
คำสำคัญ : โรคเชื้อราที่เล็บ; วิธีโปตัสเซียมไฮดรอกไซด์; การเพาะเชื้อ; การวิเคราะห์ลำดับเบสไรโบโซมอลดีเอ็นเอ
Article Details
เอกสารอ้างอิง
[2] Szepietowski, J.C., Reich, A., Pacan, P., Garlowska, E. and Baran, E., 2007, On behalf of the Polish Onychomycosis Study Group: Evaluation of quality of life in patients with toenail onychomycosis by Polish version of an international onychomycosis-specific questionnaire, J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 21: 491-496.
[3] Chacon, A., Franca, K., Fernandez, A. and Nouri, K., 2013, Psychosocial impact of onychomycosis: a review, Int. J. Dermatol. 52: 1300-13007.
[4] Szepietowski, J.C., Reich, A., Garlowska, E., Kulig, M. and Baran, E., 2006, Factors influencing coexistence of toenail onychomycosis with tineapedis and other dermatomycoses: A survey of 2761 patients, Arch. Dermatol. 142: 1279-1284.
[5] Ghannoum, M.A., Hajjeh, R.A., Scher, R., Konnikov, N., Gupta, A.K. and Summer bell, R., 2000, A large-scale North American study of fungal isolates from nails: the frequency of onychomycosis, fungal distribution, and antifungal susceptibility patterns, J. Am. Acad. Dermatol. 43: 641-648.
[6] Gupta, A.K., Drummond-Main, C., Cooper, EA., Brintnell, W., Piraccini, B.M. and Tosti, A., 2012, Systematic review of nondermatophyte mold onychomycosis: Diagnosis, clinical types, epidemiology, and treatment, J. Am. Acad. Dermatol. 66: 494-502.
[7] Ungpakorn, R., Lohaprathan, S. and Reangchainam, S., 2004, Prevalence of foot diseases in outpatients attending the Institute of Dermatology Bangkok Thailand, Clin. Exp. Dermatol. 29: 87-90.
[8] Cribier, B.J. and Paul, C., 2001, Long-term efficacy of antifungals in toenail onychomycosis: A critical review, Br. J. Dermatol. 145: 446-452.
[9] Bueno, J.G., Martinez, C., Zapata, B., Sanclemente, G., Gallego, M. and Mesa, A.C., 2010, In vitro activity of fluconazole, itraconazole, voriconazole and terbinafine against fungi causing onychomycosis, Clin. Exp. Dermatol. 35: 658-663.
[10] Weinberg, J.M., Koestenblatt, E.K., Tutrone, W.D., Tishler, H.R. and Najarian, L., 2003, Comparison of diagnostic methods in the evaluation of onychomycosis, J. Am. Acad. Dermatol. 49: 193-197.
[11] Panasiti, V., Borroni, R.G., Devirgiliis, V., Rossi, M., Fabbrizio, L. and Masciangelo, R., 2006, Comparison of diagnostic methods in the diagnosis of dermatomycoses and onychomycoses, Mycoses 49: 26-29.
[12] Mehregan, D.C. and Gee, S.L., 1999, The cost effectiveness of testing for onychomycosis versus empiric treatment of onychodystrophies with oral antifungal agents, Cutis 64: 407-410.
[13] Lau, A., Chen, S., Sorrell, T., Carter, D., Malik, R., Martin, P. and Halliday, C., 2007, Development and clinical application of a panfungal PCR assay to detect and identify fungal DNA in tissue specimens, J. Clin. Microbiol. 45: 380-385.
[14] Ciardo, D.E., Schar, G., Altwegg, M. and Bottger, E.C., Bosshard P.P., 2007, Identification of moulds in the diagnostic laboratory – an algorithm implementing molecular and phenotypic methods, Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 59: 49-60.
[15] Mcginnis, M.R., 1980, Laboratory Handbook of Medical Mycology, Academic Press, New York, 661 p.
[16] Hendolin, P.H., Lars, P., Koukila-Kahkola, P., Anttila V.J., Malmberg, H., Richardson, M., and Ylikoski, J., 2000, Panfungal PCR and multiplex liquid hybridization for detection of fungi in tissue specimens, J. Clin. Microbiol. 38: 4186-4192.
[17] Chen, Y.C., Eisner, J. D., Kattar, M.M., Rassoulian-Barrett, S.L., Lafe, K., Bui, U., Limaye, A.P., and Cookson, B.T., 2001, Polymorphic internal transcribed spacer region 1 DNA sequences identify medically important yeasts, J. Clin. Microbiol. 39: 4042-4051
[18] Leaw, S.N., Chang, H.C., Sun, H.F., Barton, R., Bouchara, J.P. and Chang, T.C., 2006. Identification of medically important yeast species by sequence analysis of the internal transcribed spacer regions, J. Clin. Microbiol. 44: 693-699.
[19] Sontakke, S., Cadenas, M.B., Maggi, R.G., Diniz, P.P. and Breitschwerdt, E.B., 2009, Use of broad range 16S rDNA PCR in clinical microbiology, J. Microbiol. Methods. 76: 217-225.
[20] Paugam, A., L'Ollivier, C., Viguié, C., Anaya, L., Mary, C., de Ponfilly, G. and Ranque, S., 2013, Comparison of real-time PCR with conventional methods to detect dermatophytes in samples from patients with suspected dermatophytosis, J. Microbiol. Methods 95: 218-222.
[21] Winter, I., Uhrlaß, S., Krüger, C., Herrmann, J., Bezold, G., Winter, A., Barth, S., Simon, J.C., Gräser, Y. and Nenoff, P., 2013, Molecular biological detection of dermatophytes in clinical samples when onychomycosis or tineapedis is suspected: A prospective study comparing conventional dermatomycological diagnostics and polymerase chain reaction, Hautarzt 64: 283-289.