สมบัติการต้านอนุมูลอิสระและต้านแบคทีเรียก่อโรคในอาหารจากไมซีเลียมและอาหารเลี้ยงเห็ดป่า
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาสมบัติการต้านอนุมูลอิสระและการยับยั้งแบคทีเรียก่อโรคในอาหารของน้ำเลี้ยงเส้นใยเห็ดป่า และสารสกัดที่ได้จากเส้นใยและน้ำเลี้ยงเส้นใยเห็ดป่า จำนวน 5 สายพันธุ์ ได้แก่ เห็ดระโงกขาว (Amanita princeps Corner & Bas.) เห็ดระโงกเหลือง [A. hemibapha (Berk. et Br.) Sacc. subsp. javanica Corner et Bas.] เห็ดขมิ้นเล็ก (Cantharellus minor Peck.) เห็ดขมิ้นใหญ่ [Craterellus oderatus (Schw.) Fr.] และเห็ดบด (Lentinus polychrous Lev.) การศึกษานี้วัดสารต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH ปริมาณสารประกอบฟีนอลทั้งหมด เบต้าแคโรทีน ไลโคปีน และวัดการยับยั้งการเจริญของแบคทีเรียก่อโรคในอาหาร ผลการศึกษาพบว่าสารสกัดเส้นใยเห็ดบดมีค่าการต้านอนุมูลอิสระสูงที่สุดมี IC50 เท่ากับ 81.23, 90.92 และ 95.18 เปอร์เซ็นต์ที่ความเข้มข้น 15, 25 และ 50 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ ซึ่งมีค่าสูงกว่า vitamin C ที่มีค่า IC50 เท่ากับ 34.09 เปอร์เซ็นต์ โดยสารสกัดน้ำเลี้ยงที่สกัดด้วยเอทานอลมีค่าการยับยั้งสารอนุมูลอิสระที่ต่ำกว่า แต่ทั้งในสารสกัดจากเส้นใยและน้ำเลี้ยงเส้นใยมีเปอร์เซ็นต์การยับยั้งสารอนุมูลอิสระได้สูงในเห็ดทั้ง 5 สายพันธุ์ ผลการศึกษาปริมาณสารประกอบฟีนอลทั้งหมดมากที่สุดของสารสกัดน้ำเลี้ยงเส้นใย คือ เห็ดระโงกขาวในระดับความเข้มข้นที่ 25 และ 50 mg/mL คือ เห็ดบดเท่ากับ 54.25 และ 78.25 mg GAE/g ตามลำดับ ส่วนสมบัติในการยับยั้งแบคทีเรียก่อโรคในสารสกัดน้ำเลี้ยงเส้นใยสกัดไม่สร้างบริเวณโซนใสต่อแบคทีเรีย E. coli ATCC 8739 สารสกัดน้ำเลี้ยงเส้นใยสกัดเห็ดขมิ้นใหญ่มีการสร้างบริเวณโซนใสมากที่สุด คือ 11±0.15 มิลลิเมตร และสารสกัดน้ำเลี้ยงเส้นใยสกัดเห็ดบดมีการสร้างบริเวณโซนใสมากที่สุด คือ 8.3±0.17 มิลลิเมตรในการยับยั้งแบคทีเรีย S. aureus ATCC 6538 ในส่วนของน้ำเลี้ยงเส้นใยเห็ดบดมีการสร้างบริเวณโซนใสมากที่สุด คือ 18±0.05 มิลลิเมตร ต่อการยับยั้งแบคทีเรีย B. subtilis ATCC 6633 น้ำเลี้ยงเส้นใยเห็ดขมิ้นใหญ่มีการสร้างบริเวณโซนใสมากที่สุด คือ 10±0.05 มิลลิเมตรต่อการยับยั้งแบคทีเรีย S. aureus ATCC 6538 ส่วนของน้ำเลี้ยงเส้นใยเห็ดไม่มีการสร้างบริเวณโซนใสต่อการยับยั้งแบคทีเรีย E. coli ATCC 8739
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Chang, S.T. and Buswell, J.A., 1996, Mushroom nutriceuticals, World J. Microb. Biotech. 12: 473-476.
Wasser, S.P. and Weis, A.L., 1999, Therapeutic effects of substances occuring in higher Basidiomycetes mushrooms: A modern perspective, Crit. Rev. Immunol. 19: 65-96.
Tang, Y.J. and Zhong, J.J., 2002, Fed- batch fermentation of Ganoderma lucidum for hyperproduction of polysaccharides & ganoderic acid, Enzyme Microb. Tech. 31: 20-28.
Yang, F.C and Liau, C.B., 1998, The influence of environmental conditions on polysaccharide formation by Ganoderma lucidum in submerged culture, Proc. Biochem. 33: 547-553.
Lin, E. and Chen, Y., 2007, Factors affecting mycelial biomass and exopolysaccharide production in submerged cultivation of Antrodia cinnamomea using complex media, Bioresour. Technol. 98, 2511-2517.
Lee, W.Y., Park, Y., Ahn, J.K., Ka, K.H. and Park, S.Y., 2007, Factors influencing the production of endopolysaccharide and exopolysaccharide from Ganoderma applanatum, Enzyme Microb. Technol. 40: 249-254.
Ahmad, R., Muniandy, S., Shukri, N.I.A., Alias, A.A.H., Yusoff, W.M.W., Senafi, S. and Daud, F., 2014, Antioxidant properties and glucan compositions of various crude extract from Lentinus
squarrosulus mycelial culture, Adv. Biosci. Biotechnol. 5: 805-814.
Somongkon, R., Moonmangmee, D. and Moonmangmee, S., 2007, Study on antioxidant and free radical scavenging activity of polysaccharide from edible mushroom, pp. 459-466, 44th Kasetsart University Annual Conference: Science, Kasetsart University, Bangkok.
Attarat, J. and Phermthai, T., 2015, Bioactive compounds in three edible Lentinus mushrooms, Walailak J. Sci. Tech. 12: 491-504.
Seephonkai, P., Samchai, S., Thongsom, A., Sunaart, S., Kiemsanmuang, B. and Chakuton, K., 2011, DPPH radical scavenging activity and total phenolics of Phellinus mushroom extracts collected from Northeast of Thailand, Chin. J. Nat. Med. 9: 0441-0445.
Harbone, J.B., 1998, Phytochemical Methods: A Guide to Modern Technique of Plant Analysis, 3rd Ed., Chapman and Hall, New York.
Nagata, M. and Yamashita, I., 1992, Simple method for simultaneous determination of chlorophyll and caro-tenoids in tomato fruit, Nippon ShokuhinKogyo Gakkaish 39: 925-928.
Srisukong, A., Jantree, K. and Hanpak phum, S., 2016, The study of antibacterial in weed extracts, VRU Res. Develop. J. Sci. Technol. 11: 69-82.
Fangkrathok, N., Sripanidkulchai, B., Umehara, K. and Noguchi, H., 2013, Bioactive ergostanoids and a new polyhydroxyoctane from Lentinus polychrous mycelia and their inhibitory effects on E2-enhanced cell proliferation of T47D cells, Nat. Prod. Res. 27: 1611-1619.
Sirival, N., 2010, The antioxidant in local edible mushrooms: Upper Northestern Thailand, NU. Sci. J. 6: 165-172.
Imtiaj, A. and Tae-Soo., L. 2007, Screening of antibacterial and antifungal activities from Korean wild mushroom, World J. Agric. Sci. 3: 316-321.
