ผลของอุณหภูมิและระยะเวลาการอบแห้งต่อปริมาณสารต้านอนุมูลอิสระและความสามารถในการยับยั้งอนุมูลอิสระของใบบัวบก [Centella asiatica (L.) Urb.]

Main Article Content

สุกัญญา จันทร์สุนะ
ลลิตา เจริญทรัพย์
เยาวพา จิระเกียรติกุล
พรชัย หาระโคตร

บทคัดย่อ

การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของอุณหภูมิและระยะเวลาอบแห้งต่อปริมาณสารประกอบฟีนอลิคและฟลาโวนอยด์ทั้งหมด รวมถึงความสามารถในการยับยั้งอนุมูลอิสระของใบบัวบก โดยวางแผนการทดลองแบบ 3 x 3 factorial in CRD จำนวน 3 ซ้ำ ประกอบด้วย 2 ปัจจัย คือ (1) อุณหภูมิในการอบแห้ง ได้แก่ 60, 70 และ 80 ºC และ (2) ระยะเวลาในการอบแห้ง ได้แก่ 8, 10 และ 12 ชั่วโมง พบว่าอุณหภูมิที่สูงและระยะเวลาการอบแห้งที่นานขึ้น ส่งผลให้ปริมาณสารประกอบฟีนอลิคทั้งหมด ปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด และความสามารถในการยับยั้งอนุมูล DPPH ลดลง ใบบัวบกที่ผ่านการอบแห้งที่อุณหภูมิ 60 ºC นาน 8 และ 10 ชั่วโมง มีปริมาณสารประกอบฟีนอลิคทั้งหมดสูงสุด นอกจากนี้ใบบัวบกที่ผ่านการอบแห้งที่อุณหภูมิดังกล่าวนาน 10 ชั่วโมง มีปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมดและมีความสามารถในการยับยั้งอนุมูล DPPH สูงสุด ขณะที่การอบแห้งที่อุณหภูมิ 60 และ 70 ºC นาน 10 ชั่วโมง ใบบัวบกให้ความสามารถในการยับยั้งอนุมูล ABTS+• สูงที่สุด ดังนั้นอุณหภูมิและระยะเวลาที่เหมาะสมในการอบแห้งใบบัวบก คือ 60 ºC นาน 10 ชั่วโมง

Article Details

ประเภทบทความ
Biological Sciences
ประวัติผู้แต่ง

สุกัญญา จันทร์สุนะ

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

ลลิตา เจริญทรัพย์

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

เยาวพา จิระเกียรติกุล

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

พรชัย หาระโคตร, Department of Agricultural Technology, Faculty of Science and TEchnology, Thammasat University

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

เอกสารอ้างอิง

Sooksriwong, C., Product Champion of Thai’s Medicinal Plant, Available Source: https://www.pharmacy.mahidol.ac.th%2Fknowledge%2Ffiles%2F0404.pdf&usg=AOvVaw0B6HSHgPloK5wOTs3NZzlh, May 16, 2019. (in Thai)

Park, J.H., Choi, J.Y., Son, D.J., Park, E.K., Song, M.J., Hellström M. and Hong, J.T., 2017, Anti-inflammatory effect of titrated extract of Centella asiatica in phthalic anhydride-induced allergic dermatitis animal model, Int. J. Mol. Sci. 18: 1-14.

Somboonwong, J., Kankaisre, M., Tantisira, B. and Tantisira, M.H., 2012, Wound healing activities of different extracts of Centella asiatica in incision and burn wound models: An experimental animal study, BMC Complement Altern. Med. 12: 103.

Veerendra, K.M.H. and Gupta, Y.K., 2002, Effect of different extracts of Centella asiatica on cognition and markers of oxidative stress in rats, J. Ethnopharmacol. 79: 253-260.

Tomas-Barberan, F.A. and Espin, J.C., 2001, Phenolic compounds and related enzymes as determinants of quality in fruits and vegetables, J. Sci. Food Agric. 81: 853-876.

Niamnuy, C., Siwawut, J. and Kadeedang, R., 2012, Kinetics of drying and phenolic compound changes of Centella asiatica (Linn.) Urban during hot air drying, Agric. Sci. J. 43: 208-211. (in Thai)

Tirawanichakul, S., Chanchiew, S. and Tirawanichakul, Y., 2013, Pennywort using infrared radiation: drying kinetics, energy consumption and quality aspect, KKU Res. J. 18: 311-324. (in Thai)

Maskan, M., 2000, Microwave/air and microwave finish drying of banana, J. Food Eng. 44: 71-78.

Zainol, M.K.M., Abdul-Hamid, A., Bakar, F.A. and Dek, S.P., 2009, Effect of different drying methods on the degradation of selected flavonoids in Centella asiatica, Int. Food Res. J. 16: 531-537.

Niamnuy, C., Charoenchaitrakool, M., Mayachiew, P. and Devahastin, S., 2013, Bioactive compounds and bioactivities of Centella asiatica (L.) Urban prepared by different drying methods and conditions, Dry Technol. 31: 2007-2015.

Soumyanath, A., Zhong, Y.P. Gold, S.A., Yu, X., Koop, D.R., Bourdette, D. and Gold, B.G., 2005, Centella asiatica accelerates nerve regeneration upon oral administration and contains multiple active fractions increasing neurite elongation in-vitro, J. Pharm. Pharmacol. 57: 1221-1229.

Rodríguez, K., Ah-Hen, K.S., Vega-Galvez, A., Valeria Vasquez A., Quispe-Fuentes, I., Rojas, P. and Lemus-Mondaca, R., 2016, Changes in bioactive components and antioxidant capacity of maqui, Aristotelia chilensis [Mol] Stuntz, berries during drying, LWT-Food Sci. Tech. 65: 537-542.

AOAC, 2000, Official Methods of Analysis of AOAC International, 17th Ed., AOAC International, Washington, DC.

Jaiarree, N., 2010. Biological Activities of Dioscorea birmanica Prain and Burkill Extract and Its Active Ingredients, Doctoral Dissertation, Thammasat University, Pathum Thani, 130 p.

Folin, O. and Ciocalteu, V., 1927, On tyrosine and tryptophane determinations in proteins, J. Biol. Chem. 73: 627-650.

Zhu, H., Wang, Y., Liu, Y., Xia, Y. and Tang, T., 2010, Analysis of flavonoids in Portulaca oleracea L. by UV-Vis spectro photometry with comparative study on different extraction technologies, Food Anal. Methods 3: 90-97.

Yamasaki, K., Hashimoto, T. and Sato, T., 1994, Electrochemical method for estimating the antioxidative effect of methanol extracts of crude drugs, Chem. Pharma. Bull. 42: 1663-1665.

Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M. and Rice-Evans, C., 1999, Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay, Free Rad. Biol. Med. 26: 1231-1237.

Nadee, A., Tirawanichakul, Y. and Tirawani chakul, S., 2012, Drying kinetics of pandanus leaf by infrared radiation combine hot air and hot air, Burapha Sci. J. 2: 130-138.

Kunwisawa, J., 2007, Alternative: Effect of Drying Methods on Volatile Compounds and Physical Qualities on Banana Slice, Master Thesis, King Mongkut’s University of Technology Thonburi, Bangkok, 120 p.

Martin-Cabrejas, M.A., Aguilera, Y., Pedrosa, M.M., Cuadrado, C., Hernandez, T., Diaz, S. and Esteban, R.M., 2009, The impact of dehydration process on antinutrients and protein digestibility of some legume flours, Food Chem. 114: 1063-1068.

Davey, M.W., Van Montagu, M., Dirk, I., Sanmartin, M., Kanellis, A., Smirnoff, N., Benzie, I., Strain, J., Favell, D. and Fletcher, J., 2000, Plant L-ascorbic acid: Chemistry, function, metabolism, bioavailability and effects of processing, J. Sci. Food Agric. 80: 825-860.

Hallamn, P.C.H., 2001, Evidence for health benefits of plant phenols: local or systemic effects?, J. Sci. Food Agric. 81: 842-852.

Bravo, L., 1998, Polyphenol: chemistry, dietary sources, metabolism, and nutritional significance, Nutr. Rev. 56: 317-33.

Seewaeng, P. and Siriamornpun, S., 2019, Effect of drying temperature on phytochemicals and antioxidant activities of Bambusa beecheyana, Khon Kaen Agric. J. 47: 1385-1392. (in Thai)

Harakotr, B., Suriharn, B., Tangwongchai, R., Scott, M.P. and Lertrat, K., 2014, Anthocyanins and antioxidant activity in coloured waxy corn at different matura tion stages, J. Funct. Foods. 9: 109-118.

Barros, L., Ferreira, M.J., Queiros, B., Ferreira, I.C.F.R. and Baptista, P., 2007, Total phenols, ascorbic acid, β-carotene and lycopene in Portuguese wild edible mushrooms and their antioxidant activities, Food Chem. 103: 413-419.

Kubola, J., Siriamornpun, S. and Meeso, N., 2011, Phytochemicals, vitamin C and sugar content of Thai wild fruits, J. Agric. Food Chem. 126: 972-981.