ผลของโรติเฟอร์เสริมคุณค่าทางอาหารด้วยสาหร่ายขนาดเล็กแตกต่างกัน 3 ชนิดต่อการเจริญเติบโตและอัตราการรอดของลูกปลาไดเดม่า Pseudochromis diadema
Main Article Content
บทคัดย่อ
ศึกษาการเจริญเติบโต อัตราการรอดของลูกปลาไดเดม่า (Pseudochromis diadema) แรกฟักที่เลี้ยงด้วยโรติเฟอร์ (Brachionus rotundiformis) ซึ่งเสริมคุณค่าทางอาหารด้วยสาหร่ายขนาดเล็ก 3 ชนิด (Tetraselmis gracilis, Isochrysis galbana และ Nannochloropsis oculata) แบ่งออกเป็น 4 ชุดทดลอง ได้แก่ 1. โรติเฟอร์ที่เลี้ยงด้วยสาหร่ายสีเขียว T. gracilis 2. โรติเฟอร์ที่เลี้ยงด้วยสาหร่ายสีน้ำตาลแกมทอง I. galbana 3. โรติเฟอร์ที่เลี้ยงด้วยสาหร่ายยูกลีโนไฟตา N. oculata และ 4. กลุ่มควบคุม (ไม่มีการเสริมคุณค่าทางอาหารในโรติเฟอร์) แต่ละชุดการทดลองมี 3 ซ้ำ ความหนาแน่นของโรติเฟอร์ที่ใช้ในการเลี้ยงลูกปลา 3 ตัวต่อมิลลิลิตร ให้อาหารวันละ 2 ครั้ง เลี้ยงระยะเวลา 15 วัน เมื่อสิ้นสุดการทดลองพบว่าลูกปลาชุดทดลองที่ 2 มีความยาวรวมเพิ่ม (total length gain) และความยาวมาตรฐานเพิ่ม (standard length gain) สูงที่สุดโดยมีค่าเท่ากับ 4.28+0.10 mm (P<0.05) และ 3.10+0.08 mm (P<0.05) ตามลำดับ ในการทดลองลูกปลาแรกฟักกลุ่มควบคุมมีการตายของลูกปลาทั้งหมดเมื่อเลี้ยงได้ 3 วัน อัตราการรอดพบสูงสุดในชุดทดลองที่ 1 (P<0.05) การศึกษาคุณค่าทางอาหารและกรดไขมันรวมของสาหร่ายขนาดเล็ก 3 ชนิด พบปริมาณโปรตีนสูงสุดใน I. galbana (P<0.05) ไขมันมีปริมาณสูงใน N. oculata (P<0.05) กรดไขมันรวมสูงสุดพบใน N. oculata หลังจากการเพิ่มคุณค่าทางอาหารด้วยสาหร่ายขนาดเล็กให้โรติเฟอร์ พบว่ามีปริมาณไขมันสูงสุดในโรติเฟอร์ที่เพิ่มคุณค่าทางอาหารด้วย I. galbana ปริมาณโปรตีนสูงสุดในโรติเฟอร์ที่เพิ่มคุณค่าทางอาหารด้วย T. gracilis (P<0.05) กรดไขมันรวมสูงสุดพบในโรติเฟอร์ที่เพิ่มคุณค่าทางอาหารด้วย N. oculata
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยหรือร่วมรับผิดชอบใดๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นลิขสิทธิ์ของJournal of Vocational Education in Agriculture หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใดๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจาก Journal of Vocational Education in Agriculture ก่อนเท่านั้น
เอกสารอ้างอิง
Wittenrich, M. L., & Turingan, R. G. (2011). Linking Functional Morphology and Feeding Performance in Larvae of Two Coral-Reef Fishes. Environmental Biology of Fishes, 92(3), 295-312.
Wongrat, L. (2000). Guide to Culture Phytoplankton. Department of Fishery Biology, Faculty of Fisheries, Kasetsart University. (in Thai)
Rahman, A. R. A., et al. (2018). The Effects of Microalgae as Live Food for Brachionus plicatilis (Rotifer) in Intensive Culture System. Tropical Life Sciences Research, 29(1), 127-138.
Conlon, T., et al. (2024). Comparative Pigment and Fatty Acid Profiling of Marine Species Within the Chlorophyte Genus Tetraselmis. Food Bioscience, 58, 103660.
Lin, C. Y., & Lin, B. Y. (2017). Comparison of Fatty Acid Composition and Fuel Characteristics of Biodiesels Made From Isochrysis galbana Lipids and From Used Cooking Oil. Journal of Marine Science and Technology, 25(4), 399-403.
Guillard, R. R. L. (1975). Culture of Phytoplankton for Feeding Marine Invertebrates. In Smith, W. L., & Chanley, M. H. (Eds.). Culture of Marine Invertebrate Animals. Plenum Press.
Fábregas, J., et al. (2001). Growth Rate of the Microalga Tetraselmis suecica Changes the Biochemical Composition of Artemia Species. Marine Biotechnology, 3(3), 256-263.
Association of Official Analytical Chemists. (2000). Official Methods of Analysis (17th ed.). AOAC International.
Folch, J., et al. (1957). A Simple Method for the Isolation and Purification of Total Lipids From Animal Tissues. Journal of Biological Chemistry, 226(1), 497-509.
Bischoff, A. A., et al. (2023). Dynamics of Fatty Acids in Pikeperch (Sander lucioperca) Larvae and Juveniles During Early Rearing and Weaning in a Commercial RAS: Implications for Dietary Refinement. Fishes, 8(9), 444.
Senadheera, S. D., et al. (2011). Effects of Dietary -Linolenic Acid (18:3 n-3)/Linoleic Acid (18:2 n-6) Ratio on Fatty Acid Metabolism in Murray Cod (Maccullochella peelii peelii). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59(3), 1020-1030.
Francis, D. S., et al. (2019). Effects of PUFA-Enriched Artemia on the Early Growth and Fatty Acid Composition of Murray Cod Larvae. Aquaculture, 513, 734362.
Kamalam, B. S., et al. (2013). Metabolism and Fatty Acid Profile in Fat and Lean Rainbow Trout Lines Fed With Vegetable Oil: Effect of Carbohydrates. PLOS ONE, 8(10), e76570.
Copeman, L. A., et al. (2002). Effects of Docosahexaenoic, Eicosapentaenoic, and Arachidonic Acid on the Early Growth, Survival, Lipid Composition, and Pigmentation of Yellowtail Flounder (Limanda ferruginea): A Live Food Enrichment Experiment. Aquaculture, 210(1-4), 285-304.
