การขยายพันธุ์ฟิโลเดนดรอนเบอร์กิ้น: อิทธิพลของสารควบคุมการเจริญเติบโตของพืชไบโอรีแอคเตอร์จมชั่วคราวและวัสดุปลูก
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อพัฒนาวิธีการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อเพื่อขยายพันธุ์ฟิโลเดนดรอนเบอร์กิ้น (Philodendron 'Birkin') โดยศึกษาผลของสูตรอาหาร สารควบคุมการเจริญเติบโตของพืช ระบบไบโอรีแอคเตอร์จมชั่วคราว (TIB) และการย้ายปลูก ยอดอ่อนที่เพาะเลี้ยงบนอาหารสูตร MS, WPM และ DKW ที่เติม Kinetin 0.5 มิลลิกรัมต่อลิตร เป็นเวลา 8 สัปดาห์ พบว่าไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างสูตรอาหาร โดยอาหารสูตร MS ให้จำนวนยอดเฉลี่ย 1.50 ยอด การศึกษาผลของไซโทไคนิน พบว่า BAP มีประสิทธิภาพในการเพิ่มจำนวนยอดสูงกว่า Kinetin อาหาร MS ที่เติม BAP 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร ให้จำนวนยอดเฉลี่ยสูงสุด (36.40 ยอด) ซึ่งสูงกว่าชุดควบคุมที่ไม่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโต 22.8 เท่า อย่างไรก็ตาม BAP ความเข้มข้นสูงมีผลยับยั้งการเกิดราก การเติม IBA 1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร ร่วมกับ BAP ยับยั้งการเพิ่มจำนวนยอดและชักนำให้เกิดแคลลัส ยอดที่ไม่มีรากสามารถพัฒนารากได้บนอาหารสูตร MS ที่ไม่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโต ผลการศึกษาเบื้องต้นพบว่ายอดที่เพาะเลี้ยงในระบบ TIB เป็นเวลา 4 สัปดาห์ ให้จำนวนยอดเฉลี่ย 2.33 ยอด และความยาวยอด 3.37 เซนติเมตร สูงกว่าการเพาะเลี้ยงบนอาหารกึ่งแข็งเป็นเวลา 8 สัปดาห์ (1.50 ยอด และ 2.20 เซนติเมตร) แสดงให้เห็นว่าระบบ TIB ส่งเสริมการเจริญเติบโตได้ดีในระยะเวลาที่สั้นกว่า ในการย้ายปลูกต้นกล้ามีอัตราการรอดชีวิต 100 เปอร์เซ็นต์ โดยวัสดุปลูกผสมพีทมอสและขุยมะพร้าว (1:1) ให้ผลดีที่สุดในด้านจำนวนใบ ความสูงต้น และการพัฒนาราก ผลการศึกษานี้แสดงถึงศักยภาพของเทคนิคการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืชสำหรับการขยายพันธุ์ฟิโลเดนดรอนเบอร์กิ้นในเชิงพาณิชย์
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยหรือร่วมรับผิดชอบใดๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ใน Journal of Vocational Education in Agriculture ถือเป็นลิขสิทธิ์ของJournal of Vocational Education in Agriculture หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใดๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจาก Journal of Vocational Education in Agriculture ก่อนเท่านั้น
เอกสารอ้างอิง
Alawaadh, A. A., et al. (2020). Micropropagation of Lacy Tree Philodendron (Philodendron bipinnatifidum Schott ex Endl.). HortScience, 55(3), 294-299.
Klanrit, P., et al. (2023). In Vitro Propagation of Philodendron erubescens 'Pink Princess' and Ex Vitro Acclimatization of the Plantlets. Horticulturae, 9(6), 688.
Oboni, K. A., & Hossain, M. A. (2025). Exploring the Diversity, Propagation, Impacts, and Market Dynamics of Houseplants: Current Trends and Future Prospects. Technology in Horticulture, 5, e010.
Sreekumar, S., et al. (2001). Morphogenetic Responses of Six Philodendron Cultivars In Vitro. Indian Journal of Experimental Biology, 39(12), 1280-1287.
Chen, F. C., et al. (2012). Micropropagation of Self-Heading Philodendron Via Direct Shoot Regeneration. Scientia Horticulturae, 141, 23-29.
Han, B. H., & Park, B. M. (2008). In Vitro Micropropagation of Philodendron cannifolium. Journal of Plant Biotechnology, 35(3), 203-208.
Mongkolsawat, W., et al. (2023). Effects of BA, TDZ, and NAA on Growth of Philodendron 'Birkin' In Vitro. PSRU Journal of Science and Technology, 8(1), 27-36. (in Thai)
Akramian, M., et al. (2024). Optimization of Plant Growth Regulators for In Vitro Mass Propagation of Philodendron cv. Birkin Through Shoot Tip Culture. Greenhouse Plant Production Journal, 1(1), 55-62.
Tasnim, N., et al. (2025). In Vitro Mass Propagation of Philodendron cv. 'Birkin' Through Direct and Indirect Organogenesis. Plant Tissue Culture and Biotechnology, 35(1), 105-116.
Kang, I., & Sivanesan, I. (2025). Micropropagation of Philodendron 'White Knight' Via Shoot Regeneration From Petiole Explants. Plants, 14(11), 1714.
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassays With Tobacco Tissue Cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497.
van Staden, J., Zazimalová, E., & George, E.F. (2008). Plant Growth Regulators II: Cytokinins, their Analogues and Antagonists. In E.F. George, M.A. Hall, & G-J. De Klerk (Eds.), Plant Propagation by Tissue Culture: Volume 1. The Background (3rd ed., p. 205–226). Dordrecht : Springer.
Khamrit, R., & Jongrungklang, N. (2024). Determining Optimal Mutation Induction of Philodendron billietiae Using Gamma Radiation and In Vitro Tissue Culture Techniques. Horticulturae, 10(11), 1164.
Muhammad, A., et al. (2007). Proliferation-Rate Effects of BAP and Kinetin on Banana (Musa spp. AAA Group) 'Basrai'. HortScience, 42(5), 1253-1255.
Ashraf, M. F., et al. (2014). Effect of Cytokinin Types, Concentrations and Their Interactions on In Vitro Shoot Regeneration of Chlorophytum borivilianum Sant. & Fernandez. Electronic Journal of Biotechnology, 17(5), 275-279.
Grzegorczyk-Karolak, I., et al. (2020). The Stimulatory Effect of Purine-Type Cytokinins on Proliferation and Polyphenolic Compound Accumulation in Shoot Culture of Salvia viridis. Biomolecules, 10(2), 178.
Etienne, H., & Berthouly, M. (2002). Temporary Immersion Systems in Plant Micropropagation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 69(3), 215-231.
Bello-Bello, J. J., et al. (2021). A Temporary Immersion System for Mass Micropropagation of Pitahaya (Hylocereus undatus). 3 Biotech, 11(10), 437.
Uma, S., et al. (2021). A Novel Temporary Immersion Bioreactor System for Large Scale Multiplication of Banana (Rasthali AAB—Silk). Scientific Reports, 11, 20371.
Martínez-Estrada, E., et al. (2019). Temporary Immersion Improves In Vitro Multiplication and Acclimatization of Anthurium andreanum Lind. Scientia Horticulturae, 249, 185-191.
Ramírez-Mosqueda, M. A., & Iglesias-Andreu, L. G. (2016). Evaluation of Different Temporary Immersion Systems (BIT®, BIG, and RITA®) in the Micropropagation of Vanilla planifolia Jacks. In Vitro Cellular & Developmental Biology—Plant, 52(2), 154-160.
Lotfi, M., et al. (2020). Effects of Meta-Topolin Derivatives and Temporary Immersion on Hyperhydricity and In Vitro Shoot Proliferation in Pyrus communis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 143(3), 499-505.
Rico, S., et al. (2022). A Temporary Immersion System to Improve Cannabis sativa Micropropagation. Frontiers in Plant Science, 13, 895971.
Guerra, F., et al. (2025). In Vitro Propagation of Peumus boldus Molina Using a Temporary Immersion System. Horticulturae, 11(2), 142.
Trasar-Cepeda, C., et al. (2023). Effect of Soil Type and In Vitro Proliferation Conditions on Acclimation and Growth of Willow Shoots Micropropagated in Continuous Immersion Bioreactors. Plants, 12(1), 132.
Barakat, A. A., & Gaber, M. K. (2018). Micropropagation and Ex Vitro Acclimatization of Aglaonema Plants. Middle East Journal of Applied Sciences, 8(4), 1425-1436.
Lloyd, G., & McCown, B. H. (1980). Commercially-Feasible Micropropagation of Mountain Laurel, Kalmia latifolia, by Shoot Tip Culture. Combined Proceedings—International Plant Propagator’s Society, 30, 421-427.
Driver, A., & Kuniyuki, A. H. (1984). In Vitro Propagation of Paradox Walnut Rootstock. HortScience, 19(4), 507-509.
Royani, J. I., et al. (2021). Effect of Benzilaminopurine and Kinetin for Shoot Multiplication of Indigofera (Indigofera zollingeriana Miq.) by In Vitro Culture. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 637(1), 012053.
Trasar-Cepeda, C., et al. (2023). Effect of Soil Type and In Vitro Proliferation Conditions on Acclimation and Growth of Willow Shoots Micropropagated in Continuous Immersion Bioreactors. Plants, 12(1), 132.
De la Cruz-Olvera, A., et al. (2025). Micropropagation of Agave angustifolia Haw., for Use and Conservation Purposes. Revista Mexicana de Ciencias Forestales, 16(88), 98-123.
