การตรวจวิเคราะห์เชื้อไบโอฟิล์มจากฟันสุนัขด้วยวิธี Congo red tube method และ tissue culture plate method
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
เชื้อไบโอฟิล์มเป็นกลุ่มแบคทีเรียที่เกาะติดกับฟันสุนัขซึ่งเป็นสาเหตุทำให้เกิดการอักเสบของเหงือกและโรคเหงือกอักเสบในสุนัข การสัมผัสน้ำลายสุนัขอาจทำให้เกิดการติดต่อเชื้อไบโอฟิล์มทั้งระหว่างสุนัขและเจ้าของหรือติดต่อระหว่างสุนัขด้วยกันเอง การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจวิเคราะห์เชื้อไบโอฟิล์มและประเมินความเหมาะสมของวิธีที่ใช้ตรวจวิเคราะห์จากทั้งสามวิธีได้แก่ วิธี Congo red agar (CRA) Tube method (TM) และ Tissue culture plate (TCP) โดยการศึกษานี้ วิธี TCP ถูกใช้เป็นวิธีมาตรฐาน (gold method) ในการเปรียบเทียบผลของตรวจวิเคราะห์เชื้อไบโอฟิล์ม จากผลการศึกษาพบว่า วิธี TCP ตรวจพบเชื้อไบโอฟิล์ม จำนวน 46 ตัวอย่าง คิดเป็น 38.98 % การตรวจด้วยวิธี CRA พบเชื้อไบโอฟิล์ม จำนวน 19 ตัวอย่าง คิดเป็น 16.10 % และไม่พบเชื้อไบโอฟิล์ม จำนวน 99 ตัวอย่าง คิดเป็น 83.90 % เมื่อเทียบกับวิธี TCP วิธี CRA มีความไวและความจำเพาะเจาะจง เท่ากับ 41% และ 100% ตามลำดับ ส่วนวิธี TM ตรวจพบเชื้อไบโอฟิล์ม จำนวน 32 ตัวอย่าง คิดเป็น 27.12 % และไม่พบเชื้อไบโอฟิล์ม จำนวน 86 ตัวอย่าง คิดเป็น 72.88 % เมื่อเปรียบเทียบกับวิธี TCP วิธี TM มีความไวและความจำเพาะเจาะจง เท่ากับ 69 % และ 100 % ตามลำดับ จากผลการศึกษาพบว่าเมื่อเปรียบเทียบระหว่างวิธี TM และ CRA พบว่า วิธี TM มีประสิทธิภาพมากกว่าวิธี CRA ซึ่งเมื่อเปรียบเทียบทั้ง 3 วิธี พบว่าวิธี TCP มีประสิทธิภาพ มีความจำเพาะ และความไวมากที่สุด นอกจากนี้ยังน่าเชื่อถือและง่ายในการตรวจวิเคราะห์เชื้อไบโอฟิล์มจากฟันสุนัขซึ่งสามารถนำไปใช้ในการตรวจวิเคราะห์เชื้อไบโอฟิล์มเบื้องต้นในห้องปฏิบัติการทางสุขภาพสัตว์ต่อไป
Article Details
References
Bai, L., Takag, I. S., Ando, T., Yoneyama, H., Ito, K., Mizugai, H., & Isogai, E. (2016). Antimicrobial activity of tea catechin against canine oral bacteria and the functional mechanisms. The Journal of Veterinary Medical Science, 78(9), 1439 – 1445. doi: 10.1292/jvms.16-0198.
Charlotte, C. P., Anthony, A. Y., & Weese, J. S. (2013). Evaluation of biofilm production by Pseudomonas aeruginosa from canine ears and the impact of biofilm on antimicrobial susceptibility in vitro Veterinary Dermatology, 24(4), 446 – 449. doi: 10.1111/vde.12040.
Christensen, G. D., Simpsonv, W. A., Yonger, J. J., Baddor, L. M., Barrett, F. F., Melton, D. M., & Beachey, E. H. (1985). Adherence of coagulase-negative Staphylococci to plastic tissue culture plates: a quantitative model for the adherence of Staphylococci to medical devices. Journal of Clinical Microbiology, 22, 996 – 1006. doi: 10.1128/jcm.22.6.996-1006.1985.
Dhanalakshmi, T. A., Venkatesha, D., Nusrath, A., & Asharani, N. (2018). Evaluation of phenotypic methods for detection of biofilm formation in uropathogens. National Journal of Laboratory Medicine., 7(4), MO06 – MO11. doi: 10.7860/NJLM/2018/35952:2321.
Dogan, B., Antinheimo, J., Cetiner, D., Bodur, A., Emingil, G., Buduneli, E., Uygur, C., Firatli, E., Lakio, L., & Asikainen, S. (2003). Subgingival microflora in Turkish patients with periodontitis. Journal of Periodontology, 74, 803 – 814. doi: 10.1902/jop.2003.74.6.803.
Elizabeth, A. S., Lynetta, J. F., Mohamed, N. S., & Paul, W. S. (2014). Biofilm-infected wounds in a dog. Journal of The American Veterinary Medical Association, 244(6), 699 – 707. doi:10.2460/javma.244.6.699.
Freeman D. J., Falkiner F. R., & Keane C. T. (1989). New method for detecting slime production by coagulase negative staphylococci. Journal of Clinical Pathology, 42(8), 872 – 874. doi: 10.1136/jcp.42.8.872.
Goldstein, E. J., Citron, D. M., Wield, B., Blachman, U., Sutter, V. L, Miller, T. A,. & Finegold, S. M. (1978). Bacteriology of human and animal bite wounds. Journal of Clinical Microbiology, 8(6): 667 – 672. doi: 10.1128/jcm.8.6.667-672.1978.
Han, J. I., Yang, C. H., & Park, H. M., (2015). Emergence of biofilm-producing Staphylococcus pseudintermedius isolated from healthy dogs in South Korea. Veterinary Quarterly, 35(4), 207 – 210.
Hassan A., Usman J., Kaleem F., Omair M., Khalid A., & Iqbal M. (2011). Detection and antibiotic susceptibility pattern of biofilm producing Gram positive and Gram negative bacteria isolated from a tertiary care hospital of Pakistan. Malaysian Journal of Microbiology, 7(1), 57-60. doi:10.21161/mjm.25410.
Habibzadeh F., Parham, H.& Mahboobeh, Y. (2022). The apparent prevalence, the true prevalence. Biochem Medica, 32(2), 020101. doi: 10.11613/BM.2022.020101.
Imbronito, A.V., Okuda, O.S., Maria de Freitas, N., Moreira Lotufo, R.F., & Nunes, F.D. (2008). Detection of herpesviruses and periodontal pathogens in subgingival plaque of patients with chronic periodontitis, generalized aggressive periodontitis, or gingivitis. Journal of Periodontology, 79(12), 2313-21. doi: 10.1902/jop.2008.070388.
Lamont, R. J., Hajishengallis, G. N., Koo, H. M., & Jenkinson, F. (2019). Oral microbiology and immunology. (3rd ed.). John Wiley & Sons, Inc., New York, USA.
Lasserre J. F., Brecx M. C., & Toma S. (2018). Oral microbes, biofilms and their role in periodontal and peri-implant diseases. Materials, 11(10), 1802. doi: 10.3390/ma11101802.
Meyers, B., Schoeman, J. P., Goddard, A., & Picard, J. (2008). The bacteriology and antimicrobial of infected and non-infected dog bite wounds: fifty cases. Veterinary Microbiology, 127 (3 – 4): 360 – 368. doi: 10.1016/j.vetmic.2007.09.004.
Mohamed A., Rajaa A. M., Khalid Z., Fouad M., & Naima R. (2016). Comparison of Three Methods for the Detection of Biofilm Formation by Clinical Isolated of staphylococcus aureus Isolated in Casablanca. International Journal of Science and Research, 5(10), 1156 – 1159. doi: 10.21275/ART20162319.
Offenbacher, S. (1996). Periodontal diseases: pathogenesis. Ann Periodontal, 1, 821 – 887. Dental Research Center, University of North Carolina, Chapel Hill, USA.
Oliveira, A., & Cunha, M. (2010). Comparison of methods for the detection of biofilm production in coagulase-negative staphylococci. BMC Research Notes, 3, 260. doi: 10.1186/1756-0500-3-260.
Osland, A. M., Vestby, L. K., Fanuelsen, H., Slettemeas, J. S., & Sunde, M. (2012). Clonal diversity and biofilm-forming ability of methicillin-resistant Staphylococcus pseudintermedius. Journal Antimicrobial Chemotherapy, 67(4), 841 – 848. doi: 10.1093/jac/dkr576.
Papenfort, K., & Bassler, B. (2016). Quorum-Sensing Signal-Response Systems in Gram-NegativeBacteria. Nature Reviews Microbiology, 14, 576 – 588. doi.org/10.1038/nrmicro.2016.89.
Parikh, R., Mathai, A., Parikh, S., Sekhar, G.C., & Thomas, R. (2008). Understanding and using sensitivity, specificity and predictive values. Indian Journal of Ophthalmology. 56(1), 45 – 50. doi: 10.4103/0301-4738.37595
Phuket, D. Charbang, P. Sthitmatee N., & Prachasilchai, W. (2016). Study of bacterial species and antimicrobial sensitivity in canine oral cavity at Small Animal Teaching Hospital, Chiang Mai University. Chiang Mai Veterinary Journal, 14(3), 108 – 117.
Rania, M. A. H., Kassem, N. N, & Mahmoud, B. S. (2018). Detection of biofilm producing Staphylococci among different clinical isolates and its relation to methicillin susceptibility. Journal of Medical Sciences, 6(8), 1335–1341. doi: 10.3889/oamjms.2018.246
Saha, R., Arora, S., & Das, S., (2004). Detection of biofilm formation in urinary isolates: need of the hour. Journal of Research in Biology, 4(1), 1174–1181.
Sharvari, S. A., & Chitra, P. G. (2012). Evaluation of different detection methods of biofilm formation in clinical isolates of staphylococci. International Journal of pharma and Bio Sciences, 3(4), 724-733.
Triveda, L., & Gomathi, S. (2016). Detection of biofilm formation among the clinical is of Enterococci: An evaluation of three different screening methods. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 5(3), 643 – 650. doi: 10.20546/ijcmas.2016.503.075.
Watson, W. T., Minogue, T. D., Val, D. L., Bodman, S. B., & Churchill, M. E. (2002). Structural basis and specificity of acyl-homoserine lactone signal production in bacterial quorum sensing. Molecular Cell, 9(3): 685 – 694. doi: 10.1016/s1097-2765(02)00480-x.