Effect of Nympheae lotus Linn. flower extract on semen quality of streptozotocin-induced diabetic male rat
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
โรคเบาหวานเป็นภาวะเรื้อรังที่ส่งผลต่อระบบสืบพันธุ์เพศผู้ โดยมีงานวิจัยระบุว่าภาวะเบาหวานมีผลทำให้คุณภาพน้ำเชื้อลดลง เกิดความผิดปกติของกระบวนการสร้างอสุจิ ดอกบัวแดงมีสารออกฤทธิ์กลุ่มฟลาโวนอยด์ที่มีศักยภาพในการลดระดับน้ำตาลในเลือดและลดภาวะเครียดออกซิเดชัน ซึ่งอาจช่วยบรรเทาผลกระทบของโรคเบาหวานต่อระบบสืบพันธุ์ได้ ดังนั้นงานวิจัยนี้ มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของโรคเบาหวานในหนูแรทพันธุ์ WISTAR เพศผู้ที่เหนี่ยวนำด้วยสเตร็ปโตโซโตซิน (streptozotocin; STZ) ต่อระดับน้ำตาลในเลือดและคุณภาพน้ำเชื้อ โดยใช้หนูแรทพันธุ์ Wistar เพศผู้ จำนวน 48 ตัว แบ่งเป็น 6 กลุ่มทดลอง ได้แก่ กลุ่มควบคุมปกติ (NMC) กลุ่มเบาหวานควบคุม (DC) กลุ่มเบาหวานที่ได้รับการฉีดอินซูลิน (DI) กลุ่มเบาหวานที่ได้รับสารสกัดหยาบกลีบดอกบัวแดง (DPT) กลุ่มเบาหวานที่ได้รับสารสกัดหยาบเกสรดอกบัวแดง (DPL) และกลุ่มเบาหวานที่ได้รับกรดแกลลิก (DGA) หนูทดลองกลุ่มเบาหวานจะได้รับการเหนี่ยวนำให้เป็นเบาหวานด้วยการฉีด STZ ขนาด 50 มก./กก. ทางช่องท้อง หลังจากนั้นได้รับสารเสริมทดลองต่อเนื่องเป็นเวลา 12 สัปดาห์ ผลการศึกษาพบว่า ระดับน้ำตาลในเลือดของหนูแรทกลุ่ม NMC มีค่าเฉลี่ยต่ำที่สุด ในขณะที่กลุ่ม DC มีค่าเฉลี่ยระดับน้ำตาลในเลือดสูงสุด การฉีดอินซูลิน (DI) และการเสริมกรดแกลลิก (DGA) สามารถลดระดับน้ำตาลในเลือดได้อย่างมีนัยสำคัญ (p<0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่ม DC ส่วนคุณภาพของน้ำเชื้อพบว่า หนูแรทกลุ่ม NMC มีเปอร์เซ็นต์ตัวอสุจิที่มีชีวิตและอสุจิเคลื่อนที่ไปข้างหน้าสูงที่สุด ขณะที่กลุ่ม DPL และ DGA มีอัตราการรอดชีวิตต่ำ และอัตราการเคลื่อนที่ไปข้างหน้าของอสุจิต่ำ ซึ่งแตกต่างอย่างไม่มีนัยสำคัญกับกลุ่ม DC การศึกษาผลของการเสริมสารสกัดหยาบจากกลีบดอกบัวแดงในหนูแรทที่ถูกเหนี่ยวนำให้เป็นโรคเบาหวาน ได้แสดงให้เห็นถึงความสามารถในการลดระดับน้ำตาลในเลือดได้เล็กน้อยเมื่อเปรียบเทียบกับการให้อินซูลิน และพบว่าการเสริมสารสกัดหยาบกลีบดอกบัวแดงสามารถปรับปรุงคุณภาพน้ำเชื้อของหนูแรท โดยเพิ่มเปอร์เซ็นต์ตัวอสุจิมีชีวิต และเปอร์เซ็นต์ตัวอสุจิเคลื่อนที่ไปข้างหน้า ได้อย่างมีนัยสำคัญ เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มควบคุมที่เป็นเบาหวาน
Article Details
References
Adamkovicova, M., Toman, R., Martiniakova, M., Omelka, R., Babosova, R., Krajcovicova, V., Grosskopf, B., & Massanyi, P. (2016). Sperm motility and morphology changes in rats exposed to cadmium and diazinon. Reproductive Biology and Endocrinology, 14(1), 42. https://doi.org/10.1186/s12958-016-0177-6.
Afolayan, A. J., & Sunmonu, T. O. (2012). Protective role of Artemisia afra aqueous extract on tissue antioxidant defense systems in streptozotocin-induced diabetic rats. African Journal of Traditional, Complementary and Alternative Medicines, 10(1), 15–20. doi: 10.4314/ajtcam.v10i1.3.
Afolayan, A. J., Anthony, T., Sharaibi, O. J., & Kazeem, M. I. 2013. Phytochemical analysis and in vitro antioxidant activity of Nymphaea lotus L. International Journal of Pharmacology, 9(5), 297–304.
Amaral, S., Oliveira, P.J., Ramalho-Santos, J. (2006). Effects of hyperglycemia on sperm and testicular cells of Goto-Kakizaki and streptozotocin-treated rat models for diabetes. Theriogenology, 66(9), 2056–2067.
Amaral, S., Moreno, A. J., Santos, M. S., Seiça, R., & Ramalho-Santos, J. (2006). Effects of hyperglycemia on sperm and testicular cells of Goto-Kakizaki and streptozotocin-treated rat models for diabetes. Theriogenology, 66(9), 2056–2067. doi: 10.1016/j.theriogenology.2006.06.006.
Arikawe, A.P., Daramola, A.O., Odofin, A.O., & Obika, L.F.O. (2006). Alloxan-induced and insulin-resistant diabetes mellitus affect semen parameters and impair spermatogenesis in male rats. African Journal of Reproductive Health, 10(3), 106–113.
Baccetti, B., Collodel, G., Moretti, E., & Piomboni, P. (2002). Insulin-dependent diabetes in men is associated with hypothalamo-pituitary derangement and with impairment in semen quality. Human Reproduction, 17(10), 2673–2677.
Dastan, M., Rajaei, Z., Sharifi, M., & Salehi, H. (2025). Gallic acid ameliorates LPS‑induced memory decline by modulating NF‑κB, TNF‑α, and Caspase 3 gene expression and attenuating oxidative stress and neuronal loss in the rat hippocampus. Metabolic Brain Disease, 40(12). doi.org/10.1007/s11011-024-01441-5.
Ding, C., Wang, Q., Hao, Y., Ma, X., Wu, L., du, M., Li, W., Wu, Y., Guo, F., Ma, S., Huang, F., & Qin, G. (2016). Vitamin D supplement improved testicular function in diabetic rats. Biochemical and biophysical research communications, 473(1), 161–167. doi: 10.1016/j.bbrc.2016.03.072.
Dutta, S., Majzoub, A., Agarwal, A., & Henkel, R. (2021). Oxidative stress, testicular inflammatory pathways, and male reproduction. International Journal of Molecular Sciences, 22(18), 10043.
Intamong, J., Seanphet, K., & Seanphet, S. (2011). Sperm quality of male rats treated with ethanolic extract of Stemona aphylla Craib. In Proceedings of the 2nd Maejo–Phrae National Research Conference (pp. 777–784). Maejo University, Phrae, Thailand. (in Thai)
Jang, H., Kim, S. K., Yang, S. H., & Song, S. H. (2011). Effects of anthocyanin extracted from black soybean seed coat on spermatogenesis in a rat model of varicocele. Reproduction, Fertility and Development, 24(5), 649–655.
Khaki, A., Fathiazad, F., Nouri, M., Khaki, A. A., Khamenehi, H. J., & Hamadeh, M. (2010). Beneficial effects of quercetin on sperm parameters in streptozotocin-induced diabetic male rats. Phytotherapy Research, 24(9), 1285–1291.
Li, M., Liu, Z., Zhuan, L., Wang, T., Guo, S., Wang, S., Liu, J., & Ye, Z. (2013). Effects of apocynin on oxidative stress and expression of apoptosis-related genes in testes of diabetic rats. Molecular medicine reports, 7(1), 47–52. doi.org/10.3892/mmr.2012.1132.
Luthfi, M. J. (2015). A simple and practical method for rat epididymal sperm count (Rattus norvegicus). Biology, Medicine, & Natural Product Chemistry, 4(1), 1–3.
Mangoli, E., Talebi, A. R., Anvari, M., & Pourentezari, M. (2013). Effects of experimentally-induced diabetes on sperm parameters and chromatin quality in mice. Iranian Journal of Reproductive Medicine, 11(1), 53–60.
Oczkowski, M., Wilczak, J., Dziendzikowska, K., Øvrevik, J., Myhre, O., Lankoff, A., Kruszewski, M., & Gromadzka-Ostrowska, J. (2022). Dietary Intervention with Blackcurrant Pomace Protects Rats from Testicular Oxidative Stress Induced by Exposition to Biodiesel Exhaust. Antioxidants, 11(8). doi.org/10.3390/antiox11081562.
Oyeyemi, M. O., & Ajani, O. S. (2015). Haematological parameters, semen characteristics and sperm morphology of male albino rat (Wistar strain) treated with Aloe vera gel. Journal of Medicinal Plants Research, 9(15), 510-514.
Pereira, V., Tarone, D. G., Cazarin, C. B. B., Barbero, G. F., & Martínez, J. 2019. Pressurized liquid extraction of bioactive compounds from grape marc. Journal of Food Engineering, 240, 105–113.
Scarano, W. R., Messias, A. G., Oliva, S. U., Klinefelter, G. R., & Kempinas, W. G. (2006). Sexual behaviour, sperm quantity and quality after short-term streptozotocin-induced hyperglycaemia in rats. International Journal of Andrology, 29(4), 482–488.
Seed, J., Chapin, R. E., Clegg, E. D., Dostal, L. A., Foote, R. H., Hurtt, M. E., Klinefelter, G. R., Makris, S. L., Perreault, S. D., Schrader, S., Seyler, D., Sprando, R., Treinen, K. A., Veeramachaneni, D. N., & Wise, L. D. (1996). Methods for assessing sperm motility, morphology, and counts in the rat, rabbit, and dog: a consensus report. ILSI Risk Science Institute Expert Working Group on Sperm Evaluation. Reproductive toxicology, 10(3), 237–244.
Uguz, C., Varisli, O., Agca, C., and Agca, Y. 2009. Effects of nonylphenol on motility and subcellular elements of epididymal rat sperm. Reproductive Toxicology, 28(4), 542–549.
Vitaglione, P., Donnarumma, G., Napolitano, A., Galvano, F., Gallo, A., Scalfi, L., & Fogliano, V. (2007). Protocatechuic acid is the major human metabolite of cyanidin-glucosides. The Journal of Nutrition, 137(9), 2043–2048.
Ukwenya, V. O., Ashaolu, O. J., Adeyemi, D. O., & Abraham, K. J. (2015). Experimental diabetes and the epididymis of Wistar rats: The protective effects of Anacardium occidentale (Linn.). Journal of Experimental and Clinical Anatomy, 14(2), 57–62. doi: 10.4103/1596-2393.177029.
Wang, Z., Yang, S., Gao, Y., & Huang, J. (2022). Extraction and purification of antioxidative flavonoids from Chionanthus retusa leaf. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 10. doi.org/10.3389/fbioe.2022.1085562.
Xu, Y., Tang, G., Zhang, C., Wang, N., & Feng, Y. (2021). Gallic Acid and Diabetes Mellitus: Its Association with Oxidative Stress. Molecules, 26(23). doi.org/10.3390/molecules26237115.
