การวิเคราะห์ลายนิ้วมือทางพฤกษเคมีและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดน้ำและเมทานอลจากดอกเก๊กฮวย (Chrysanthemum morifolium Ramat.) ด้วย TLC และ FTIR-ATR
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาปริมาณสารพฤกษเคมี ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ลักษณะสารสำคัญและโครงสร้างเบื้องต้นของสารสกัดจากดอกเก๊กฮวยขาว (Chrysanthemum morifolium) และดอกเก๊กฮวยเหลือง (Chrysanthemum indicum) จากการสกัดดอกเก๊กฮวยขาวและดอกเก๊กฮวยเหลืองด้วยตัวทำละลายน้ำและเมทานอล ได้สารสกัดหยาบ 4 ชนิด ได้แก่ สารสกัดดอกเก๊กฮวยเหลืองด้วยเมทานอล (YM-1) สารสกัดดอกเก๊กฮวยขาวด้วยเมทานอล (WM-2) สารสกัดดอกเก๊กฮวยเหลืองด้วยน้ำ (YD-3) และสารสกัดดอกเก๊กฮวยขาวด้วยน้ำ (WD-4) นำสารสกัดที่ได้มาวิเคราะห์ปริมาณสารประกอบฟีนอลิกและฟลาโวนอยด์ด้วยวิธี Folin-Ciocalteu assay และวิธี aluminum chloride colorimetric assay ตามลำดับ ประเมินฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH radical scavenging assay, nitric oxide scavenging assay และ ferrous ion chelating assay รวมถึงวิเคราะห์ลักษณะสารสำคัญและโครงสร้างเบื้องต้นด้วยเทคนิค thin-layer chromatography (TLC) และ Fourier transform infrared spectroscopy แบบ attenuated total reflectance (FTIR-ATR) ผลการศึกษาพบว่าสารสกัดน้ำมีปริมาณสารประกอบฟีนอลิกและสารฟลาโวนอยด์สูงกว่าสารสกัดเมทานอล โดยสารสกัด YD-3 ให้ปริมาณสารสำคัญและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH สูงที่สุด ขณะที่สารสกัด YM-1 แสดงความสามารถในการจับไอออนเหล็กสูงที่สุด สอดคล้องกับการศึกษาหมู่ฟังก์ชันด้วย FTIR-ATR ที่พบว่าสารสกัดน้ำมีหมู่ฟังก์ชันของสารประกอบฟีนอลิกซึ่งมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระเด่นชัด ส่วนการวิเคราะห์ TLC แสดงลายนิ้วมือทางเคมี (chemical fingerprints) ของสารชัดเจนในสารสกัดเมทานอล โดยสรุปสารสกัดด้วยน้ำของดอกเก๊กฮวยขาวและดอกเก๊กฮวยเหลืองมีศักยภาพเป็นสารต้านอนุมูลอิสระจากธรรมชาติ ซึ่งผลการศึกษานี้สามารถใช้เป็นข้อมูลพื้นฐานสำหรับการพัฒนาผลิตภัณฑ์จากดอกเก๊กฮวยในอนาคต
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
บทความที่ได้รับการตีพิมพ์เป็นลิขสิทธิ์ของ วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยอุบลราชธานี
ข้อความที่ปรากฏในบทความแต่ละเรื่องในวารสารวิชาการเล่มนี้เป็นความคิดเห็นส่วนตัวของผู้เขียนแต่ละท่านไม่เกี่ยวข้องกับมหาวิทยาลัยอุบลราชธานี และคณาจารย์ท่านอื่นๆในมหาวิทยาลัยฯ แต่อย่างใด ความรับผิดชอบองค์ประกอบทั้งหมดของบทความแต่ละเรื่องเป็นของผู้เขียนแต่ละท่าน หากมีความผิดพลาดใดๆ ผู้เขียนแต่ละท่านจะรับผิดชอบบทความของตนเองแต่ผู้เดียว
เอกสารอ้างอิง
Halliwell, B. 2013. Free radicals and antioxidants: The basic principles. Medicine. 32(1): 23-28.
Valko, M. and et al. 2007. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 39(1): 44-84.
Yuan, H. and et al. 2020. The flower head of Chrysanthemum morifolium Ramat. (Juhua): A
paradigm of flowers serving as Chinese dietary herbal medicine. Journal of Ethnopharmacology. 261: 113043.
Han, A.R. and et al. 2019. Phytochemical composition and antioxidant activities of two different color chrysanthemum flower teas. Molecules. 24(2): 329.
Mohamad, N.V. and Zahari, C.N.M.C. 2024. Biological activities of Chrysanthemum morifolium and Chrysanthemum indicum: molecular prospective. Journal of Applied Pharmaceutical Science. 14(11): 029-041.
Sinanat, P. and et al. 2021. Biological activities of organic chrysanthemum flower extracts for cosmetic applications. Journal of Research and Promotion in Agriculture. 38(2): 46-56. (in Thai)
Sahoo, M.R. and et al. 2023. FTIR-based metabolomics profiling and fingerprinting of medicinal plants for quality control and standardization of herbal materials. Pharmacognosy Research. 5(1): 163-167.
Noviana, E., Indrayanto, G. and Rohman, A. 2022. Advances in fingerprint analysis for standardization and quality control of herbal medicines. Frontiers in Pharmacology. 13: 853023.
Tangpudtasiri, P. and et al. 2026. The effect of Uvaria rufa fruit extract for antioxidant and anti-melanogenic activities and phytochemical profiling using LC-MS analysis. Journal of Medicinal Food. 29(1): 22-32.
Ratanachamnong, P. and et al. 2023. HPLC analysis and in vitro antioxidant mediated through cell migration effect of C. hystrix water extract on human keratinocytes and fibroblasts. Heliyon. 9(2). e13068.
Saltarelli, R. and et al. 2009. Biochemical characterisation and antioxidant activity of mycelium of Ganoderma lucidum from central Italy. Food Chemistry. 116: 143-151.
Do, Q.D. and et al. 2014. Effect of extraction solvent on total phenol content, total flavonoid content, and antioxidant activity of Limnophila aromatica. Journal of Food and Drug Analysis. 22: 296-302.
Rice-Evans, C.A., Miller, N.J. and Paganga, G. 1997. Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends in Plant Science. 2(4): 152-159.
Shahidi, F. and Ambigaipalan, P. 2015. Phenolics and polyphenolics in foods, beverages and spices: Antioxidant activity and health effects - A review. Journal of Functional Foods. 18: 820-897.
Perron, N.R. and Brumaghim, J.L. 2009. A review of the antioxidant mechanisms of polyphenol compounds related to iron binding. Cell Biochemistry and Biophysics. 53(2): 75-100.
Harborne, J.B. 1998. Phytochemical Methods: A Guide to Modern Techniques of Plant Analysis. 3rd edition. London: Chapman & Hall.
Wagner, H. and Bladt, S. 2001. Plant Drug Analysis: A Thin Layer Chromatography Atlas. 2nd edition. Berlin: Springer-Verlag.
Wongsa, P., Phatikulrungsun, P. and Prathumthong, S. 2022. FT-IR characteristics, phenolic profiles and inhibitory potential against digestive enzymes of 25 herbal infusions. Scientific Reports. 12(1): 663.
