การเปลี่ยนแปลงของสารทุติยภูมิในระหว่างการพัฒนาของกลีบเลี้ยงกระเจี๊ยบแดง (Hibiscus sabdariffa L.)

Main Article Content

ภาณุมาศ ฤทธิไชย
เยาวพา จิระเกียรติกุล
นิชาภา บุญบริวารกุล
อรุณพร อิฐรัตน์

บทคัดย่อ

บทคัดย่อ


กระเจี๊ยบแดง (Hibiscus sabdariffa L.) เป็นพืชสมุนไพรชนิดหนึ่งที่นำกลีบเลี้ยงมาใช้ในการรักษาโรคหลายชนิด ในการหาระยะเวลาที่เหมาะสมเพื่อเก็บเกี่ยวกลีบเลี้ยงเป็นสมุนไพร จึงได้ศึกษาระยะการพัฒนาของกลีบเลี้ยงกระเจี๊ยบแดงและการเปลี่ยนแปลงของสารทุติยภูมิในระหว่างการพัฒนา โดยปลูกกระเจี๊ยบแดง 2 accession ที่มีกลีบเลี้ยงสีแดงเข้ม (HS005) และกลีบเลี้ยงสีส้มแดง (HS013) ผูกดอกบานทุกวัน เก็บเกี่ยวกลีบเลี้ยงเมื่ออายุ 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35 และ 40 วันหลังดอกบาน พบว่ากลีบเลี้ยงกระเจี๊ยบแดงทั้ง 2 accession มีพัฒนาการอย่างรวดเร็วในช่วงอายุ 5 ถึง 20 วันหลังดอกบาน หลังจากนั้นมีการเปลี่ยนแปลงเพียงเล็กน้อย สารทุติยภูมิในกระเจี๊ยบแดง HS005 มีปริมาณสูงกว่า HS013 แต่การเปลี่ยนแปลงของสารทุติยภูมิในระหว่างการพัฒนาของกลีบเลี้ยงกระเจี๊ยบแดงทั้ง 2 accession มีรูปแบบคล้ายกัน โดยปริมาณสารแอนโทไซยานินทั้งหมดมีค่าสูงที่อายุ 5 วันหลังดอกบาน หลังจากนั้นปริมาณค่อย ๆ ลดลง สารประกอบฟีนอลิกทั้งหมดและสารฟลาโวนอยด์ทั้งหมดมีปริมาณเพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่อง และสารทุติยภูมิทั้ง 2 ชนิดนี้มีปริมาณสูงสุดที่อายุ 30 วันหลังดอกบาน ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ DPPH พบว่าไม่มีความแตกต่างกันทางสถิติในแต่ละอายุของการเก็บเกี่ยว จากผลการทดลองพบว่าระยะเวลาที่เหมาะสมในการเก็บเกี่ยวกลีบเลี้ยงกระเจี๊ยบแดงเพื่อทำยาสมุนไพร คือ อายุ 30 วันหลังดอกบาน 


คำสำคัญ : กลีบเลี้ยง; กระเจี๊ยบแดง; แอนโทไซยานิน; ฟีนอลิก; ฟลาโวนอยด์; ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ DPPH

Article Details

ประเภทบทความ
Biological Sciences
ประวัติผู้แต่ง

ภาณุมาศ ฤทธิไชย

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

เยาวพา จิระเกียรติกุล

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

นิชาภา บุญบริวารกุล

สาขาวิชาเทคโนโลยีการเกษตร คณะวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

อรุณพร อิฐรัตน์

สถานการแพทย์แผนไทยประยุกต์ คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์ ศูนย์รังสิต ตำบลคลองหนึ่ง อำเภอคลองหลวง จังหวัดปทุมธานี 12120

เอกสารอ้างอิง

[1] Da-Costa-Rocha, I., Bonnlaender, B., Sievers, H., Pischel, I. and Heinrich, M., 2014, Hibiscus sabdariffa L. – A phytochemical and pharmacological review, Food Chem. 165: 424-443.
[2] Wisetmuen, E., Pannangpetch, P., Kongyingyoes, B., Kukongviriyapan, U., Yutanawiboonchai, W. and Itharat, A., 2013, Insulin secretion enhancing activity of roselle calyx extract in normal and streptozotocin induced diabetic rats, Pharm. Res. 5: 65-70.
[3] Sireeratawong, S., Itharat, A., Khonsung, P., Lertprasertsuke, N. and Jaijoy, K., 2013, Toxicity studies of the water extract from the calyces of Hibiscus sabdariffa L. in rats, Afr. J. Tradit. Complement. Altern. Med. 10: 122-127.
[4] Wong, P.K., Yusof, S., Ghazali, H.M. and Man, Y.B.C., 2002, Physico-chemical characterization of roselle (Hibiscus sabdariffa L.), Nutr. Food Sci. 32: 68-73.
[5] Hussein, R.M., Shahein, Y.E., El Hakim, A.E. and Awad, H.M. 2010, Biochemical and molecular characterization of three colored types of roselle (Hibiscus sabdariffa L.), J. Am. Sci. 6: 726-733.
[6] Mohd-Esa, N., Hern, F.S., Ismail, A. and Yee, C.L., 2010, Antioxidant activity in different parts of roselle (Hibiscus sabdariffa L.) extracts and potential exploitation of the seeds, Food Chem. 122: 1055-1060.
[7] ชนันดา ศรีบุญไทย, ภาณุมาศ ฤทธิไชย, เยาวพา จิระเกียรติกุล และพรชัย หาระโคตร, 2559, พัฒนาการและการสุกแก่ของเมล็ดพันธุ์กระเจี๊ยบแดง, ว.วิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี 24: 333-341.
[8] ภาณุมาศ ฤทธิไชย, ปิยาภัทร์ เข็มวิชัย และเยาวพา จิระเกียรติกุล, 2558, การพัฒนาของดอกและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในดอกพระจันทร์ (Ipomoea alba L.), ว.วิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี 23: 497-506.
[9] อดิศร จำรูญ, พรรณิภา ยั่วยล และบุษรา จ้อยร่อย, 2558, การวิเคราะห์ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในกล้วยหินและกล้วยเล็บมือนาง, ว.พืชศาสตร์สงขลานครินทร์ 2: 38-42.
[10] Christian, K.R. and Jackson, C.J., 2009, Changes in total phenolic and monomeric anthocyanin composition and antioxidant activity of three varieties of sorrel (Hibiscus sabdariffa) during maturity, J. Food Compos. Anal. 22: 663-667.
[11] Chumsri, P., Sirichote, A. and Itharat, A., 2008, Studies on the optimum conditions for the extraction and concentration of roselle (Hibiscus sabdariffa Linn.) extract, Songklanakarin J. Sci. Technol. 30: 133-139.
[12] Lee, J., Durst, R.W. and Wrolstad, R.E., 2005, Determination of total monomeric anthocyanin pigment content of fruit juices, beverages, natural colorants, and wines by the pH differential method: collaborative study, J. AOAC Int. 88: 1269-1278.
[13] Zhu, H., Wang, Y., Liu, Y., Xia, Y. and Tang, T., 2010, Analysis of flavonoids in Portulaca oleracea L. by UV-Vis spectrophotometry with comparative study on different extraction technologies, Food Anal. Methods. 3: 90-97.
[14] Folin, O. and Ciocalteu, V., 1927, On tyrosine and tryptophane determinations in proteins, J. Biol. Chem. 73: 627-650.
[15] Yamasaki, K., Kashimoto, A., Kokusenya, Y., Miyamoto, T. and Sato, T., 1994, Electrochemical method for estimating the antioxidatice effect of methanol feeding, Enzyme Microb. Tech. 36: 133-138.
[16] สุภางค์ เรืองฉาย, 2552, การพัฒนาน้ำพริกมะขามผสมกระเจี๊ยบ, ว.วิชาการ มหาวิทยาลัยหอการค้าไทย 29: 88-101.
[17] Hu, Q.P. and Xu, J.G., 2011, Profiles of carotenoids, anthocyanins, phenolics, and antioxidant activity of selected color waxy corn grains during maturation, J. Agric. Food Chem. 59: 2026-2033.
[18] Oloyede, F.M., Oloyede, F.A. and Obuotor, E.M., 2013, Effect of plant maturity on the antioxidant profile of Amaranthus cruentus L. and Celosia argentea L., Bull. Env. Pharmacol. Life Sci. 2: 18-21.
[19] Policegoudra, R.S., Kumar, M.H.S. and Aradhya, M.S., 2007, Accumulation of bioactive compounds during growth and development of mango ginger (Curcuma amada Roxb.) rhizome, J. Agric. Food Chem. 55: 8105-8111.
[20] Kouakou, T.H., Konkon, N.G., Ayolié, K., Obouayeba, A.P., Abeda Z.H. and Koné, M., 2015, Anthocyanin production in calyx and callus of roselle (Hibiscus sabdariffa L.) and its impact on antioxidant activity, J. Pharmacogn. Phytochem. 4: 9-15.