การยกระดับการเจริญเติบโตของต้นกล้าข้าวด้วยการแช่เมล็ดพันธุ์ด้วยจุลินทรีย์สังเคราะห์แสง
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาครั้งนี้เป็นการทดสอบผลของการแช่เมล็ดด้วยจุลินทรีย์สังเคราะห์แสงต่อการเจริญเติบโตของต้นกล้าข้าวเปรียบเทียบกับการแช่ในน้ำเปล่า วางแผนการทดลองแบบ 6x2 Factorial in CRD จำนวน 3 ซ้ำ มี 2 ปัจจัย คือกรรมวิธีการแช่ที่แตกต่างกัน 6 กรรมวิธี และพันธุ์ที่แตกต่างกัน 2 พันธุ์ กรรมวิธีที่ต่างกันประกอบด้วย แช่น้ำธรรมดา 24 ชั่วโมง (T1) แช่น้ำธรรมดา 48 ชั่วโมง (T2) แช่น้ำจุลินทรีย์สังเคราะห์แสงที่เจือจางแล้ว อัตราส่วน 1:10, V/V 24 ชั่วโมง (T3) แช่น้ำจุลินทรีย์สังเคราะห์แสงที่เจือจางแล้ว อัตราส่วน 1:10, V/V 48 ชั่วโมง (T4) แช่น้ำจุลินทรีย์สังเคราะห์แสงที่เจือจางแล้ว อัตราส่วน 1:20, V/V 24 ชั่วโมง (T5) และ แช่น้ำจุลินทรีย์สังเคราะห์แสงที่เจือจางแล้ว อัตราส่วน 1:20, V/V 48 ชั่วโมง (T6) และพันธุ์ที่ใช้ต่างกัน 2 พันธุ์คือ กข6 และ กข15 แบ่งการทดสอบออกเป็น 2 ส่วนคือ ทดสอบความงอกด้วยวิธี top of paper ในห้องปฏิบัติการและทดสอบความงอกในถาดเพาะในโรงเรือนปลูกพืช ผลการทดลองพบว่า ทุกกรรมวิธีให้ความงอกเท่ากันที่ 100 เปอร์เซ็นต์ (p >0.05) อย่างไรก็ตาม ผลการทดสอบพบว่า ความยาวต้นและความยาวรากต้นกล้าที่ทดสอบการงอกด้วยวิธี top of paper และความยาวต้นกล้าและความเขียวใบที่ทดสอบในถาดเพาะ มีความแตกต่างกันในแต่ละกรรมวิธีอย่างมีนัยสำคัญยิ่ง (p <0.001) การทดสอบการงอกโดยวิธี top of paper พบว่า กรรมวิธีที่แช่ด้วยจุลินทรีย์สังเคราะห์แสงเจือจางที่ อัตราส่วน 1:20, V/V 48 ชั่วโมง ให้ความยาวต้นและความยาวรากของต้นกล้าที่อายุ 7 วัน สูงที่สุดคือ 9.03 และ 7.55 เซนติเมตร ตามลำดับ ในขณะที่กรรมวิธีที่แช่ในน้ำเปล่าให้ค่าความยาวต้นและความยาวรากเพียง 4.41 และ 4.50 เซนติเมตร ตามลำดับ ซึ่งสอดคล้องกับความยาวต้นกล้าและค่าความเขียวใบของต้นกล้าที่อายุ 14 วันที่ทดสอบในถาดเพาะ พบว่า กรรมวิธีนี้ให้ค่าความยาวต้นกล้าและค่าความเขียวใบเท่ากับ 19.96 เซนติเมตร และ 17.03 SPAD-unit ในขณะที่กรรมวิธีที่แช่ด้วยน้ำเปล่าให้ค่าความยาวต้นกล้าและค่าความเขียวเพียง 7.93 เซนติเมตร และ 3.64 SPAD-unit จากผลที่กล่าวมา แสดงให้เห็นว่า การใช้จุลินทรีย์สังเคราะห์แสงในการแช่เมล็ดพันธุ์ข้าวสามารถส่งเสริมการเจริญเติบโตของต้นกล้าได้
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
Akram, N. A. and M. Ashraf. 2013. Regulation in plant stress tolerance by a potential plant growth regulator, 5-aminolevulinic acid. Journal of Plant Growth Regulation 32: 663-679.
Basra, S. M. A., M. Farooq, R. Tabassam and N. Ahmad. 2005. Physiological and biochemical aspects of pre-sowing seed treatments in fine rice (Oryza sativa L.). Seed Science and Technology 33(3): 623-628.
Chatchavanthatri, N., T. Junyusen, P. Moolkaew, W. Arjharn and P. Junyusen. 2020. Effect of soaking and sprouting treatment on germination rate of paddy. EDP Sciences 187: 04016.
Farooq, M., S. M. A. Basra, I. Afzal and A. Khaliq. 2006. Optimization of hydropriming techniques for rice seed invigoration. Seed Science and Technology 34(2): 507-512.
Hsu, S. H., M. W. Shen, J. C. Chen, H. S. Lur and C. T. Liu. 2021. The photosynthetic bacterium Rhodopseudomonas palustris strain PS3 exerts plant growth-promoting effects by stimulating nitrogen uptake and elevating auxin levels in expanding leaves. Frontiers in plant science 12: 573634.
International Seed Testing Association. 2014. International rules for seed testing 2014-2015. Zurichstr International Seed Testing Association (ISTA), Switzerland.
Liu, X. Y., X.-Y. Xu, Q.-L. Ma and W.-H. Wu. 2005. Biological formation of 5-aminolevulinic acid by photosynthetic bacteria. Journal of Environmental Sciences (China) 17(1): 152-155.
Lu, H., G. Zhang, S. He, C. Peng and Z. Ren. 2020. Production of photosynthetic bacteria using organic wastewater in photobioreactors in lieu of a culture medium in fermenters: From lab to pilot scale. Journal of Cleaner Production 259: 120871.
Lu, H., G. Zhang, T. Wan and Y. Lu. 2011. Influences of light and oxygen conditions on photosynthetic bacteria macromolecule degradation: different metabolic pathways. Bioresource Technology 102(20): 9503-9508.
Luo, L., P. Wang, Z. Zhai, P. Su, X. Tan, D. Zhang, Z. Zhang and Y. Liu. 2019. The effects of Rhodopseudomonas palustris PSB06 and CGA009 with different agricultural applications on rice growth and rhizosphere bacterial communities. 9(1): 173. AMB Express.
Maeda, I. 2022. Potential of Phototrophic Purple Nonsulfur Bacteria to Fix Nitrogen in Rice Fields. Microorganisms 10(1): 28.
Ng, L., M. Sariah, O. Sariam, O. Radziah and M. A. Zainal Abidin. 2012. Rice seed bacterization for promoting germination and seedling growth under aerobic cultivation system. Australian Journal of Crop Science 6(1): 170-175.
Sakarika, M., J. Spanoghe, Y. Sui, E. Wambacq, O. Grunert, G. Haesaert, M. Spiller and S. E. Vlaeminck. 2020. Purple non-sulphur bacteria and plant production: benefits for fertilization, stress resistance and the environment. Microbial Biotechnology 13(5): 1336-1365.
Teerak, W., W. Samranram and T. Rattanakaew. 2020. Effects of using photosynthetic bacteria combined with bio-extract on growth and yield of RD43 rice variety grown under organic system. Journal of Agricultural Research and Extension 37: 25-35. [in Thai]
Tokhun, N. and K. Worawut. 2021. Effects of different soaking techniques on germination and seed vigor of Kaowong Kalasin and Pathum Thani 1 glutinous rice varieties. Khon Kaen Agriculture Journal 49(1): 942-948. [in Thai]
Vareeket, R., and K. Soytong. 2016. Screening of Photosynthetic Bacteria, Rhodospirllum centenum for Stimulation of Rice Seed Germination. International Journal of Agricultural Technology 12(7.1): 1451-1455.
Wang, Y., S. Peng, Q. Hua, C. Qiu, P. Wu, X. Liu and X. Lin. 2021. The long-term effects of using phosphate-solubilizing bacteria and photosynthetic bacteria as biofertilizers on peanut yield and soil bacteria community. Frontiers in Microbiology 12: 693535.
