การชักนำแคลลัสและยอดของมันเทศญี่ปุ่นสีม่วงในสภาพปลอดเชื้อ
Main Article Content
บทคัดย่อ
มันเทศญี่ปุ่นสีม่วงได้รับความนิยมเนื่องจากรสชาติของหัวที่มีความอร่อย มีวิตามิน มีสารแอนโทไซยานิน และน้ำตาลสูง เป็นที่ต้องการของผู้บริโภค อย่างไรก็ตามในการปลูกเกษตรกรยังประสบปัญหาเรื่องคุณภาพของท่อนพันธุ์ และต้นทุนของท่อนพันธุ์นำเข้าที่มีราคาสูง ดังนั้น การทดลองนี้จึงได้นำเทคนิคการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืชมาชักนำให้เกิดแคลลัส และการชักนำยอดในมันเทศญี่ปุ่นสีม่วง วางแผนการทดลองแบบ CRD การศึกษาการชักนำแคลลัสโดยการเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนใบและหัวบนอาหารแข็งสูตร MS ที่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโต BA ความเข้มข้น 1.0 และ 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร ร่วมกับ NAA ความเข้มข้น 0.1 0.5 และ 1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร และมีชุดการทดลองที่ไม่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโตเป็นชุดควบคุม เป็นระยะเวลา 5 สัปดาห์ ส่วนการศึกษาการชักนำยอดโดยใช้ชิ้นส่วนข้อมาเพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร MS ที่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโต BA ความเข้มข้น 0 0.25 0.5 1.0 1.5 และ 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร เป็นระยะเวลา 5 สัปดาห์ จากการทดลอง พบว่า การเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนหัวบนอาหารแข็งสูตร MS ที่เติม BA ความเข้มข้น 1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร ร่วมกับ NAA ความเข้มข้น 1.0 มิลลิกรัมต่อลิตร สามารถสร้างแคลลัสได้ 100 เปอร์เซ็นต์ มีขนาดแคลลัสสูงสุด 1.51 เซนติเมตร ส่วนชิ้นส่วนใบที่เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร MS ที่เติม BA ความเข้มข้น 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร ร่วมกับ NAA ความเข้มข้น 0.1 มิลลิกรัมต่อลิตร สามารถสร้างแคลลัสได้ 100 เปอร์เซ็นต์ แคลลัสที่ได้มีขนาด 1.33 เซนติเมตร การชักนำยอดจากชิ้นส่วนข้อที่เพาะเลี้ยงบนอาหารแข็งสูตร MS ปราศจากสารควบคุมการเจริญเติบโต พบว่า สามารถสร้างยอดที่มีความยาวยอดสูงสุด 2.66 เซนติเมตร และมีเปอร์เซ็นต์การเกิดยอด 80 เปอร์เซ็นต์ ผลจากการศึกษาสามารถนำไปใช้เพื่อการผลิตต้นพันธุ์ที่มีคุณภาพ และปริมาณเพียงพอในการผลิตมันเทศญี่ปุ่นต่อไป
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
Afshari, R. T., R. Angoshtari and S. Kakantari. 2011. Effects of light and different plant growth regulators on induction of callus growth in rapeseed (Brassica napus L.) genotypes. Plant Omics Journal 4(2): 60-67.
Alula, K., H. Zeleke and M. Manikandan. 2018. In vitro propagation of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam) through apical meristem culture. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry 7(1): 2386-2392.
Benjamin, E. D., G. A. Ishaku, F. A. Peingurta and A. S. Afolabi. 2019.Callus culture for the production of therapeutic compounds. American Journal of Plant Biology 4(4): 76-84.
Beyene, B., T. Menamo and G. Haile. 2020. Protocol optimization for in vitro propagation of Kulfo, orange flesh sweet potato (Ipomoea batatas) variety using shoot tip culture. African Journal of Plant Science 14(10): 395-401.
Cai, Z., L. Song, B. Qian, W. Xu, J. Ren, P. Jing and I. Oey. 2018. Understanding the effect of anthocyanins extracted from purple sweet potatoes on alcohol-induced liver injury in mice. Food Chemistry 245: 463-470.
Chanchula, N. and P. Pimonrat. 2020. Influence of BA and duration times of feeding in temporary immersion bioreactor on micropropagation of Alocasia sanderiana Bull. in vitro. Thai Journal of Science and Technology 9(5): 642-649.
Chen, H., J. Sun, J. Liu, Y. Gou, X. Zhang, X. Wu, R. Sun, S. Tang, J. Kan, C. Qian, N. Zhang and C. Jin. 2019. Structural characterization and anti-inflammatory activity of alkali-soluble polysaccharides from purple sweet potato. International Journal of Biological Macromolecules 131: 484-494.
Dewir, Y. H., A. A. Aldubai, M. M. Kher, A. A. Alsadon, S. El-Hendawy and N. A. AI-Suhaibani. 2020. Optimization of media formulation for axillary shoot multiplication of the red-peeled sweet potato (Ipomoea batatas [L.] Lam.) 'Abees’. Chilean Journal of Agricultural Research 80(1): 3-11.
El-Afifi, S. T., M. M. Zaghloul, W. A. El Saady and S. Fatma Mosaad. 2012. Using tissue culture technique in micropropagation of sweet potato (ipomoea batatas). Journal of Plant Production 3(7): 2201 -2209.
Fadaladeen, L. H., R. S. Toma, A. A. Saheen and H.B. Ahmed. 2022. A rapid micropropagation protocol for sweet potato (Ipomoea batatas L.) via tissue culture technique. Diyala Agricultural Sciences Journal 14(1): 31-39.
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO).2019.Moving forward on food loss and waste reduction. The State of Food and Agriculture. Available: https://www.fao.org/3/ca6030en/ca6030en.pdf (October 27, 2024).
George, E. F. and P. D. Sherrington. 1984. Plant propagation by tissue culture: handbook and directory of commercial laboratories, Exegetics, Ltd., London.
Getu, T. and T. Feyissa. 2012. In vitro regeneration of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) Convolvulaceae, from leaf and petiole explants. Ethiopian Journal of Biological Sciences 11(2): 147-162.
Harada, K., M. Kano, T. Takayanagi, O. Yamakawa and F. Ishikawa. 2004. Absorption of acylated anthocyanins in rats and humans after ingesting an extract of Ipomoea batatas purple sweet potato tuber. Bioscience, Biotechnology and Biochemistry 68(7): 1500-1507.
Jang, H. H., H. W. Kim, S. Y. Kim, S. M. Kim, J. B. Kim and Y. M. Lee. 2019. In vitro and in vivo hypoglycemic effects of cyaniding 3-caffeoyl-phydroxybenzoylsophoroside-5-glucoside, an anthocyanin isolated from purple-fleshed sweet potato. Food Chemistry 272: 688-693.
Kamal, M. M., M. H. Rahman and M. S. Haque. 2013. Effect of growth regulator on regeneration of sweet potato (Ipomoea batatas L.). Journal of Environmental Science and Natural Resources 6(2): 197-200.
Kano, M., T. Takayanagi, K. Harada, K. Makino and F. Ishikawa. 2005. Antioxidative activity of anthocyanins from purple sweet potato, Ipomoea batatas cultivar Ayamurasaki. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry 69(5): 979-988.
Kumalaningsih, S. 2006. Natural antioxidants: Free radicals. Trubus Agrisana., Surabaya. [in Indonesia]
Mbinda, W., S. Anami, O. Ombori, C. Dixelius and R. Oduor. 2016. Efficient plant regeneration of selected kenyan sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) cultivars through somatic embryogenesis. Journal of Tissue Science and Engineering 7(2): 1-6.
Mok, D. W.S. and M.C. Mok. 1994. Cytokinins: Chemistry, activity and functions. CRC Press. Inc., Florida. p. 129-137.
Nokam, N., P. Yusuk and N. Boonmala. 2016. Participatory research trial technology of royal project in vegetables production on highland area. Final report. Highland Research and Development Institute (Public Organization), Chiang Mai. [in Thai]
Nokam, N., P. Yusuk, N. Boonmala, C. Kabbua and N. Kamnu. 2023. The evaluation of suitable varieties and planting technology of sweet potato on highland. Final report. Highland Research and Development Institute (Public Organization), Chiang Mai. [in Thai]
Salah, E. M., M. A. Eissa and F. A. El-Feky. 2024. In vitro calli developing and characterizing from sweet potato (Ipomoea batatas) to maximize secondary metabolites production. Al-Azhar Journal of Agricultural Research 49(1): 149-155.
Sukamto, L. A., M. Mujiono, D. Djukri and V. Henuhili. 2011. Shoot tip culture of Nepenthes albomarginata Lobb ex Lindl. in vitro. Journal Biologi Indonesia, 7(2): 251-261.
Sunaryo, W., D. Darnaningsih and N. Nurhasanah. 2019. Selection and regeneration of purple sweet potato calli against drought stress simulated by polyethylene glycol. F1000Research 8: 1-10.
Taha, A. J. 2016. Callus induction and plant regeneration of Cordia myxa L. via tissue culture system. International Journal of Pharmacy and Integrated Life Sciences 4(5): 18-29.
Tang, C., J. Sun, J. Liu, C. Jin, X. Wu, X. Zhang, H. Chen, Y. Gou, J. Kan, C. Qian and N. Zhang. 2019. Immune enhancing effects of polysaccharides from purple sweet potato. International Journal of Biological Macromolecules 123: 923-930.
Thao, N. T. P., I. Miyajima, K. Ureshino, Y. Ozak and H. Okubo. 2003. Micropropagation of ornamental Alocasia, Journal of the Faculty of Agriculture, Kyushu University 47(2): 277-282.
Wang, L., Y. Zhao, Q. Zhou, C. L. Luo, A. P. Deng, Z. C. Zhang and J. L. Zhang. 2017. Characterization and hepatoprotective activity of anthocyanins from purple sweet potato (Ipomoea batatas L. cultivar Eshu No. 8). Journal of Food and Drug Analysis 25(3): 607-618.
Werner, T. and T. Schmülling. 2009. Cytokinin action in plant development. Current opinion in plant biology, 12(5): 527-538.
Wu, Q., H. Qu, J. Jia, C. Kuang, Y. Wen, H. Yan and Z. Gui. 2015. Characterization, antioxidant and antitumor activities of polysaccharides from purple sweet potato. Carbohydrate Polymers 132: 31-40.
Yoshimoto, M., S. Okuno, M. Yamaguchi and O. Yamakawa. 2001. Antimutagenicity of deacylated anthocyanins in purple-fleshed sweet potato. Bioscience, Biotechnology and Biochemistry 65(7): 1652-1655.
Zhuang, J., J. Lu, X. Wang, X. Wang, W. Hu, F. Hong, X. X. Zhao and Y. L. Zheng. 2019. Purple sweet potato color protects against high-fat diet-induced cognitive deficits through AMPK-mediated autophagy in mouse hippocampus. The Journal of Nutritional Biochemistry 65: 35-45.