การใช้ข้าวโพดมอลต์หมักยีสต์ร่วมกับเปลือกข้าวโพดหมักยีสต์และกรดแลคติค โดยใช้เทคนิคผลผลิตแก๊สในห้องปฏิบัติการ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
วัตถุประสงค์เพื่อศึกษาการใช้วัตถุดิบข้าวโพดมอลต์หมักยีสต์ร่วมกับเปลือกข้าวโพดที่ผ่านการหมักยีสต์และจุลินทรีย์ แลคติค ในสูตรอาหารที่มีผลต่อองค์ประกอบทางเคมี ผลผลิตแก๊สที่หมักย่อยและค่าความสามารถในการย่อยโดยเทคนิคในห้องปฏิบัติการ โดยวางแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ (Completely randomized design, CRD) แบ่งปัจจัยการศึกษาออกเป็น 5 ปัจจัย ดังนี้ ทรีทเมนต์ 1 สูตรอาหารข้าวโพดบด : เปลือกข้าวโพดหมักด้วยยีสต์และจุลินทรีย์แลคติค สัดส่วน 50 : 50 ทรีทเมนต์ 2 สูตรอาหารข้าวโพดมอลต์หมักยีสต์ : เปลือกข้าวโพดหมักด้วยยีสต์และจุลินทรีย์แลคติค สัดส่วน 50 : 50 ทรีทเมนต์ 3 สูตรอาหารข้าวโพดมอลต์หมักยีสต์ : เปลือกข้าวโพดหมักด้วยยีสต์และจุลินทรีย์แลคติค สัดส่วน 60 : 40 ทรีทเมนต์ 4 สูตรอาหารข้าวโพดมอลต์หมักยีสต์ : เปลือกข้าวโพดหมักด้วยยีสต์และจุลินทรีย์แลคติค สัดส่วน 70 : 30 และทรีทเมนต์ 5 สูตรอาหารข้าวโพดมอต์ลหมักยีสต์ : เปลือกข้าวโพดหมักด้วยยีสต์และจุลินทรีย์แลคติค สัดส่วน 80 : 20 พบว่า ค่าองค์ประกอบทางเคมี ได้แก่ วัตถุแห้ง มีค่าเท่ากับ 64.99 53.55 51.49 50.99 และ 50.15 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ โปรตีน มีค่าเท่ากับ 13.50 14.20 14.50 15.20 และ 15.70 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ และค่าการย่อยได้ของวัตถุแห้ง (in vitro dry matter digestibility, IVDMD) ที่บ่ม 24 ชั่วโมงของอาหารทั้ง 5 สูตร มีค่าเท่ากับ 65.80 69.25 72.93 73.35 และ 76.70 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ และ บ่มที่ 48 ชั่วโมง มีค่าเท่ากับ 70.70 73.50 78.38 79.33 และ 81.55 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ (P < 0.01) และการย่อยได้ของอินทรียวัตถุ (in vitro organic matter digestibility, IVOMD) ที่บ่ม 24 ชั่วโมงมีค่าเท่ากับ 94.85 95.98 95.97 96.55 และ 97.28 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ (P < 0.01) บ่มที่ 48 ชั่วโมง มีค่าเท่ากับ 96.70 96.41 95.97 97.20 และ 97.28 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ แตกต่างกันอย่างไม่มีนัยสำคัญทางสถิติ (P > 0.05) ผลจากการทดลองแสดงให้เห็นว่าข้าวโพดมอลต์หมักยีสต์ร่วมกับผลพลอยได้ทางการเกษตรจากเปลือกข้าวโพดที่ผ่านการหมักร่วมกับยีสต์และกรด แลคติค เมื่อมีชั่วโมงการบ่มอาหารในรูเมนนานขึ้น มีผลต่อค่าความสามารถในการย่อยได้ของวัตถุแห้ง และการย่อยได้อินทรียวัตถุก็จะเพิ่มสูงขึ้น
Article Details
References
Adedokun, S. A., Jaynes, P., Payne, R. L., & Applegate, T. J. (2015). Standardized ileal amino acid digestibility of corn, corn distillers’ dried grains with solubles, wheat middlings, and bakery by-products in broilers and laying hens. Poultry Science, 94(10), 2480–2487. doi: 10.3382/ps/pev226
Association of Official Analytical Chemists (AOAC). (2000). Official methods of analysis (17thed.). Arlington, Virginia, United States: Association of Official Analytical Chemists.
Bourapa, R., Kuha, K., Sintala, K., Srakaew, W., & Supphakitchanon, T. (2021). Effect of modified grain corn using different processing as energy source in total mixed ratio on rumen fluid degradability and metabolizable energy using in vitro gas production technique. Khon Kaen Agriculture Journal, 49(5), 1080-1091. doi: 10.48048/tis.2023.7060 (in Thai)
Bureenok, S., Tamaki, M., Kawamoto, Y., & Nakada, T. (2007). Additive effects of green tea on fermented juice of epiphytic lactic acid bacteria (FJLB) and the fermentative quality of Rhodesgrass silage. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 20(6), 920-924. doi: 10.5713/ajas.2007.920
Cerrilla, M. E. O., & Mendoza, G. M. (2003). Starch digestion and glucose metabolism in the ruminant: a review. Interciencia, 28(7), 380-386. doi: 0378-1844/03/07/380-07
Getachew, G., Crovetto, G. M., Fondevila, M., Krishnamoorthy, U., Singh, B., Spanghero, M., Steingass, H., Robinson, P. H., & Kailas, M. M. (2002). Laboratory variation of 24 h in vitro gas production and estimated metabolizable energy values of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology, 102(1-4), 169-180. doi: 10.1016/S0377-8401(02)00212-2
Goering, H. K., & Van Soest, P. J. (1970). Forage fiber analyses (apparatus, reagents, procedures, and some applications). Washington, D. C., United States: U.S.D.A. Agricultural Research Service.
Harris, L. E., Kearl, L. C., & Fonnesbeck, P. V. (1972). Use of regression equations in predicting availability of energy and protein. Journal of Animal Science, 35(3), 658-680. doi: 10.2527/jas1972.353658x
Hynes, S. H., Kjarsgaard, D. M., Thomas, K. C., & Ingledew, W. M. (1997). Use of virginiamycin to control the growth of lactic acid bacteria during alcohol fermentation. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 18, 284-291. doi: 10.1038/sj.jim.2900381
Lee, S. Y., Kim, W. Y., Ko, J. Y., & Ha, J. K. (2002). Effects of corn processing on in vitro and in situ digestion of corn grain in Holstein steers. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 15(6), 851-858. doi: 10.5713/ajas.2002.851
Lunsin, R., Sokantat D., & Manop, J. (2021). Improving the nutritive values of corn dust by urea and molasses treatment as ruminant feed. Khon Kaen Agriculture Journal, 48(Suppl.1), 517-521.
Markkar, H. P., Blümmel, M., & Becker, K. (1995). Formation of complexes between polyvinyl pyrrolidones or polyethylene glycols and tannins, and their implication in gas production and true digestibility in in vitro techniques. The British Journal of Nutrition, 73(6), 897-913. doi: 10.1079/bjn19950095
Mathew, S., Sagathevan, S., Thomas, J., & Mathen, G. (1997). An HPLC method for estimation of volatile fatty acids of ruminal fluid. The Indian Journal of Animal Sciences, 67(9), 805-807.
McNiven, M. A., Weisbjerg, M. R., & Hvelplund, T. (1995). Influence of roasting or sodium hydroxide treatment of barley on digestion in lactating cows. Journal of Dairy Science, 78(5), 1106-1115. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(95)76727-3
Menke, K. H., & Steingass, H. (1988). Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research and Development, 28(1), 7-55.
Nocek, J. E., & Tamminga, S. (1991). Site of digestion of starch in the gastrointestinal tract of dairy cows and its effect on milk yield and composition. Journal of Dairy Science, 74(10), 3598-3629. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(91)78552-4
Owens, F. H., & Zinn, R. A. (2005). Corn grain for cattle: Influence of processing on site and extent of digestion. Proceeding of Southwest nutrition conference (pp. 86-112). Tucson, Arizona, United States: University of Arizona.
Ørskov, E. R., & McDonald, I. (1979). The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. The Journal of Agricultural Science, 92(2), 499-503. doi: 10.1017/S0021859600063048
Statistical Analysis System (SAS). (1998). SAS/STAT user’ guide. North Carolina, United States: SAS Institute Inc.
Sommart, K. (1998). The use of cassava in ruminant diets based on low quality roughages. (Doctoral dissertation). Newcastle, England. University of Newcastle.
Srakaew, W., Leepradit, P., Chaiwong, S., Boarapa, R., Sintala, K., & Kuha, K. (2021). Ensiling corn malt on chemical composition and gas production kinetic by using in vitro gas production technique. Khon Kaen Agriculture Journal, 48(suppl 1), 496-501. (in Thai)
Thongnum, A., Khongphetsak, P., Sarkaew, W., Poojit, S., Potirahong, S., & Wachirapakorn, C. (2018). Effects of fiber feed improvement with urea on chemical composition and kinetic ruminal gas production of both rice straw and sugar cane top. Proceeding of the 7th national animal science conference of Thailand 2018 (pp. 126-134). Chiangmai, Thailand: Maejo University. (in Thai).
Van Soest, P. J., Robertson, J. B., & Lewis, B. A. (1991). Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber and non starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science, 74(10), 3583-3597. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(91)78551-2
Wanapat, M., & Pimpa, O. (1999). Effect of ruminal NH3-N levels on ruminal fermentation, purine derivatives, digestibility and rice straw intake in swamp buffaloes. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 12(6), 904-907. doi: 10.5713/ajas.1999.904