การเสริมเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามในอาหารไก่พ่อพันธุ์ต่อประสิทธิภาพทางการสืบพันธุ์ และการเก็บรักษาน้ำเชื้อแบบแช่เย็น
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การทดลองนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของการเสริมเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามในอาหารต่อคุณภาพน้ำเชื้อไก่พ่อพันธุ์ โดยนำเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามมาทำการสกัดด้วยวิธีสเปรย์ดราย จากนั้นนำไปศึกษาปริมาณฟีนอลและปริมาณฟีนอลิคทั้งหมดที่ 7435.08 mg/g DM และ 503.95 mg/g DM และศึกษาการต้านการเกิดปฏิกิริยาออกซิเดชัน ด้วยวิธี radical scavenging capacity assay, ferric reducing (FRAP) assay (3538.56 μM FeSO4/ml), 2,2-di-phenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) (85.70 เปอร์เซ็นต์) และ Trolox equivalent antioxidant capacity (TEAC) (69.81 เปอร์เซ็นต์) พบว่าเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามมีการต้านการเกิดปฏิกิริยาออกซิเดชันที่สูง และนำไปเป็นส่วนผสมในอาหารไก่ วางแผนการทดลองแบบสุ่มในบล็อกสมบูรณ์ Randomize Complete Block Design (RCBD) ทำการศึกษาโดยใช้พ่อพันธุ์ไก่พื้นเมืองไทย จำนวน 24 ตัว อายุเฉลี่ย 1-1.5 ปี โดยแบ่งกลุ่มทดลองออกเป็น 4 กลุ่ม ที่มีการเสริมเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามในอาหาร ที่ระดับ 0 0.3 0.6 และ 0.9 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร ทำการรีดเก็บน้ำเชื้อสัปดาห์ละ 2 ครั้ง เป็นเวลา 6 สัปดาห์ และทำการเก็บรักษาน้ำเชื้อไก่พ่อพันธุ์ที่อุณหภูมิ 5 และ 25 องศาเซลเซียส เป็นระยะเวลา 0 12 และ 24 ชั่วโมง และประเมินคุณภาพน้ำเชื้อ อัตราการเคลื่อนที่ทั้งหมด อัตราการเคลื่อนที่ไปข้างหน้า และอัตราการรอดชีวิต ผลการศึกษาพบว่า การเสริมเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามที่ 0.6 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร มีอัตราการเคลื่อนที่ทั้งหมด อัตราการเคลื่อนที่ไปข้างหน้า และอัตราการรอดชีวิตของน้ำเชื้อไก่พ่อพันธุ์ที่ทำการเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 5 และ 25 องศาเซลเซียส เป็นระยะเวลา 0 12 และ 24 ชั่วโมง สูงกว่ากลุ่มอื่น ๆ (p< 0.05) การศึกษานี้แสดงให้เห็นว่าการเสริมเยื่อหุ้มเปลือกเมล็ดมะขามในอาหารระดับ 0.6 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร สามารถเพิ่มคุณภาพน้ำเชื้อสดทั้งด้านการเคลื่อนที่และอัตราการรอดชีวิต ให้เหมาะสมต่อการนำไปเก็บรักษาหรือการผสมเทียมได้
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Boonkum, W., Duangjinda, M., Kananit, S., Chankitisakul, V., & Kenchaiwong, W. (2021). Genetic effect and growth curve parameter estimation under heat stress in slow-growing Thai native chickens. Veterinary Sciences, 8(12), 297. doi: 10.3390/vetsci8120297.
Bréque, C., Surai, P., & Brilard, J. -P. (2003). Roles of antioxidants on prolonged storage of avian spermatozoa in vivo and in vitro. Molecular Reproduction and Development, 66(3), 314-323. doi: 10.1002/mrd.10347.
Çalişlar, S. (2018). Effects of tannins on poultry nutrition. Kahramanmaraş Sütçü İmam University Journal of Agriculture and Nature, 21(4), 615-623. doi: 10.18016/ksudobil.359982.
Chen, Z., Zhang, J. R., Zhou, Y. W., Liang, C., & Jiang, Y. Y. (2015). Effect of heat stress on the pituitary and testicular development of Wenchang chicks. Archives Animal Breeding, 58(2), 373-378. doi: 10.5194/aab-58-373-2015.
Chuaychu-noo, N., Thananurak, P., Boonkum, W., Vongpralub, T., & Chankitisakul, V. (2021). Effect of organic selenium dietary supplementation on quality and fertility of cryopreserved chicken sperm. Cryobiology, 98, 57-62. doi: 10.1016/j.cryobiol.2020.12.008.
Donoghue, A. M., & Wishart, G. J. (2000). Storage of poultry semen. Animal Reproduction Science, 62(1–3), 213-232 doi: 10.1016/S0378-4320(00)00160-3.
Fouad, A. M., El-Senousey, H. A. K., Ruan, D., Xia, W., Chen, W., Wang, S., & Zheng C. (2020). Nutritional modulation of fertility in male poultry. Poultry Science, 99(11), 5637-5646. doi: 10.1016/j.psj.2020.06.083.
Kheawkanha, T., Chankitisakul, V., Thananurak, P., Pimprasert, M., Boonkum, W., & Vongpralub, T. (2023). Solid storage supplemented with serine of rooster semen enhances higher sperm quality and fertility potential during storage at 5 °C for up to 120 h. Poultry Science, 102(6), 102648 doi: 10.1016/j.psj.2023.102648.
Loengbudnark, W., Chankitisakul, V., & Boonkum, W. (2023) The genetic impact of heat stress on the egg production of Thai native chickens (Pradu Hang dum). PLoS One, 18(2), e0281328. doi: 10.1371/journal.pone.0281328.
Ly, C. J., Yockell-Leliévre, Z. M., Ferraro, J. T., Arnason, J., Ferrier, J., & Gruslin, A. (2015). The effects of dietary polyphenols on reproductive health and early development. Human Reproduction Update, 21(2), 228-248. doi: 10.1093/humupd/dmu058. (
Partyka, A., Łukaszewicz, E., & Nizanski, W. (2012). Effect of cryopreservation on sperm parameters, lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity in fowl semen. Theriogenology, 77(8), 1497-1504. doi: 10.1016/j.theriogenology.2011.11.006.
Ramamoorthy, P. K., & Bono, A. (2007). Antioxidant activity, total phenolic and flavonoid content of morinda citrifolia fruit extracts from various extraction processes. Journal of Engineering Science and Technology, 2(1), 70-80.
Ros-Santaella, J. L., & Pintus, E. (2021). Plant extracts as alternative additives for sperm preservation. Antioxidants, 10, 772. doi: 10.3390/antiox10050772.
Sánchez-Moreno, C., Larrauri, J. A., & Saura-Calixto, F. (1999). Free radical scavenging capacity and inhibition of lipid oxidation of wines, grape juices and related polyphenolic constituents. Food Research International, 32(6), 407-412. doi: 10.1016/S0963-9969(99)00097-6.
Sandesh, P., Velu, V., & Singh, R. P. (2014). Antioxidant activities of tamarind (Tamarindus Indica) seed coat extracts using in vitro and in vivo models. Journal of Food Science and Technology, 51(9), 1965-1973. doi: 10.1007/s13197-013-1210-9.
SAS. (1997). SAS/STAT user’s guide: Version 6.12.(4 th ed.). Carry, North Carolina, United States: SAS Institute Inc.
Schramm, G. P. (1991). Suitability of different cryoprotectants for cock semen. Monatshefte für Veterinärmedizin, 46, 438-440.
Silberstein, T., Har-Vardi, I., Harlev, A., Friger, M., Hamou, B., Barac, T., Levitas, E., & Saphier, O. (2016). Antioxidants and polyphenols: concentrations and relation to male infertility and treatment success. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 9140925. doi: 10.1155/2016/9140925
Simões, R., Feitosa, W. B., Siqueira, A. F. P., Nichi, M., Paula-Lopes, F. F., Marques, M. G., Peres, M. A., Barnabe, V. H., Visintin, J. A., & Assumpção, M. E. O. (2013). Influence of bovine sperm DNA fragmentation and oxidative stress on early embryo in vitro development outcome. Reproduction, 146, 433–441. doi: 10.1530/REP-13-0123.
Sinchaiyakit, P., Ezure, Y., Sriprang, S., Pongbangpho, S., Povichit, N., & Suttajit, M. (2011). Tannins of tamarind seed husk: preparation, structural characterization, and antioxidant activities. Natural Product Communications, 6(6), 829-834. doi: 10.1177/1934578X1100600619.
Sittikijyothin, W., & Cherdwongcharoensuk, D. (2011). Free radical scavenging activity of seed coat extracts
of sweet and sour tamarinds. Burapha Science Journal, 16(1), 47-55. (in Thai)
Suksomtip, M., & Pongsamart, S. (2008). Protective effect against oxidation of human low-density lipoprotein and plasmid DNA strand scission of Tamarind seed coat extract in vitro. Food Science and Technology, 41(10), 2002-2007. doi: 10.1016/j.lwt.2008.01.018.
Thananurak, P., Chuaychu-noo, N., Thélie, A., Phasuk, Y., Vongpralub, T., & Blesbois, E. (2019). Sucrose increases the quality and fertilizing ability of cryopreserved chicken sperms in contrast to raffinose. Poultry Science, 98(9), 4161-4171. doi: 10.3382/ps/pez196.
Thanomwongwatana, S. (2018). Application of phenolic extracts from tamarind seed husk to inhibit the formation of antoxidants in animal feeds. Proceeding of the 1st International conference of food and agriculture (pp. 222-227). Indonesia: Politeknik Negeri Jember.
Tril, U., Fernandez-Lopez, J., Alvarez, J. A. P., & Viuda-Martos, M. (2014). Chemical, physicochemical, technological, antibacterial and antioxidant properties of rich-fiber powder extract obtained from tamarind (Tamarindus indica L.). Industrial Crops and Products, 55, 155-162. doi: 10.1016/j.indcrop.2014.01.047.
