ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมดของน้ำหมักไหมข้าวโพดหวาน Zea mays L. ด้วยวิธีการหมักแบบเหลว
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ไหมข้าวโพดจัดเป็นส่วนที่เหลือทิ้งทางการเกษตร ซึ่งไหมข้าวโพดมีฤทธิ์ขับร้อน ขับปัสสาวะ แก้ไตอักเสบ รักษาดีซ่าน บำรุงตับ แก้เบาหวาน และรักษาโพรงจมูกอักเสบ (Hasanudin et al., 2012) นอกจากนี้ พบสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพและกิจกรรมต้านอนุมูลมีประโยชน์ต่อสุขภาพมากมาย (Sarepoua et al., 2013; Eman 2011; Ebrahimzadeh et al., 2008) โดยเลือกใช้วิธีการหมักเพื่อสกัดสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากไหมข้าวโพด การหมักสามารถเพิ่มคุณค่าให้กับผลิตภัณฑ์อาหาร โดยเพิ่มปริมาณสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้เพื่อศึกษาการออกฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมด และปริมาณฟลาโวนอยด์ โดยการหมักไหมข้าวโพดหวานแบบเหลว (Submerged fermentation) และศึกษาสมบัติเชิงหน้าที่ของน้ำหมัก วิธีการทดลองใช้ไหมข้าวโพดหวานสดพันธุ์ Hy-brix 10 หมักด้วยเชื้อแบคทีเรีย Lactobacillus casei TISTR 1463 และยีสต์ Saccharomyces cerevisiae TISTR 1464 ทั้งเชื้อเดี่ยวและผสม โดยใช้สภาวะหมักแบบนิ่ง เป็นเวลา 14 วัน ผลการทดลองพบว่าไหมข้าวโพดหวานที่หมักนาน 14 วัน โดยเชื้อ Lactobacillus casei TISTR 1463 มีปริมาณฟีนอลิกทั้งหมดมากที่สุด (0.27 มิลลิกรัมกรดแกลลิก /มิลลิลิตร) อีกทั้งยังมีปริมาณฟลาโวนอยด์สูงที่สุด (31.4 มิลลิกรัมเคอร์ซิตินต่อกรัมของสารสกัด) และมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระสูงถึง 63.89 %
Article Details
References
อุทัยทิพย์ ทนเถื่อน, สุดารัตน์ สุวรรณชัย, วีรานันท์ พงศาภักดี และวิโรจน์ กนกศิลปธรรม. (2555). การวิเคราะห์จำนวนนับเซลล์แบคทีเรียจาก Hemacytometer ด้วยวิธีการเชิงสถิติ. วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 20(2), 117-126.
อมร บุญสมบัติ. (2559). ผลของวิธีการคั่วต่อสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพในไหมข้าวโพดแห้งเพื่อการผลิตชา [วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตร มหาบัณฑิต, มหาวิทยาลัยขอนแก่น]. บัณฑิตวิทยาลัย มหาวิทยาลัยขอนแก่น.
Adetuyi, F. O., & Ibrahim, T. A. (2014). Effect of fermentation time on the phenolic, flavonoid and vitamin C contents and antioxidant activities of okra (Abelmoschus esculentus) seeds. Niger Food Journal, 32, 128–137.
Amadou, I., Yong-Hui, S., Sun, J., & Guo-Wei, L. (2009). Fermented soybean products: Some methods, antioxidants compound extraction and their scavenging activity. Asian Journal of Biochemistry, 4, 68–76.
Bamforth, C. W., & Ward, R. E. (2014). The Oxford handbook of food fermentations. Oxford University Press.
Brand, W.W., Cuvelier, M., & Berset, C. (1995). Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. Lebensmittel Wissenschaft und Tech, 28, 25–30.
Bhat, R., Suryanarayana, L. C., Chandrashekara, K. A., Krishnan, P., Kush, A., & Ravikumar, P. (2015). Lactobacillus plantarum mediated fermentation of Psidium guajava L. fruit extract. Journal of Bioscience and Bioengineering, 119, 430–432.
Casarotti, S. N., Borgonovi, T. F., Batista, C. L. F. M., & Penna, A. L. B. (2018). Guava, orange and passion fruit by-products: Characterization and its impacts on kinetics of acidification and properties of probiotic fermented products. Lwt—food Science and Technology, 98, 69–76. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2018.08.010
Chisti, Y. (2010). Solid substrate fermentations, enzyme production, food enrichment. In M. C. Flickinger (Ed.), Encyclopedia of industrial biotechnology, bioprocess, bioseparation, and cell technology ( pp. 4516–4534). Wiley.
Ebrahimzadeh, M. A., F. Pourmorad, & S. Hafezi. (2008). Antioxidant activities of Iranian corn silk. Turk. Journal of Biological, 32, 43-49.
Eman, A. A. (2011). Evaluation of antioxidant and antibacterial activities of Egyptian Maydis stigma Zea mays hairs) rich of bioactive constituents. Journal of American Science, 7, 726-729.
Fleet, G.H. (2007). Yeasts in foods and beverages: Impact on product quality and safety. Current Opinion Biotechnol., 18, 170–175.
Hasanudin, K., P. Hashim, & S. Mustafa. (2012). Corn silk (Stigma Maydis) in healthcare: A phytochemical and pharmacological review. Molecules,17, 9697-9715.
Haq, N., Saima, M., Momna, A., &Shakeel A. (2018). Phytochemical Composition: Antioxidant Potential and Biological Activities of Corn. In Amanullah & S. Fahad (eds). Corn - Production and Human Health in Changing Climate. IntechOpen.http://dx.doi.org/ 10.5772/ intechopen.79648
Huynh, N., Van C., John; Smagghe, G., & Raes, K. (2014). Improved release and metabolism of flavonoids by steered fermentation processes: A review. International Journal of Molecular Sciences, 15(11), 19369–19388. doi:10.3390/ijms151119369
Kwak, H. S., Jeong, Y., & Kim, M. (2018). Effect of yeast fermentation of green coffee beans on antioxidant activity and consumer acceptability. Journal of Food Quality, 2018, 5967130.
Loudon, G., & Mark. (2002). Organic chemistry. Oxford University Press.
Martins, S., Mussatto, S.I., Martínez-Avila, G., Montañez-Saenz, J., Aguilar, C.N., &Teixeira, J.A. (2011). Bioactive phenolic compounds: Production and extraction by solid-state fermentation: A review. Biotechnol. Adv., 29, 365–373.
Miller, G., (1959). Use of dinitrisalicylic acid reagent for determination of reducing sugars. Analytical Chemistry, 31, 426-429.
Nakamura, L.K. & Hartman, P.A. (1961): Lactobacillus: yeast interrelationships. Journal of Bacteriology, 81, 519–523
Prommuak, C, De-Eknamkul, W, & Shotipruk, A. (2008). Extraction of flavonoids and carotenoids from Thai silk waste and antioxidant activity of extracts. Sep. Puri. Tech., 62, 444-448.
Salar, R. J., Purewal, S. S., & Bhatti, M.S. (2016).Optimization of extraction conditions and enhancement of phenolic content and antioxidant activity of pearl millet fermented with Aspergillus awamori MTCC-54. Resour. Effic. Technol., 2, 148–157.
Sanjukta, S., Rai, A. K., Muhammed, A., Jeyaram, K. & Talukdar, N. C., (2015), Enhancement of antioxidant properties of two soybean varieties of Sikkim Himalayan region by proteolytic Bacillus subtilis fermentation. Journal of Functional Foods, 14, 650-658.
Sarepoua, E., Tangwongchai, R., Suriharn, B., & Lertrat, K. (2013). Relationships between photochemical and antioxidant activity in corn silk. Int. Food Research Journal, 20, 2073-2079.
Singleton, V.L., Rossi, J.A. (1965) Colorimetry of total phenolics with phos-phomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, 16,144-158.
Solihah, M. A., Wan Rosil, W. l., & Nurhanan, A.R. (2012). Phytochemicals screening and total phenolic content of Malaysian Zea mays hair extracts. International Food Research Journal, 19, 1533-1538.
Viljoen, B.C. (2006). Yeast ecological interactions. Yeast-yeast, yeast-bacteria, yeast-fungi interactions and yeasts as biocontrol agents. In Querol, A. & Fleet, G. (Eds), The yeast handbook (pp. 83–110). Springer Verlag.
Walter, W., & Purcell, A. E. (1979). Evaluation of several methods for analysis of sweet potato phenolics. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 27,942-964.