การศึกษาความเป็นไปได้ในการนำฟอสโฟลิพิดจากน้ำมันของเมล็ดยางพาราไปใช้ประโยชน์ในรูปของอนุภาคไลโพโซม

Main Article Content

สุวัชชัย มิสุนา
นิรมล ศรีชนะ

บทคัดย่อ

อนุภาคไลโพโซมสังเคราะห์ขึ้นได้โดยใช้ฟอสโฟลิพิดเป็นสารตั้งต้น ประโยชน์ของอนุภาคไลโพโซมคือสามารถกักเก็บสารสำคัญไว้ภายในเพื่อป้องกันการเสื่อมสลายและเพิ่มความคงตัวของสารสำคัญ งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อนำฟอสโฟลิพิดจากน้ำมันเมล็ดยางพาราไปใช้ประโยชน์ในรูปแบบอนุภาคไลโพโซม สกัดน้ำมันจากเมล็ดยางพาราสายพันธุ์ RRIM 600 โดยใช้เฮกเซนเป็นตัวทำละลาย แยกฟอสโฟลิพิดออกจากน้ำมันโดยการดีกัมด้วยความร้อนและน้ำ ตรวจสอบความบริสุทธิ์ วิเคราะห์ชนิดและปริมาณของฟอสโฟลิพิดด้วยเทคนิคโครมาโทรกราฟีของเหลวที่มีสมรรถนะสูง สังเคราะห์อนุภาค   ไลโพโซมโดยวิธีการระเหยกลับวัฏภาค ศึกษาคุณสมบัติทางกายภาพของอนุภาคไลโพโซมด้วยเทคนิคการกระเจิงแสงแบบพลวัต ศึกษาสันฐานวิทยาของอนุภาคไลโพโซมด้วยกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องผ่านและศึกษาความคงตัวของอนุภาคไลโพโซมที่ระยะเวลา 0-12 สัปดาห์ ที่อุณหภูมิ 4oC ผลการทดลองพบว่าเมล็ดยางพารามีปริมาณน้ำมัน 45.25±0.04 %w/w ฟอสโฟลิพิดที่พบมากที่สุดในกัมที่แยกได้จากน้ำมันเมล็ดยางพาราคือฟอสฟาทิดิลโคลีนและฟอสฟาทิดิลเอทาโนลามีน (22.36±3.10 และ 17.39±0.51 มิลลิกรัม/น้ำมัน 100 กรัม) เมื่อใช้ฟอสโฟลิพิดเข้มข้น 0.1-2.0 %w/v ไปสังเคราะห์อนุภาคไลโพโซมด้วยวิธีการระเหยกลับวัฎภาคพบว่าอนุภาคไลโพโซมที่ได้กระจายตัวอยู่ในตัวกลางที่เป็นน้ำมีลักษณะเป็นสารผสมเนื้อเดียวสีเหลือง สัณฐานวิทยาของอนุภาคไลโพโซมมีรูปร่างเป็นทรงกลม ขนาดอนุภาคไลโพโซมอยู่ระหว่าง 524-644 นาโนเมตร การกระจายตัวของขนาดอนุภาคอยู่ในช่วง 0.33 ถึง 0.46 ค่าประจุบนผิวอนุภาคมีค่าระหว่าง -33 ถึง -58 มิลลิโวลต์ และอนุภาคไลโพโซมที่สังเคราะห์ได้มีความคงตัวสูงสุดที่เวลา 8 สัปดาห์ ผลการศึกษาสามารถสรุปได้ว่าฟอสโฟลิพิดที่ได้จากน้ำมันของเมล็ดยางพาราสามารถนำไปใช้ประโยชน์ในรูปแบบอนุภาคไลโพโซมได้

Article Details

ประเภทบทความ
บทความวิจัย

เอกสารอ้างอิง

Akbarzadeh, A., Rezaei-Sadabady, R., Davaran, S., Joo, S. W., Zarghami, N., Hanifehpour, Y., Samiei, M., Kouhi, M., & Nejati-Koshki, K. (2013). Liposome: classification, preparation, and applications. Nanoscale Research Letters, 8(1), 1–9. https://doi.org/10.1186/1556-276X-8-102

Ang, S. S., Thoo, Y. Y., & Siow, L. F. (2023). Encapsulation of hydrophobic apigenin into small unilamellar liposomes coated with chitosan through ethanol injection and spray drying. Food Bioprocess Technology, 16(6), 1–16. https://doi.org/10.1007/s11947-023-03140-y

Azucena, G. G., Saifuddin, S., Kenji, M., & Zeinab, H. (2019). Liposomal nanovesicles for efficient encapsulation of staphylococcal antibiotics. ACS Omega, 4(1), 10866–10876. https://doi.org/10.1021/acsomega.9b00825

Danaei, M., Dehghankhold, M., Ataei, S., Hasanzadeh Davarani, F., Javanmard, R., Dokhani, A., Khorasani, S., & Mozafari, M. R. (2018). Impact of particle size and polydispersity index on the clinical applications of lipidic nanocarrier systems. Pharmaceutics, 10(2), 57. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics10020057

Estevinho, B. N., Damas, A. M., Martins, P., & Rocha, F. (2014). The influence of microencapsulation with a modified chitosan (water soluble) on β-galactosidase activity. Drying Technology, 32(13), 1575–1586. https://doi.org/10.1080/07373937.2014.909843

Farouk, A. E., Fahmy, S. R., & Soliman, A. M. (2023). A nano-liposomal formulation potentiates antioxidant, anti-inflammatory, and fibrinolytic activities of Allolobophora caliginosa coelomic fluid: Formulation and characterization. BMC Biotechnology, 23, 28. https://doi.org/10.1186/s12896-023-00795-5

Fotini, M., Sophia, H., Kostas, D., Dimitrios, K., & Costas, D. (2004). Liposome formulation from phospholipids of Greek almond oil, properties, and biological activity. Zeitschrift für Naturforschung C, 59(3–4), 330–334. https://doi.org/10.1515/znc-2004-5-607

Hoogevest, V. P., & Wendel, A. (2014). The use of natural and synthetic phospholipids as pharmaceutical excipients. European Journal of Lipid Science and Technology, 116(9), 1088–1107. https://doi.org/10.1002/ejlt.201400219

Kittigowittana, K., Wongsakul, S., Krisdaphong, P., Jimtaisong, A., & Saewan, N. (2013). Fatty acid composition and biological activities of seed oil from rubber (Hevea brasiliensis) cultivar RRIM 600. International Journal of Applied Research in Natural Products, 6(2), 1–7.

Liu, W., Ye, A., Liu, W., Liu, C., & Singh, H. (2013). Stability during in vitro digestion of lactoferrin-loaded liposomes prepared from milk fat globule membrane derived phospholipids. Journal of Dairy Science, 96(4), 2061–2070. https://doi.org/10.3168/jds.2012-6072

Lourith, N. (2013). Biological activities and essential fatty acids in cosmetics in rubber seed of RRIM 600 cultivar. Thailand Science Research and Innovation.

Lourith, N., Kanlayavattanakul, M., Sucontphunt, A., & Ondee, T. (2014). Para rubber seed oil: New promising unconventional oil for cosmetics. Journal of Oleo Science, 63(7), 709–716. https://doi.org/10.5650/jos.ess14015

Madene, A., Jacquot, M., Scher, J., & Desobry, S. (2006). Flavor encapsulation and controlled release-a review. International Journal of Food Science & Technology, 41(1), 1–21. https://doi.org/10.1111/j.13652621.2005.00980.x

Mozafari, M. R., Johnson, C., Hatziantoniou, S., & Demetzos, C. (2008). Nanoliposomes and their applications in food nanotechnology. Journal of Liposome Research, 18(4), 309–327. https://doi.org/10.1080/08982100802465941

Németh, Z., Csóka, I., Semnani Jazani, R., Sipos, B., Haspel, H., Kozma, G., Kónya, Z., & Dobó, D. G. (2022). Quality by design-driven zeta potential optimization study of liposomes with charge imparting membrane additives. Pharmaceutics, 14(9), 1798. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14091798

Raknam, P., Pinsuwan, S., & Amnuaikit, T. (2020). Rubber seed cleansing oil formulation and its efficacy of makeup remover. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, 11(1), 146–155. https://doi.org/10.13040/IJPSR.0975-8232.11(1).146-55

Rehman, S., Welter, D., Wildenauer, D., & Ackenheil, M. (2017). Simple and rapid separation and determination of phospholipid by HPLC-UV system. Annals of Pharmacy and Pharmacology, 6, 1–3.

Schmidt, C., & Lamprecht, A. (2009). Nanocarriers in drug delivery: Design, manufacture and physicochemical properties. Pan Stanford Publishing.

Srinuan, C., Kritsunankul, O., & Singanusong, R. (2020). Effect of extraction conditions on lecithin from rice bran gum and soybean gum. In Proceedings of RSU International Research Conference (pp. 588–595). Rangsit University.

Šturm, L., & Poklar Ulrih, N. (2021). Basic methods for preparation of liposomes and studying their interactions with different compounds, with the emphasis on polyphenols. International Journal of Molecular Sciences, 22(12), 6547. https://doi.org/10.3390/ijms22126547

Terron-Mejia, A. K., Martinez-Benavidez, E., Higuera-Ciapara, I., Virues, C., Hernandez, J., & Dominguez, Z. (2018). Mesoscopic modeling of the encapsulation of capsaicin by lecithin/chitosan liposome nanoparticles. Nanomaterials, 8(6), 425. https://doi.org/10.3390/nano8060425

Venugaranti, V. V., & Perumal, O. P. (2009). Nanosystems for dermal and transdermal drug delivery. Informa Healthcare USA.

Wendel, A., & Hoogevest, V. P. (2014). The use of natural and synthetic phospholipids as pharmaceutical excipients. European Journal of Lipid Science and Technology, 116(9), 1088–1107. https://doi.org/10.1002/ejlt.201400219