ประสิทธิภาพของอาหารเหลวต่อการเจริญและพัฒนาของต้นอ่อนเอื้องมันปู (Robiquetia succisa)
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาประสิทธิภาพของอาหารเหลว Murashige and Skoog (1962) สำหรับการเพาะเลี้ยงต้นอ่อนเอื้องมันปูแบบวางนิ่งและเขย่า ด้วยการเติมน้ำมะพร้าว 150 มิลลิตรต่อลิตร ร่วมกับ 6-Benzylaminopurine (BA) และ 1-Naphthalene acetic acid (NAA) (ความเข้มข้น 0, 0.5, 1.0 และ 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร) เป็นระยะเวลา 12 สัปดาห์ พบว่า วิธีที่มีประสิทธิภาพในการช่วยชักนำให้การเพิ่มจำนวนโปรโตคอร์มไลค์บอดี้ (PLBs) (เฉลี่ยมากกว่า 30 โปรโตคอร์มต่อชิ้นส่วนต้นอ่อน) จากโครงสร้างรากของต้นอ่อนเอื้องมันปูได้ดีที่สุด เมื่อเลี้ยงต้นอ่อนในอาหารเหลวที่เติมน้ำมะพร้าว 150 มิลลิตรต่อลิตร เลี้ยงแบบวางนิ่ง อีกทั้งต้นกล้าเอื้องมันปูที่นำออกปลูกโดยไม่มีวัสดุปลูกมีอัตราการรอดชีวิตสูงที่สุด 90% เมื่อเทียบกับการใช้ถ่านไม้หรือสแฟกนั่มมอสเป็นวัสดุปลูก เมื่อเลี้ยงในสภาพโรงเรือนเพาะชำเป็นระยะเวลา 12 สัปดาห์
Article Details
เอกสารอ้างอิง
วรดลย์ แจ่มจำรูญ. (2558). รูปแบบของความเฉพาะถิ่นและความหายากของพืชในประเทศไทย. ใน ดอกรัก มารอด และ จงรัก วัชรินทร์รัตน์ (บ.ก.), การประชุมวิชาการและนำเสนอผลงานวิชาการเครือข่ายวิจัยนิเวศวิทยาป่าไม้แห่งประเทศไทย ครั้งที่ 4(น. 36-43),พิษณุโลก: คณะเกษตรศาสตร์ ทรัพยากรธรรมชาติและสิ่งแวดล้อม มหาวิทยาลัยนเรศวร.
Bhowmik, T. K., & Rahman, M. (2021). Development of an efficient protocol for Robiquetia spathulata (Bl) J.J.Sm. an endangered orchid species through in vitro techniques. SUST Journal of Science and Technology, 31(1), 1–6.
Devi, H. S., Devi, S. I., & Singh, T. D. (2013). High frequency plant regeneration system of Aerides odorata Lour. through foliar and shoot tip culture. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 41(1), 169–176.
Maharjan, S., Pradhan, S., Thapa, B. B., & Pant, B. (2019). In vitro propagation of endangered orchid, Vanda pumila Hook.f. through protocorms culture. American Journal of Plant Sciences, 10, 1220–1232.
Meilasari, D., & Iriawati, I. (2016). Regeneration of plantlets through plb (protocorm-like body) formation in Phalaenopsis ‘Join Angle X Sogo Musadian’. Journal of Mathematical and Fundamental Sciences, 48(3), 204–212.
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473–497.
Nowakowska, K., Marciniak, P., & Pacholczak, A. (2022). A protocol for efficient micropropagation of rare orchid Vanda brunnea Rchb.f. South African Journal of Botany, 150, 233–239.
Obsuwan, K., & Thepsithar, C. (2014). An effect of organic supplements on stimulating growth of Vanda and Mokara seedlings in tissue culture. International Journal of Bioengineering and Life Sciences, 8(7), 696–698.
Park, S. Y., Murthy, H. N., & Paek, K. Y. (2003). Protocorm-like body induction and subsequent plant regeneration from root tip cultures of Doritaenopsis. Plant Science, 164, 919–923.
Pathak, P., Kumari, A., Chandler, B. D., & Zettler, L. W. (2022). In vitro propagation and phytochemical analysis of Vanda cristata Wall. ex Lindl.: An endangered medicinal orchid of biopharmaceutical importance. South African Journal of Botany, 151, 109–123.
Pathak, P., Sunita, Kumari, A., Thakur, B., Vasundhra, & Madhu. (2022). Regeneration competence of an endangered orchid, Vanda cristata Wall. ex Lindl. using leaf explants: A study in vitro. South African Journal of Botany, 151, 1018–1024.
Puchooa, D. (2004). Comparison of different culture media for the in vitro culture of Dendrobium (Orchidaceae). International Journal of Agriculture & Biology, 6(5), 884–888.
Seeni, S., & Latha, P. G. (2000). In vitro multiplication and ecorehabilitation of the endangered blue Vanda. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 61, 1–8.
Sheelavanthmath, S. S., Murthy, H. N., Hema, B. P., Hahn, E. J., & Paek, K. Y. (2005). High frequency of protocorm-like bodies (PLBs) induction and plant regeneration from protocorm and leaf sections of Aerides crispum. Scientia Horticulturae, 106(3), 395–401.
Tsai, W. T., & Chu, C. Y. (2008). Static liquid culture of Doritaenopsis seedlings. HortScience, 43(1), 206–210.
Xu, J., Beleski, D. G., & Vendrame, W. A. (2022). Effects of culture methods and plant growth regulators on in vitro propagation of Brassavola nodosa (L.) Lindl. hybrid. In Vitro Cellular & Developmental Biology -Plant, 58, 931–941.
Zhang, Q. X., & Fang, Y. M. (2005). Tissue culture and in vitro seedling and protocorm-like body examination of Dendrobium candidum. Acta Botanica BorealiOccidentalia Sinica, 25, 1761–1765.
