ผลของ NAA และผงถ่านกัมมันต์ต่อการชักนำรากในเทียนสิรินธร (Impatiens sirindhorniae Triboun & Suksathan)
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
เทียนสิรินธร (Impatiens sirindhorniae) เป็นพันธุ์ไม้ดอกสวยงามและพืชเฉพาะถิ่นที่เจริญบริเวณภูเขาหินปูน พบได้ที่จังหวัดกระบี่ และสุราษฎร์ธานีเท่านั้น ปัจจุบันจัดอยู่ในสถานภาพมีแนวโน้มใกล้สูญพันธุ์ หากสามารถขยายพันธุ์ได้จำนวนมากจะช่วยในการอนุรักษ์พันธุกรรมได้ ดังนั้นการศึกษาครั้งนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาอิทธิพลของ NAA และผงถ่าน กัมมันต์ต่อการชักนำรากในเทียนสิรินธรสำหรับการผลิตต้นกล้าเพื่อย้ายปลูกอนุรักษ์ในถิ่นธรรมชาติ โดยนำเทียนสิรินธรที่ได้จากการเพาะเลี้ยงในสภาวะปลอดเชื้อ ความยาว 2 เซนติเมตร มาวางเลี้ยงบนอาหารเพาะเลี้ยงสูตร 1/3 MS ขวดละ 2 ต้น แบ่งเป็น 6 ตำรับการทดลอง ได้แก่ ตำรับการทดลองที่เติม NAA ความเข้มข้น 0, 0.5, 1.0, 1.5 และ 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร และ ตำรับการทดลองที่เติมผงถ่านกัมมันต์ 1 กรัมต่อลิตรลงในอาหาร โดยตำรับที่เติม NAA ความเข้มข้น 0 มิลลิกรัมต่อลิตรเป็นตำรับควบคุม หลังจากวางเลี้ยงครบ 4 สัปดาห์ สังเกตและบันทึกอัตราการเกิดราก จำนวนรากต่อต้น และลักษณะของราก โดยแต่ละตำรับการทดลองทำ 3 ซ้ำ ซ้ำละ 10 ขวด วางแผนการทดลองแบบ CRD เปรียบเทียบค่าเฉลี่ยโดยวิธี DMRT และวิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติด้วยโปรแกรม R ผลการศึกษาพบว่าอาหารที่ไม่เติม NAA (ตำรับควบคุม) สามารถชักนำให้เกิดรากได้ดีที่สุด คือมีอัตราการเกิดราก (ร้อยละ 100) จำนวนรากเฉลี่ยต่อต้น (5.31 ราก) ความยาวรากเฉลี่ย (3.50 ซม.) และความกว้างรากเฉลี่ย (0.23 ซม.) สูงที่สุด รองลงมา คือ อาหารที่เติมผงถ่านกัมมันต์ (ตำรับการทดลองที่ 6) มีอัตราการเกิดราก (ร้อยละ 100) จำนวนรากเฉลี่ยต่อต้น (5.58 ราก) และความยาวราก (2.66 ซม.) ไม่แตกต่างกันทางสถิติกับอาหารในชุดควบคุม ดังนั้นจึงสรุปได้ว่า NAA มีผลยับยั้งการชักนำรากในเทียนสิรินธร และควรใช้อาหารสูตร 1/3 MS ที่ไม่เติมผงถ่านกัมมันต์ในการชักนำให้ยอดเทียนสิรินธรเกิดราก
Article Details
เอกสารอ้างอิง
De Mello, T., De Oliveira, G.E., Alexandre, S.R., Schmildt, R.E., & Otoni, C.W. (2020). Establishment and in vitro morphogenesis of Sapucaya explants (Lecythidaceae). In Vitro Cellular & Developmental Biology, 56(6), 882–893.
Desai, P., Desai, S., Patel, A., Mankad, M., Gajera, B., Patil, G., & Narayanan, S. (2019). Development of efficient micropropagation protocol through axillary shoot proliferation for Bambusa vulgaris ‘wamin’ and Bambusa bambos and assessment of clonal fidelity of the micropropagated plants through Random Amplified Polymorphic DNA markers. Agriculture and Natural Resource, 53, 26–32.
Kaviani, B., Almasi, A., Sedaghathoor, S., & Khoddamzadeh, A.A. (2021). A protocol for fast in vitro propagation of Impatiens hawkeri cv. Sweeties Blue Star, an important ornamental-cover species. Rodriguésia, 72, e02562019.
Kongbonsook, P., Jarutsumrid, N., Saridnum, O., & Thanarut, C. (2021). Plant Growth Regulators on Melientha suavis Pierre Propagations. Naresuan Agricultural Journal, 18(2), e0180201.
Luo, L., Li, Y., Huang, X., Zhang, X., Tan, Y., Liu, Z., Huang, H. & Huang, M. (2023). Establishment of a highly efficient in vitro plant regeneration system for Impatiens hawkeri W. Bull cv. ‘Pink’ and its background resistance to kanamycin. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 155, 627–636.
Mohamed, N., Taha, R.M., Razak, U., & Elias, H. (2018). The Role of Plant Growth Regulators in the Development of in vitro Flowering, Histology and Ultrastructural Studies in Impatiens balsamina cv. Dwarf Bush. Planta Daninha, 36, e018165357.
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A reverse medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Plant Physiology, 15, 473-497.
Owen, H.R., Wengerd, D., & Miller, A.R. (1991). Culture medium pH is influenced by basal medium,carbohydrate source, gelling agent, activated charcoal, and medium storage method. Plant Cell Reports, 10, 583-586.
Pattarakulpisutti, P. (2021). Floral morphology and pollination readiness of Impatiens sirindhorniae Triboun & Suksathan in a greenhouse: a preliminary study for conservation. Thai Journal of Botany, 13(2), 81–91.
Promchan, T., Ramasoot, S., & Bunwest, P. (2016). Effects of Activated Charcoal and Growing Media on Seedling Growth and Survival Rate of Aeridesodorata. Wicha Journal, 35(2), 53–61.
Rakkid, P., Triboun, P., Sangkasa-ad, P., Piriyavinit, P., & Kanjanawattanawong, P. (2013). Study on in vitro Conservation Technique of Impatiens sirindhorniae and Zingiber sirindhorniae. In. Annual Academic Seminar 2013, Biotechnology Research and Development Office. Bangkok: Biotechnology Research and Development Office Department of Agriculture.
R Core Team. (2019). R: A Language and Environment for Statistical Computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing.
Samala, S., Kongton, K., Yenchon, S., Petchsri, S., Suwannakong, Y., Rotchanajinda, W., & Chareonsap, P.P. (2022a). Effect of auxins and cytokinin on micropropagation of Impatiens sirindhorniae Triboun & Suksathan in vitro. Acta Horticulturae, 1339, 217–225.
Samala, S., Kongton, K., Yenchon, S., Petchsri, S., Suwannakong, Y., Rotchanajinda, W., Buakaew, P., Suleethat, N., Thepsuriwong, S., Pengjun, W., Nongkaew, S., Chareonsap, P.P. & Thammasiri, K. (2022b). Enhancement of surface sterilization protocol for in vitro propagation of Impatiens sirindhorniae. Acta Horticulturae, 1334, 257–262.
Senawong, R., Sansuk, P., & Sansuk, S. (2014). In vitro tissue culture of Dendrobium kontumense Gagnep. KKU Science Journal, 19, 399–413.
Suksathan, P., & Triboun, P. (2009). Ten new species of Impatiens (Balsaminaceae) from Thailand. Gardens’ Bulletin Singapore, 61(1), 159–184.
Te-chato, S., & Lim, M. (1999). Plant regeneration of mangosteen via nodular callus formation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 59, 89–93.
Tharawoot, T., Samyam, W., & Vessabutr, S. (2012). Colchicine induced polyploidy of in vitro Impatiens patula Craib. Thai Journal of Botany, 4 (Special Issue), 75–80.
Thomas, D. (2008). The role of activated charcoal in plant tissue culture. Biotechnology Advances, 26(6), 618–631.
Ziaratmai, S.M., Kunert, K.J., & Lall, N. (2009). Elicitation of 7-methyjuglone in Drosera capensis. South African Journal of Botany. 75, 97–103.
