ผลของสารสกัดน้ำจากใบหูกวางต่อเชื้อ Staphylococcus aureus ภายใต้ความแตกต่างของความเข้มข้นและระยะเวลาการสัมผัส
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
เชื้อ Staphylococcus aureus เป็นเชื้อก่อโรคที่ผิวหนังในทั้งสัตว์เลี้ยงและมนุษย์ และมีแนวโน้มการดื้อยาปฏิชีวนะของเชื้อแบคทีเรียสูงขึ้น จึงทำให้สารต้านแบคทีเรียจากธรรมชาติได้รับความสนใจ ดังนั้น งานวิจัยนี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาประสิทธิภาพของสารสกัดน้ำจากใบหูกวาง (Terminalia catappa Linn.) ต่อเชื้อ S. aureus โดยศึกษาผลของความเข้มข้นและระยะเวลาการสัมผัสของสารในการฆ่าเชื้อแบคทีเรีย วิธีการทดลอง ได้แก่ การเตรียมสารสกัดน้ำจากใบหูกวางโดยวิธีต้มและแช่ การหาความเข้มข้นของแทนนินในสารสกัดแช่หมัก และการศึกษาระยะเวลาการออกฤทธิ์ในการฆ่าเชื้อแบคทีเรีย จากการศึกษาพบว่าสารสกัดน้ำจากใบหูกวางที่เตรียมด้วยวิธีต้มและแช่มีความเข้มข้นของแทนนินทั้งหมดเท่ากับ 0.76 มก./มล. และมีค่าความเข้มข้นต่ำสุดที่สามารถฆ่าเชื้อแบคทีเรียด้วยวิธี broth macrodilution assay อยู่ที่ 0.35–0.4 มก./มล. ผลการศึกษาระยะเวลาการออกฤทธิ์ของสารสกัดน้ำจากใบหูกวางต่อการลดจำนวนแบคทีเรีย พบว่าที่ความเข้มข้นของแทนนิน 0.35 มก./มล. ทำให้จำนวนโคโลนีของ S. aureus ลดลงอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ จาก 115 โคโลนีที่ 2 ชั่วโมง เหลือ 0 โคโลนีที่ 24 ชั่วโมง (rs = -1.000, p-value < 0.001) และที่ความเข้มข้น 0.4 มก./มล. ให้ผลในการกำจัดแบคทีเรียอย่างรวดเร็ว โดยจำนวนโคโลนีลดลงจนเหลือ 0 ที่ 8 ชั่วโมง (rs = -0.975, p-value = 0.02) ผลการศึกษานี้ชี้ให้เห็นว่าสารสกัดน้ำจากใบหูกวางอาจเป็นทางเลือกจากธรรมชาติที่ช่วยลดการใช้ยาปฏิชีวนะในการรักษาการติดเชื้อ S. aureus ได้
Article Details
เอกสารอ้างอิง
Akiyama, H., Fujii, K., Yamasaki, O., Oono, T., & Iwatsuki, K. (2001). Antibacterial action of several tannins against Staphylococcus aureus. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 48(4), 487–491.
Anand, A., Divya, N., & Kotti, P. (2015). An updated review of Terminalia catappa. Pharmacognosy Reviews, 9(18), 93.
Andrews, J. M. (2004). BSAC standardized disc susceptibility testing method (version 3). Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 53(5), 713–728.
Arapitsas, P. (2012). Hydrolysable tannin analysis in food. Food Chemistry, 135(3), 1708–1717.
Balouiri, M., Sadiki, M., & Ibnsouda, S. K. (2016). Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis, 6(2), 71–79.
Bolling, B. W. (2017). Almond polyphenols: Methods of analysis, contribution to food quality, and health promotion. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 16(3), 346–368.
Bule, M., Khan, F., Farrukh, N. M., & Niaz, K. (2020). Tannins (hydrolysable tannins, condensed tannins, phlorotannins, flavono-ellagitannins). In Recent advances in natural products analysis (pp. 132–146). Elsevier.
Chansue, N., & Assawawongkasem, N. (2008). The in vitro antibacterial activity and ornamental fish toxicity of the water extract of Indian almond leaves (Terminalia catappa Linn.). Khon Kaen University Veterinary Journal, 18(1), 36–45.
Das, A. K., Islam, M. N., Faruk, M. O., Ashaduzzaman, M., & Dungani, R. (2020). Review on tannins: Extraction processes, applications and possibilities. South African Journal of Botany, 135, 58–70.
Desam, N. R., & Al-Rajab, A. J. (2022). Herbal biomolecules: Anticancer agents. In S. C. Mandal, A. K. Nayak, & A. K. Dhara (Eds.), Herbal biomolecules in healthcare applications (pp. 435–474). Academic Press.
Dong, G., Liu, H., Yu, X., Zhang, X., Lu, H., Zhou, T., & Cao, J. (2017). Antimicrobial and anti-biofilm activity of tannic acid against Staphylococcus aureus. Natural Product Research, 32(18), 2225–2228.
Heinrich, N. A., Eisenschenk, M., Harvey, R. G., & Nuttall, T. (2019). Skin diseases of the dog and cat (3rd ed.). CRC Press.
Kahlaoui, M., Vecchia, S. B. D., Giovine, F., Kbaier, H. B. H., Bouzouita, N., Pereira, L. B., & Zeppa, G. (2019). Characterization of polyphenolic compounds extracted from different varieties of almond hulls (Prunus dulcis L.). Antioxidants, 8(12), Article 647.
Madigan, M. T., Bender, K. S., Buckley, D. H., Sattley, W. M., & Stahl, D. A. (2019). Brock biology of microorganisms (15th global ed.). Pearson.
Malawa, S., Nuntapong, N., Suanyuk, N., & Thongprajukkaew, K. (2022). Addition of different concentrations of Indian almond (Terminalia catappa) leaf extract to aquarium water resulted in improved water quality and increased bubble nest formation by male Siamese fighting fish (Betta splendens) without having any consistent negative effects on growth metrics and blood chemistry. Aquaculture International, 30(6), 3269–3288. https://doi.org/10.1007/s10499-022-00960-1
Malik, S., Peng, H., & Barton, M. D. (2005). Antibiotic resistance in staphylococci associated with cats and dogs. Journal of Applied Microbiology, 99(6), 1283–1293.
Moon, D.-C., Choi, J.-H., Boby, N., Kang, H.-Y., Kim, S.-J., Song, H.-J., Park, H.-S., Gil, M.-C., Yoon, S.-S., & Lim, S.-K. (2022). Bacterial prevalence in skin, urine, diarrheal stool, and respiratory samples from dogs. Microorganisms, 10(8), Article 1668.
Muangthai, P. (2015). Utilization of extracted substance from Indian almond leaves, Terminalia catappa L., for preparation of folk medicinal cream for the use of skin protection. Journal of Applied and Natural Science, 7, 144–148.
Mueller-Harvey, I. (2001). Analysis of hydrolysable tannins. Animal Feed Science and Technology, 91(1), 3–20.
Nikaido, H. (2009). Multidrug resistance in bacteria. Annual Review of Biochemistry, 78, 119–146.
Olchowik-Grabarek, E., Sekowski, S., Mies, F., Bitiucki, M., Swiecicka, I., Abdulladjanova, N., Shlyonsky, V., & Zamaraeva, M. (2023). Electrophysiological and spectroscopic investigation of hydrolysable tannins interaction with α-hemolysin of Staphylococcus aureus. Bioelectrochemistry, 150, Article 108318. https://doi.org/10.1016/j.bioelechem.2022.108318
Thansuwan, R., Jitturongarpron, J., Buatib, J., Tangjaroenchai, T., & Muangsue, N. (2019, May 22–24). Phytochemical screening and antimicrobial activity of Indian almond leaf extracts. In Proceedings of the International Conference on Biodiversity 2019 (IBD2019) (pp. 86–88). Centara Grand & Bangkok Convention Centre, CentralWorld, Bangkok, Thailand.
Wang, J., Sheng, Z., Liu, Y., Chen, X., Wang, S., & Yang, H. (2023). Combined proteomic and transcriptomic analysis of the antimicrobial mechanism of tannic acid against Staphylococcus aureus. Frontiers in Pharmacology, 14, Article 1178177.
