โครงสร้างของอัณฑะในช่วงพัฒนาขั้นสมบูรณ์ของปลาน้ำลึกชนิด Gavialiceps javanicus จากทะเลฝั่งอันดามัน ประเทศไทย
Article Sidebar
เผยแพร่แล้ว:
ธ.ค. 20, 2019
คำสำคัญ:
มิญชวิทยา ระบบสืบพันธุ์เพศผู้ ปลาน้ำลึก ประเทศไทย
Main Article Content
บทคัดย่อ
ความรู้ทางด้านพัฒนาการของเซลล์สืบพันธุ์ของเพศผู้ในกลุ่มปลากระดูกแข็งมีรายงานการวิจัยอย่างกว้างขวางทั้งในบริเวณปากแม่น้ำหรือชายฝั่ง ต่างจากในกลุ่มปลาน้ำลึกที่อาศัยในระดับความลึกระหว่าง 600-1,000 เมตร กลับมีน้อยมาก ในการศึกษานี้จึงสนใจและพิจารณาถึงโครงสร้างของอัณฑะที่อยู่ในช่วงขั้นพัฒนาการสมบูรณ์และเน้นส่วนของเจอร์มินอลคอมพาร์ทเมนต์ปลาน้ำลึกชนิด Gavialiceps javanicus ด้วยเทคนิคด้านมิญชวิทยา ทำการเก็บตัวอย่างปลาน้ำลึกชนิดนี้จำนวนทั้งหมด 7 ตัว จากทะเลฝั่งอันดามัน ประเทศไทย ในเดือนตุลาคม พ.ศ. 2561 ที่มีขนาดความยาวเหยียดเฉลี่ยเท่ากับ 56.00±7.88 เซนติเมตร และมีน้ำหนักเฉลี่ยเท่ากับ 64.00±16.29 กรัม นำตัวอย่างอวัยวะสร้างเซลล์สืบพันธุ์มาผ่านกระบวนการทางมิญชวิทยา ผลการวิจัยพบว่าตัวอย่างปลาน้ำลึกทุกตัวจัดเป็นเพศผู้ที่มีโครงสร้างอัณฑะ 2 พู แต่ละพูประกอบด้วยการจัดเรียงตัวของเนื้อเยื่ออัณฑะและท่อนำอสุจิ ภายในเนื้อเยื่ออัณฑะแบ่งเป็น 2 ส่วนหลัก คือ ส่วนของอินเตอร์สติเชียลและเจอร์มินอล คอมพาร์ทเมนต์ และส่วนของเจอร์มินอลคอมพาร์ทเมนต์ที่มีท่อสร้างอสุจิเป็นจำนวนมาก ภายในท่อนี้มีการเรียงตัวของเซลล์เซอร์ทอไลและพัฒนาการของระยะเซลล์สืบพันธุ์เพศผู้ ตั้งแต่ระยะสเปอร์มาโทโกเนียม จนถึงระยสเปอร์มาโทซูน ทั้งนี้การกระจายตัวของระยะสเปอร์มาโทโกเนียมที่พบได้ตลอดแนวของท่อสร้างอสุจิ จึงจัดรูปแบบของอัณฑะปลาน้ำลึกชนิด G. javanicus ว่าเป็น unrestricted spermatogonia testicular type ข้อมูลพื้นฐานที่ได้จากการศึกษาครั้งนี้ได้รับข้อมูลพื้นฐานด้านชีววิทยาการสืบพันธุ์ เหมาะสมสำหรับการศึกษาฤดูสืบพันธุ์ กลวิธีการปรับตัวทางด้านการสืบพันธุ์ และจุลกายพยาธิวิทยาของปลาชนิดนี้ในอนาคตต่อไป
Article Details
How to Cite
บท
บทความวิจัย
บทความ ข้อมูล เนื้อหา รูปภาพ ฯลฯ ที่ได้รับการเผยแพร่ในวารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มรย. นี้ ถือเป็นลิขสิทธิ์ของวารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มรย. หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือกระทำการใดๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจากวารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มรย. ก่อนเท่านั้น
References
1. Abascal, F. J., Megina, C. & Medina, A. (2004). Testicular development in migrant and spawning bluefin tuna (Thunnus thynnus (L.)) from the eastern Atlantic and Mediterranean. Fishery Bulletin, 102, 407-417.
2. Acharya, K. V. & Naik, S. D. (2015). Reproductive biology of Polyfish, Leiognathus splendens (Cuvier, 1829) off Ratnagiri Coast, Maharashtra. Global Journal of Multidisciplinary Studies, 4, 289-400.
3.Billard, R. (1970). Ultrastructure comparée de spermatozoides de quelques poissons Téléostéens. In Comparative Spermatology, B. Baccetti (ed.). New York: Academic Press.
4. Billard, R., Richard, M. & Rombauts, R. (1982). Inhibition of spermatogenesis and vitellogenin in rainbow trout by hormonal additives in the diet. The Progressive Fish-Culturist, 44, 15-18.
5. Billard, R. (1992). Reproduction in rainbow trout: sex differentiation, dynamics of gametogenesis, biology and preservation of gametes. Aquaculture, 100, 263-298.
6. Blazer, V. S. (2002). Histopathological assessment of gonadal tissue in wild fishes. Fish Physiology and Biochemistry, 26, 85–101.
7. Brown-Peterson, N. J., Grier, H. J. & Overstreet, R. M. (2002). annual changes in germinal epithelium determine male reproductive classes of the cobia. Journal of Fish Biology, 60, 178-202.
8. Cinquetti, R. (1994). Localization of steroidogenesis in the testis of Padogobius martensi (Pisces, Gobiidae): Histological, histochemical and ultrastructural investigation. Italian Journal of Zoology, 61, 309-315.
9. Dietrich, D. R. and Krieger, H. O. (2009). Histological Analysis of Endocrine Disruptive Effects in Small Laboratory Fish. New Jersey: John Wiley & Sons.
10. Forsgren K.L., Jamam, H., Rarrios, A. Paig-Tran, E.W.M. et al., 2017. Reproductive morphology of oarfish (Regalecus russellii) THE Anatomical record 300:1695–1704 (2017).
11. Gong, X., Wanga, D., Baoa, B., Zhanga, Q., Jiangb, X., Liu, L. (2017). Gonadal development and silvering of the Japanese Eel (Anguilla japonica) in the Yangtze River during downstream migration. Aquaculture and Fisheries, 2, 173-178.
12. Grier, H. J. & Taylor, R. G. 1998. Testicular maturation and regression in the common snook. Journal of Fish Biology, 53, 521-542
13. Grier, H. J. (1975). Aspects of germinal cyst and sperm development in Poecilia latipinna (Teleostei: Poeciliidae). Journal of Morphology, 146, 229-250.
14. Grier, H. J. (1976). Sperm development in the teleost Oryzias latipes. Cell Tissue and Research, 168, 419-431.
15. Grier, H. J. (1993). Comparative organization of sertoli cells including the sertoli cell barrier. In The Sertoli cell, L.D. Russel and M.D. Griswold (eds.), pp 704-739. Clearwater (Florida): Cache River Press.
16. Grier, H. J., Linton, J. R., Leatherland, J. F. & de Vlaming, V. L. (1980). Structural evidence for two different testicular types in teleost fishes. American Journal of Anatomy, 159, 331-345.
17. Grier, H. J., van den Hurk, R. & Billard, R. (1989). Cytological identification of cell types in the testis of Esox lucius and E. niger. Cell and Tissue Research, 257, 491-496.
18. Grier, H. J. & Taylor, R. G. 1998. Testicular maturation and regression in the common snook. Journal of Fish Biology, 53, 521-542.
19. Karmovskaya, E. S. (1994). Systematics and distribution of the eel genus Gavialiceps (Congridae) in the Indo-West Pacific. Journal of Ichthyology, 34(3), 73-89.
20. Lo Nostro, F. L., Antonellin, F. N., Quagio-Grassiotto, I. & Guerrero, G. A. (2004). Testicular interstitial cells, and steroidogenic detection in the protogynous fish, Synbranchus marmoratus (Teleostei, Synbranchidae). Tissue and Cell, 36, 221-231.
21. Mitparian, T., Kettratad, J. & Jiraungkoorskul, W. (2018). Gametogenic maturation of Allenbatrachus grunniens (Linnaeus, 1758) from Pranburi Estuary, Thailand. Proceeding, BioD5, 10-14 July 2018.
22. Miura, T., K. Yamauchi, Y. Nagahama, & H. Takahashi. (1991a). Induction of spermatogenesis in male Japanese eel, Anguilla japonica, by a single injection of human chorionic-gonadotropin. Zoological Science, 81, 63–73.
23. Miura, T., K. Yamauchi, H. Takahashi & Y. Nagahama. (1991b). Hormonal induction of all stages of spermatogenesis in vitro in the male Japanese eel (Anguilla japonica L.). Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, 88, 5774–5778.
24. Mũller, T., Baska, F., Niklesz, P., Horn, P., Varadi, B. Bercsenyi, M. et al. (2005). The testis histology of artificially maturated european eel (Anguilla anguilla L.) at the end of sexual maturation, and spermatozoa ultrastructure in freshwater rearing. Acta Biologica Hungarica, 56(1–2), 169–172.
25. Nagahama, Y. (1983). The functional morphology of teleost gonads. In Fish Physiology Vol. 9A, W. S. Hoar, D. J. Randall and E. M. Donaldson (eds.). New York: Academic Peal.
26. Nóbrega, R. H., Batlouni, S. R., França, L. R. (2009). An overview of functional and stereological evaluation of spermatogenesis and germ cell transplantation in fish. Fish Physiol. Biochem, 35, 197–206.
27. Nyuji, M., Selvaraj, S., Kitano, H., Shiraishi, T., Yamaguchi, A., Shimizu, A. & Matsuyama, M. (2012). Immunoreactivity of gonadotrophs (FSH and LH Cells) and gonadotropin subunit gene expression in the male chub mackerel Scomber japonicus pituitary during the reproductive cycle. Zoological Science, 29, 623-629.
28. Parenti L. R. & Grier, H. J. (2004). Evolution and phylogeny of gonad morphology in bony fishes. Integrative and Comparative Biology, 44, 333-348.
29. Presnell, J. K. & Schreibman, M. P. (1997). Humason’s Animal Tissue Techniques. (5th ed.). USA: Johns Hopkins University Press.
30. Tomkiewicz, J. & Kofoed, T. M. N. (2011). Assessment of Testis Development during Induced Spermatogenesis in the European Eel Anguilla Anguilla. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science, 3, 106–118.
31. Schulz, R. W., de França, L. R., Lareyre, J., LeGac, F., Chiarini-Garcia, H., Nobrega, R. H., et al. (2010). Spermatogenesis in fish. Gen. Comp. Endocrinol., 165, 39–41.
32. Sebastian, H. & Inasu, N. D. (2012). Synchronized development of gonad and bioluminescent system in pugnose poly fish Secutor insiditor Bloch (Leiognathidae) from Kerala coast. Journal of the marine Biological Assocition of India, 54, 5-10.
33. Senarat, S., Kettretad, J. & Jiraungkoorskul, W. (2018). Testicular structure and spermatogenesis of short mackerel, Rastrelliger brachysoma (Bleeker, 1851) in The Upper Gulf of Thailand. Asia-Pacific Journal of Molecular Biology and Biotechnology, 26(2), 30-43.
34. Suvarna, K. S., Layton, C. & Bancroft, J. D. (2013). Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques. (7th ed.). Canada: Elsevier.
35. Tomkiewicz, J. & Kofoed, T. M. N. (2011). Assessment of Testis Development during Induced Spermatogenesis in the European Eel Anguilla Anguilla. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science, 3, 106–118.
2. Acharya, K. V. & Naik, S. D. (2015). Reproductive biology of Polyfish, Leiognathus splendens (Cuvier, 1829) off Ratnagiri Coast, Maharashtra. Global Journal of Multidisciplinary Studies, 4, 289-400.
3.Billard, R. (1970). Ultrastructure comparée de spermatozoides de quelques poissons Téléostéens. In Comparative Spermatology, B. Baccetti (ed.). New York: Academic Press.
4. Billard, R., Richard, M. & Rombauts, R. (1982). Inhibition of spermatogenesis and vitellogenin in rainbow trout by hormonal additives in the diet. The Progressive Fish-Culturist, 44, 15-18.
5. Billard, R. (1992). Reproduction in rainbow trout: sex differentiation, dynamics of gametogenesis, biology and preservation of gametes. Aquaculture, 100, 263-298.
6. Blazer, V. S. (2002). Histopathological assessment of gonadal tissue in wild fishes. Fish Physiology and Biochemistry, 26, 85–101.
7. Brown-Peterson, N. J., Grier, H. J. & Overstreet, R. M. (2002). annual changes in germinal epithelium determine male reproductive classes of the cobia. Journal of Fish Biology, 60, 178-202.
8. Cinquetti, R. (1994). Localization of steroidogenesis in the testis of Padogobius martensi (Pisces, Gobiidae): Histological, histochemical and ultrastructural investigation. Italian Journal of Zoology, 61, 309-315.
9. Dietrich, D. R. and Krieger, H. O. (2009). Histological Analysis of Endocrine Disruptive Effects in Small Laboratory Fish. New Jersey: John Wiley & Sons.
10. Forsgren K.L., Jamam, H., Rarrios, A. Paig-Tran, E.W.M. et al., 2017. Reproductive morphology of oarfish (Regalecus russellii) THE Anatomical record 300:1695–1704 (2017).
11. Gong, X., Wanga, D., Baoa, B., Zhanga, Q., Jiangb, X., Liu, L. (2017). Gonadal development and silvering of the Japanese Eel (Anguilla japonica) in the Yangtze River during downstream migration. Aquaculture and Fisheries, 2, 173-178.
12. Grier, H. J. & Taylor, R. G. 1998. Testicular maturation and regression in the common snook. Journal of Fish Biology, 53, 521-542
13. Grier, H. J. (1975). Aspects of germinal cyst and sperm development in Poecilia latipinna (Teleostei: Poeciliidae). Journal of Morphology, 146, 229-250.
14. Grier, H. J. (1976). Sperm development in the teleost Oryzias latipes. Cell Tissue and Research, 168, 419-431.
15. Grier, H. J. (1993). Comparative organization of sertoli cells including the sertoli cell barrier. In The Sertoli cell, L.D. Russel and M.D. Griswold (eds.), pp 704-739. Clearwater (Florida): Cache River Press.
16. Grier, H. J., Linton, J. R., Leatherland, J. F. & de Vlaming, V. L. (1980). Structural evidence for two different testicular types in teleost fishes. American Journal of Anatomy, 159, 331-345.
17. Grier, H. J., van den Hurk, R. & Billard, R. (1989). Cytological identification of cell types in the testis of Esox lucius and E. niger. Cell and Tissue Research, 257, 491-496.
18. Grier, H. J. & Taylor, R. G. 1998. Testicular maturation and regression in the common snook. Journal of Fish Biology, 53, 521-542.
19. Karmovskaya, E. S. (1994). Systematics and distribution of the eel genus Gavialiceps (Congridae) in the Indo-West Pacific. Journal of Ichthyology, 34(3), 73-89.
20. Lo Nostro, F. L., Antonellin, F. N., Quagio-Grassiotto, I. & Guerrero, G. A. (2004). Testicular interstitial cells, and steroidogenic detection in the protogynous fish, Synbranchus marmoratus (Teleostei, Synbranchidae). Tissue and Cell, 36, 221-231.
21. Mitparian, T., Kettratad, J. & Jiraungkoorskul, W. (2018). Gametogenic maturation of Allenbatrachus grunniens (Linnaeus, 1758) from Pranburi Estuary, Thailand. Proceeding, BioD5, 10-14 July 2018.
22. Miura, T., K. Yamauchi, Y. Nagahama, & H. Takahashi. (1991a). Induction of spermatogenesis in male Japanese eel, Anguilla japonica, by a single injection of human chorionic-gonadotropin. Zoological Science, 81, 63–73.
23. Miura, T., K. Yamauchi, H. Takahashi & Y. Nagahama. (1991b). Hormonal induction of all stages of spermatogenesis in vitro in the male Japanese eel (Anguilla japonica L.). Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA, 88, 5774–5778.
24. Mũller, T., Baska, F., Niklesz, P., Horn, P., Varadi, B. Bercsenyi, M. et al. (2005). The testis histology of artificially maturated european eel (Anguilla anguilla L.) at the end of sexual maturation, and spermatozoa ultrastructure in freshwater rearing. Acta Biologica Hungarica, 56(1–2), 169–172.
25. Nagahama, Y. (1983). The functional morphology of teleost gonads. In Fish Physiology Vol. 9A, W. S. Hoar, D. J. Randall and E. M. Donaldson (eds.). New York: Academic Peal.
26. Nóbrega, R. H., Batlouni, S. R., França, L. R. (2009). An overview of functional and stereological evaluation of spermatogenesis and germ cell transplantation in fish. Fish Physiol. Biochem, 35, 197–206.
27. Nyuji, M., Selvaraj, S., Kitano, H., Shiraishi, T., Yamaguchi, A., Shimizu, A. & Matsuyama, M. (2012). Immunoreactivity of gonadotrophs (FSH and LH Cells) and gonadotropin subunit gene expression in the male chub mackerel Scomber japonicus pituitary during the reproductive cycle. Zoological Science, 29, 623-629.
28. Parenti L. R. & Grier, H. J. (2004). Evolution and phylogeny of gonad morphology in bony fishes. Integrative and Comparative Biology, 44, 333-348.
29. Presnell, J. K. & Schreibman, M. P. (1997). Humason’s Animal Tissue Techniques. (5th ed.). USA: Johns Hopkins University Press.
30. Tomkiewicz, J. & Kofoed, T. M. N. (2011). Assessment of Testis Development during Induced Spermatogenesis in the European Eel Anguilla Anguilla. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science, 3, 106–118.
31. Schulz, R. W., de França, L. R., Lareyre, J., LeGac, F., Chiarini-Garcia, H., Nobrega, R. H., et al. (2010). Spermatogenesis in fish. Gen. Comp. Endocrinol., 165, 39–41.
32. Sebastian, H. & Inasu, N. D. (2012). Synchronized development of gonad and bioluminescent system in pugnose poly fish Secutor insiditor Bloch (Leiognathidae) from Kerala coast. Journal of the marine Biological Assocition of India, 54, 5-10.
33. Senarat, S., Kettretad, J. & Jiraungkoorskul, W. (2018). Testicular structure and spermatogenesis of short mackerel, Rastrelliger brachysoma (Bleeker, 1851) in The Upper Gulf of Thailand. Asia-Pacific Journal of Molecular Biology and Biotechnology, 26(2), 30-43.
34. Suvarna, K. S., Layton, C. & Bancroft, J. D. (2013). Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques. (7th ed.). Canada: Elsevier.
35. Tomkiewicz, J. & Kofoed, T. M. N. (2011). Assessment of Testis Development during Induced Spermatogenesis in the European Eel Anguilla Anguilla. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science, 3, 106–118.