ผลของการเสริมโทโคฟีรอลและซีลิเนียมในอาหารต่อคุณภาพน้ำเชื้อและอัตราการผสมติดในไก่พ่อพันธุ์
Main Article Content
บทคัดย่อ
การทดลองนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของการเสริมโทโคฟีรอลและซีลิเนียมในอาหารต่อคุณภาพน้ำเชื้อและอัตราการผสมติดในไก่พ่อพันธุ์ ใช้ไก่ประดู่หางดำ อายุ 1 ปี จำนวน 36 ตัว แบ่งออกเป็น 9 กลุ่ม กลุ่มละ 4 ตัว ทำการเสริมโทโคฟีรอล (0, 50 และ 100 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร) ร่วมกับซีลีเนียม (0, 0.3 และ 0.6 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร) ในอาหาร เป็นเวลา 14 วัน ทำการรีดน้ำเชื้อสัปดาห์ละ 2 ครั้ง เป็นเวลา 6 สัปดาห์ และประเมินคุณภาพน้ำเชื้อสด โดยประเมินปริมาณน้ำเชื้อ ความเข้มข้นของอสุจิ วิเคราะห์รูปแบบการเคลื่อนที่ด้วยเครื่อง CASA วิเคราะห์อัตราการรอดชีวิต ด้วยการย้อมสีฟลูออเรสเซนต์ SYBR-14 และ PI ทดสอบอัตราการผสมติดกับแม่ไก่ไข่สายพันธุ์ทางการค้าจำนวน 54 ตัว จากการศึกษาพบว่ากลุ่มที่ได้รับโทโคฟีรอลร่วมกับซีลิเนียมในอาหารทุกระดับมีปริมาณน้ำเชื้อและความเข้มข้นไม่แตกต่างกัน กลุ่มที่มีการเสริมโทโคฟีรอลที่ระดับ 50 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร ร่วมกับซีลิเนียมที่ระดับ 0.3 และ 0.6 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร
มีอัตราการเคลื่อนที่รวม (96.06±2.19 และ 96.00±2.27 เปอร์เซ็นต์) และอัตราการรอดชีวิต (92.45±2.13 และ 92.67±2.41 เปอร์เซ็นต์) สูงกว่ากลุ่มอื่น ๆ (P<.05) เมื่อนำน้ำเชื้อไปทดสอบอัตราการผสมติด พบว่ากลุ่มที่มีการเสริมโทโคฟีรอลระดับ 50 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหาร ร่วมกับซีลิเนียมที่ระดับ 0.3 และ 0.6 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหารมีอัตราการผสมติด (93.07±1.17 และ 93.27±3.57 เปอร์เซ็นต์) สูงที่สุด (P<.05) ดังนั้น จึงสรุปได้ว่าการเสริมโทโคฟีรอลระดับ 50 มิลลิกรัม/กิโลกรัมอาหารร่วมกับซีลิเนียมที่ระดับ 0.3 และ 0.6 มิลลิกรัม/กิโลกรัม สามารถปรับปรุงคุณภาพน้ำเชื้อสดและเพิ่มอัตราการผสมติดในไก่ได้
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
Journal of TCI is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International (CC BY-NC-ND 4.0) licence, unless otherwise stated. Please read our Policies page for more information...
เอกสารอ้างอิง
Ahangari, Y. J., Parizadian, B., & Zamani, M. (2013). The impact of organic selenium supplementation on rooster semen quality in liquid condition. Poultry Science Journal, 1(1), 21-28.
Ahsan, U., Kamran, Z., Raza, I., Ahmad, S., Babar, W., Riaz, M. H., & Lqbal, Z. (2014). Role of selenium in male reproduction- A review. Animal Reproduction Science, 146(1-2), 55-62.
Burrows, W. H., & Quinn J. P. (1937). The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey. Poultry Science, 16(1), 19-24.
Christensen, V. L. (1995). Diluents, dilution and storage of poultry semen for six hours. In:
Bakst, M. R., Wishart, G. J. (eds) First International Symposium on the Artificial Insemination of Poultry. Poultry Science Association, 90–106.
Chuaychu-noo, N., Thananurak, P., Boonkum, W., Vongpralub, T., & Chankitisakul, V. (2021).
Effect of organic selenium dietary supplementation on quality and fertility of cryopreserved chicken semen. Cryobiology, 1, 57-62.
Donoghue, A. M., & Donoghue, D. J. (1997). Effects of water and lipid-soluble antioxidants on
Turkey sperm viability, membrane integrity, and motility during liquid storage. Poultry Science, 76(10), 1440-1445.
Ebeid, T. A. (2014). Vitamin E and organic selenium enhances the antioxidative status and
quality of chicken semen under high ambient temperature. British Poultry Science, 53(5), 708-714.
Groce, A. W., Miller, E. R., Hitchcock, J. P., Ullrey, D. E., & Magee, W. T. (1973). Selenium balance in the pig as affected by selenium source and vitamin E. Animal Science, 37(4), 942-947.
Habibian, H., Sadeghi, G., Ghazi, S., & Moeini, M. M. (2015). Selenium as a feed supplement for
heat- stressed poultry: a review. Biological Trace Element Research, 165(2), 183-193.
Khan, R. U. (2011). Antioxidants and poultry semen quality. World's Poultry Science Journal,
(2), 297-308.
Partyka, A., Nizanski, W., & Łukaszewicz, E. (2010). Evaluation of fresh and frozen-thawed fowl
semen by flow cytometry. Theriogenology, 74(6), 1019-1027.
Puglisi, R., Bevilacqua, A., Carlomagno, G., Lenzi, A., Gandini, L., Stefanini, M., Mangia, F., &
Boitani, C. (2007). Mice over expressing the mitochondrial phospholipid hydroperoxide glutathione peroxoidase in male germ cell show abnormal spermatogenesis and reduced fertility. Endocrine, 148(9), 4302-4309
Robinson, M. F., & Thomson, C. D. (1983). The role of selenium in the diet. Nutrition abstract
and Reviews, 53, 3-26.
SAS Institute Inc. (1997). SAS/STAT user’s guide (Version 6.12). SAS Institute Inc.