การทดสอบอาหารสำเร็จรูป ต่อสุขภาพและความไวต่อเชื้อก่อโรคของลูกกุ้งขาวแวนนาไม
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์ในการประเมินและเปรียบเทียบคุณภาพอาหารลูกกุ้งที่มีขายในท้องตลาดประเทศไทยจำนวน 4 ยี่ห้อ (F1 - F4) ต่อการเจริญเติบโตและความไวต่อเชื้อก่อโรคของลูกกุ้งหลังได้รับอาหารแต่ละชนิดเป็นเวลา 10 วัน (PL1 - PL10) โดยอาหาร F1-F3 มีค่าโปรตีนรวม ไขมัน กากและเถ้าอยู่ในเกณฑ์มาตรฐานของกรมประมง ประเทศไทย ส่วนอาหาร F4 มีค่ากากสูงเกินค่ามาตรฐาน ลูกกุ้งที่ได้รับอาหารแต่ละยี่ห้อมีเปอร์เซ็นต์การเข้าระยะ PL10 ไม่แตกต่างกันทางสถิติ (p > 0.05) แต่ในส่วนสุขภาพเนื้อเยื่อตับและตับอ่อนของลูกกุ้งพบว่ามีความแตกต่างกันระหว่าง 4 กลุ่มโดย ลูกกุ้งกลุ่มอาหาร F1 มีการหลุดลอกของท่อตับ และลูกกุ้งกลุ่มอาหาร F3 และ F4 มีการสะสมคล้ายเศษอาหารที่ไม่สามารถย่อยได้ในเซลล์เยื่อบุท่อตับ ในขณะที่ลูกกุ้งกลุ่มอาหาร F2 มีเนื้อเยื้อตับปกติ เมื่อเปรียบเทียบความไวต่อเชื้อก่อโรคโดยการเหนี่ยวนำให้ติดเชื้อแบคทีเรีย Vibrio parahaemolyticus ที่ก่อให้เกิดโรคตับวายเฉียบพลัน (VpAHPND) พบว่า ลูกกุ้งกลุ่มอาหาร F2 มีอัตรารอดสูงสุดและแตกต่างกับลูกกุ้งอีก 3 กลุ่มอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) แต่ไม่พบความแตกต่างของปริมาณเชื้อ Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) ในกุ้งทั้ง 4 กลุ่มเมื่อถูกเหนี่ยวนำให้ติดเชื้อ (p > 0.05) ผลงานวิจัยบ่งชี้ถึงอาหารลูกกุ้งที่ขายตามท้องตลาดมีความหลากหลายและส่งผลกระทบต่อสุขภาพและความไวต่อเชื้อก่อโรคของลูกกุ้งวัยอ่อน
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
กรมประมง. มปป. หลักเกณฑ์ประกอบการพิจารณาการขอขึ้นทะเบียนอาหารสัตว์น้ำ กรมประมง. แหล่งข้อมูล: https://www4.fisheries.go.th/local/file_document/20210225152446_new.pdf. ค้นเมื่อ 21 สิงหาคม 2565.
วารินทร์ ธนาสมหวัง. 2557. การศึกษาระบาดวิทยา ปัจจัยสาเหตุ และแนวทางการแก้ไขปัญหาโรคตายด่วน ในกุ้งทะเลของประเทศไทย. กรุงเทพฯ:กรมประมง.
Bell, T.A., and D.V. Lightner. 1988. A handbook of normal penaeid shrimp histology. World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA.
AOAC. 2016. Official Methods of Analysis of AOAC International. 20th ed., Virginia.
AOAC. 2019. Official Methods of Analysis of AOAC International. 21th ed., Virginia.
Chayaburakul, K., G. Nash, P. Pratanpipat, S. Sriurairatana, and B. Withyachumnarnkul. 2004. Multiple pathogens found in growth-retarded black tiger shrimp Penaeus monodon cultivated in Thailand. Diseases of Aquatic Organisms. 60: 89-96.
Chen, H.Y., and R.H. Tsai. 1986. The dietary effectiveness of Artemia nauplii and microencapsulated food for postlarval Penaeus monodon. In: Chuang, J.L., Shiau, S.Y. (Eds.), Research and Development of Aquatic Animal Feed in Taiwan. I.F.S.T. Monograph Series No. 5, vol. 1. Fisheries Society of Taiwan. Taipei, 73 – 79.
Chen H.Y., Y.T. Len, and I Roelants. 1992. Quantification of arginine requirements of juvenile marine shrimp Penaeus monodon using microencapsulated arginine. Marine Biology. 114: 229-233.
Cousin, M., G. Cuzon, E. Blanchet, F Ruelle, and AQUACOP. 1993. Protein requirements following an optimum dietary energy to protein ratio for Litopenaeus vannamei juveniles. In Fish Nutrition in Practice. Proceedings of the Aquaculture Feed Processing and Nutrition Workshop (ed. S. J. Kaushik and P. Luquet), 599-606. Paris: INRA.
Dangtip, S., R. Sirikharin, P. Sanguanrut, S. Thitamadee, K. Sritunyalucksana, S. Taengchaiyaphum, R. Mavichak, P. Proespraiwong, and T.W. Flegel. 2016. AP4 method for two-tube nested PCR detection of AHPND isolates of Vibrio parahaemolyticus. Aquaculture Reports. 2: 158-162.
Deshimaru, O., and Y. Yone. 1978. Effect of dietary supplements on the feeding behavior of prawn. Bulletin of the Japanese Society for the Science of Fish. 44(8): 903-905.
FAO. 2013. Report of the FAO/MARD Technical Workshop on Early Mortality Syndrome (EMS) or Acute Hepatopancreatic Necrosis Syndrome (AHPNS) of Cultured Shrimp (under TCP/VIE/3304). Hanoi, Viet Nam, on 25–27 June 2013. FAO Fisheries and Aquaculture Report. 1053, 54 pp.
Gerotto, A., P.V. Mantoan, H.H. Gaeta, and A. Augusto. 2015. The Effectof Three commercial feeds used inaquaculture hatcheries on physiologyof the prawn Macrobrachium amazonicum (DECAPODA, PALAEMONIDAE). Boletim do Instituto de Pesca. 41(4): 1013–1024.
Ha, N.T.H., D.T. Ha, N.T. Thuy, and V.T.K. Lien. 2010. Enterocytozoon hepatopenaei has been detected parasitizing tiger shrimp (Penaeus monodon) cultured in Vietnam and showing white feces syndrome (In Vietnamese with English abstract). Journal of Agriculture and Rural Development: Science Technology. 12: 45–50 (translation from Vietnamese).
Hudson, D.A., N.B. Hudson, and S.B. Pyecroft. 2001. Mortalities of Penaeus japonicus prawns associated with microsporidean infection. Australian veterinary journal. 79: 504-505.
ISO 5985:2002. Animal feeding Stuffs- Determination of ash insoluble in hydrochloric acid. 2nd edition.
Jaroenlak, P., P.Sanguanrut, B. A. Williams, G. D. Stentiford, T. W. Flegel, K. Sritunyalucksana, and O. Itsathitphaisarn. 2016. A nested PCR assay to avoid false positive detection of the microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) in environmental samples in shrimp farms. PloS one. 11(11): e0166320.
Kanazawa, A., S. Teshima, and S.Tokiwa. 1979. Biosynthesis of fatty acids from palmitic acid in the prawn, Penaeus japonicus. Mem. Fac. Fish., Kagoshima Univ. 28: 17–20.
Lin, Y.H. and J.J. Mui. 2017. Comparison of dietary inclusion of commercial and fermented soybean meal on oxidative status and non-specific immune responses in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology. 63: 208-212.
Liu T., G. Zhang, Y. Feng, C. Kong, C.L. Ayisia, X. Huang, and X. Hua. 2019. Dietary soybean antigen impairs growth and health through stress-induced non-specific immune responses in Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology. 84: 124–129.
Millamena O.M., M.N. Bautista, O.S. Reyes, and A. Kanazawa. 1997. Threonine requirement of juvenile marine shrimp Penaeus monodon. Aquaculture. 151: 9-14.
Millamena O.M., M.B. Teruel, A. Kanazawa, and S. Teshima. 1999. Quantitative dietary requirements of postlarval tiger shrimp, Penaeus monodon, for histidine, isoleucine, leucine, phenylalanine and tryptophan. Aquaculture. 179: 169-179.
Munkongwongsiri, N., D.J. Aldama-Cano, R. Suebsing, D. Thaiue, T. Prasartset, O. Itsathitphaisarn, and K. Sritunyalucksana. 2021. Microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) spores are inactivated in 1 min at 75 °C. Aquaculture. 533: 736178.
NRC. 2011. Nutrient requirements of fish and shrimp. National Academies Press, Washington D. C., USA.
Oanh T.D.H., and P. Tacon. 2015. Yeast parietal fractions enhance the immune response of shrimp towards AHPND infections. AQUA Culture Asia Pacific Magazine. 11 (2): 26-30.
Official Journal of the European Communities L257/16. Determination of Amino acids. (OJ L 257/16, 19.9.89)
Sharon, G., S. Fridman, N. Reiss-Hevlin, T. Sinai, P. Boisot, and D. Zilberg. 2016. Effects of different commercial diets on growth performance, health and resistance to Tetrahymena sp. infection in guppies, Poecilia reticulata (Peters). Aquaculture Research. 47. 2276–2286.
Sriurairatana S., V. Boonyawiwat, W. Gangnonngiw, C. Laosutthipong, J. Hiranchan, and T. Flegel. 2014. White Feces Syndrome of Shrimp Arises from Transformation, Sloughing and Aggregation of Hepatopancreatic Microvilli into Vermiform Bodies Superficially Resembling Gregarines. Plos One. 9(6): e99170.
Tangprasittipap A., J. Srisala, S. Chouwdee, M. Somboon, N. Chuchird, C. Limsuwan, T. Srisuvan, T. W. Flegel, and K. Sritunyalucksana. 2013. The microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei is not the cause of white feces syndrome in whiteleg shrimp Penaeus (Litopenaeus) vannamei. BMC Veterinary Research. 9(139): 1-10.
Tran, L.H., P.N. Hoang, O.H. Bui, T.D. Nguyen, A.M.H. Wu, S. Ceulemans, and P.Coutteau. 2015. Reduce the Impact of EMS/AHPND: evidence from an experimental challenge with Penaeus vannamei. AQUAFEED. 7(1): 10-14.
Tourtip, S., S. Wongtripop, G.D. Stentiford, K.S. Bateman, S. Sriurairatana, J. Chavadej, K. Sritunyalucksana, and B. Withyachumnarnkul. 2009. Enterocytozoon hepatopenaei sp. nov. (Microsporida: Enterocytozoonidae), a parasite of the black tiger shrimp Penaeus monodon (Decapoda: Penaeidae): Fine structure and phylogenetic relationships. Journal of Invertebrate Pathology. 102: 21-29.
Xie, S., D. Wei, W. Fang, M. Wan, T. Guo, Y. Liu, P. Yin, L. Tian, and J. Niu. 2019. Optimal dietary lipid requirement of postlarval white shrimp, Litopenaeus vannamei in relation to growth performance, stress tolerance and immune response. Aquaculture nutrition. 25(6): 1231-1240.
Xie, S., D. Wei, W. Fang, P. Yin, Y. Liu, J. Niu, and L. Tian. 2020. Survival and protein synthesis of post-larval White Shrimp, Litopenaeus vannamei were affected by dietary protein level. Animal Feed Science and Technology. 263: 114462.