อิทธิพลของน้ำตาลซูโครสและน้ำตาลแมนนิทอลต่อการชะลอการเจริญเติบโตของกล้วยไม้เอื้องสายน้ำนมในสภาพปลอดเชื้อ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาการชะลอการเจริญเติบโตของกล้วยไม้เอื้องสายน้ำนมในสภาพปลอดเชื้อ โดยใช้น้ำตาลซูโครส และน้ำตาลแมนนิทอลด้วยระดับความเข้มข้นที่แตกต่างกัน คือ 0, 2, 4, 6, 8 และ 10 เปอร์เซ็นต์ เติมลงในอาหารสังเคราะห์สูตร Modified Vacin and Went (1949) มีการวางแผนการทดลองแบบ CRD (Completely Randomized Design) 6 สิ่งทดลอง ๆ ละ 10 ซ้ำ ภายหลังการทดลอง 24 สัปดาห์ พบว่า การเติมน้ำตาลซูโครสที่ระดับความเข้มข้น 10 เปอร์เซ็นต์ ส่งผลให้กล้วยไม้เอื้องสายน้ำนมมีความสูงของลำลูกกล้วยเฉลี่ยน้อยที่สุดคือ 1.51 เซนติเมตร การเติมน้ำตาลซูโครสที่ระดับความเข้มข้นแตกต่างกัน ส่งผลให้ขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางของลำลูกกล้วยเฉลี่ย และจำนวนใบเฉลี่ย ไม่แตกต่างกันทางสถิติ เมื่อสิ้นสุดการทดลองพบว่า มีขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางของลำลูกกล้วยเฉลี่ย 0.23 ถึง 0.25 เซนติเมตร และมีจำนวนใบเฉลี่ย 4.05 ถึง 4.75 ใบ สำหรับการเติมน้ำตาลแมนนิทอล พบว่า การเติมน้ำตาลแมนนิทอลระดับความเข้มข้น ความเข้มข้น 8 และ10 เปอร์เซ็นต์ ส่งผลให้ต้นอ่อนกล้วยไม้เอื้องสายน้ำนมมีความสูงของลำลูกกล้วยเฉลี่ยต้นน้อยที่สุด คือ 0.79 และ 0.72 เซนติเมตรตามลำดับ แต่ทำให้เกิดใบและลำลูกกล้วยเหลือง การเติมน้ำตาลแมนนิทอลที่ระดับความเข้มข้นแตกต่างกันไม่มีผลต่อขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางของลำลูกกล้วยเฉลี่ย แต่มีความแตกต่างทางสถิติด้านจำนวนใบ เมื่อสิ้นสุดการทดลองเป็นระยะเวลา 24 สัปดาห์ พบว่า ต้นอ่อนกล้วยไม้เอื้องสายน้ำนมมีขนาดเส้นผ่านศูนย์กลางของลำลูกกล้วยเฉลี่ย 0.22 ถึง 0.25 เซนติเมตร และมีจำนวนใบเฉลี่ย 3.45 ถึง 4.90 ใบ ดังนั้นการใช้น้ำตาลซูโครสระดับความเข้มข้น 10 เปอร์เซ็นต์ สามารถชะลอการเจริญเติบโตได้ดีกว่าการใช้น้ำตาลแมนนิทอลในการชะลอการเจริญเติบโต
Article Details
เอกสารอ้างอิง
กลุ่มงานประสานงานและเสริมสร้างความร่วมมือระหว่างประเทศ กองคุ้มครองพันธุ์สัตว์ป่าและพืชป่าตาม
อนุสัญญา กรมอุทยานแห่งชาติ สัตว์ป่า และพันธุ์พืช. (2556). กล้วยไม้ป่าในผืนป่าตะวันออก ตอนที่ 1 [Wild orchids of the eastern forest, Part 1] (1st ed.). ชุมนุมสหกรณ์การเกษตรแห่งประเทศไทย.
จุฑามาศ วงศ์จักร. (2563). ฤทธิ์ทางชีวภาพของสารสกัดจากกล้วยไม้สกุลหวายต่อการต้านอนุมูลอิสระ และการยับยั้งการเจริญของเซลล์มะเร็งลำไส้ [Biological activity of Dendrobium orchid extracts on antioxidant activity and colon cancer cell growth inhibition] [Master's thesis, Maejo University].
พรพรรณ สุขุมพินิจ, กมรภัทร ศิริพงษ์, และอดิศักดิ์ การพึ่งตน. (2563). อิทธิพลของน้ำตาลซูโครสต่อการชะลอการเจริญเติบโตต้นอ่อนกล้วยไม้เอื้องดอกมะเขือในสภาพปลอดเชื้อ [Effect of sucrose on the in vitro growth retardation of Dendrobium aphyllum seedlings]. วารสารวิจัยรำไพพรรณี, 14(1), 52–56.
มูลนิธิกล้วยไม้ไทย. (2559). ชีวิตงามกล้วยไม้ไทย [The beautiful life of Thai orchids]. เชียงใหม่โรงพิมพ์แสงศิลป์.
รังสฤษดิ์ กาวีต๊ะ. (2545). การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช: หลักการและเทคนิค [Plant tissue culture: Principles and techniques] (3rd ed.). สำนักพิมพ์มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์.
AlMousa, R., & Hassan, N. (2022). Effect of osmotic regulators on in vitro conservation of grape. Journal of Genetic and Environmental Resources Conservation, 10, 60–66.
Ashmore, S. E. (1997). Status report on the development and application of in vitro techniques for the conservation and use of plant genetic resources. International Plant Genetic Resources Institute.
Bhuiyan, M., Hossain, M., & Haque, M. (2016). In vitro conservation of taro (Colocasia esculenta var. globulifera) as influenced by mannitol. Bangladesh Journal of Agricultural Research, 41, 67–74. https://doi.org/10.3329/bjar.v41i1.27668
Distabanjong, K., Distabanjong, C., & Ruengwiset, B. (2010). In vitro propagation and conservation of Rhynchostylis gigantea (Lindl.) Ridl. In Proceedings of the 48th Kasetsart University Annual Conference (pp. 571–578). Kasetsart University.
Engelmann, F. (1991). In vitro conservation of tropical plant germplasm — A review. Euphytica, 57, 227–243.
Grout, W. V. (1991). Conservation in vitro. Acta Horticulturae, 289, 171–178.
Hernández-Leal, E., Reyes-López, D., Castillo-Martínez, C. R., Avendaño-Arrazate, C. H., Corona-Torres, T., García-Zavala, J. J., & Pascual-Ramírez, F. (2020). In vitro conservation of Vanilla planifolia hybrids in minimal growth conditions. Agro Productividad, 13, 3–10.
Linjikao, J., Inthima, P., Limmongkon, A., & Kongbangkerd, A. (2024). Mannitol and sorbitol concentration optimization for effective Epipactis flava Seidenf. in vitro slow growth storage. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 60, 496–507. https://doi.org/10.1007/s11627-024-10437-w
Lopez-Puc, G. (2013). An effective in vitro slow growth protocol for conservation of the orchid Epidendrum chlorocorymbos Schltr. Tropical and Subtropical Agroecosystems, 16, 61–68.
Razdan, M. K. (1994). An introduction to plant tissue culture. Chapman Enterprises. (corrected from "Chaman Enterprises" — likely a typo; please verify)
Sarkar, D., & Naik, P. S. (1998). Factors affecting minimal growth conservation of potato microplants in vitro. Euphytica, 102, 275–280.
Sukhumpinij, P. (2019). Effect of sucrose on in vitro germplasm preservation in Dendrobium friedericksianum Rchb.f. Acta Horticulturae, 1262, 63–66.
Towill, L. E. (1995). Cryopreservation by vitrification. In B. Grout (Ed.), Genetic preservation of plant cells in vitro (pp. 99–111). Springer-Verlag.
Vacin, E. F., & Went, F. W. (1949). Some pH changes in nutrient solutions. Botanical Gazette, 110, 605–613.
Zhang, G. N., Zhong, L. Y., Bligh, S. A., Guo, Y. L., Zhang, C. F., Zhang, M., Wang, Z. T., & Xu, L.-S. (2005). Bi-bicyclic and bi-tricyclic compounds from Dendrobium thyrsiflorum. Phytochemistry, 66, 1113–1120. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2005.04.001
