ความสัมพันธ์ของยีน PIT1 MSTN และ TGF-β3 กับน้ำหนักตัว ขนาดรอบอกและความกว้างอกในไก่พื้นเมืองพันธุ์ชี เคเคยู 12 และไก่พื้นเมืองพันธุ์ประดู่หางดำ มข. 55
Article Sidebar
เผยแพร่แล้ว:
ธ.ค. 25, 2018
คำสำคัญ:
ไก่พื้นเมือง การเจริญเติบโต เครื่องหมายดีเอ็นเอ
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาความผันแปรของยีน PIT1, MSTN และ TGF-β3 ด้วยเทคนิค PCR-RFLP ร่วมกับวิเคราะห์ความสัมพันธ์รูปแบบยีนกับน้ำหนักตัว ขนาดรอบอกและความกว้างอก ที่อายุ 14 สัปดาห์ ในไก่พื้นเมืองไทยพันธุ์ชี เคเคยู 12 (ชี เคเคยู 12) จำนวน 73 ตัวอย่าง ไก่พื้นเมืองไทยพันธุ์ประดู่หางดำ มข. 55 (ประดู่หางดำ มข. 55) จำนวน 55 ตัวอย่าง ผลการศึกษาพบรูปแบบจีโนไทป์ 3 รูปแบบของยีน PIT1 และ TGF-β3 ในไก่พื้นเมืองทั้งสองพันธุ์ สำหรับยีน MSTN พบจีโนไทป์ 3 รูปแบบในไก่ชี เคเคยู 12 และจีโนไทป์ 2 รูปแบบในไก่ประดู่หางดำ มข.55 เมื่อวิเคราะห์ความสัมพันธ์จีโนไทป์ ในไก่ชี เคเคยู 12 พบความสัมพันธ์จีโนไทป์ AA และ GA ของยีน MSTN มีความสัมพันธ์กับน้ำหนักตัวเพิ่มขึ้นที่อายุ 14 สัปดาห์ อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.05) เท่ากับ 1196.39±33.87 กรัม และ1175.97±21.24 กรัม เมื่อเปรียบเทียบกับ GG เท่ากับ 1110.66±20.28 กรัม นอกจากนี้ พบรูปแบบจีโนไทป์ AA ของยีน MSTN มีความสัมพันธ์กับการเพิ่มความยาวรอบอก และขนาดรอบอก ในขณะที่ผลการวิเคราะห์ในไก่ประดู่หางดำ มข. 55 พบรูปแบบจีโนไทป์ CC และ CT ของยีน PIT1 มีความสัมพันธ์กับน้ำหนักตัวเพิ่มขึ้นที่อายุ 4 สัปดาห์ อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.05) เท่ากับ 171.52±10.95 กรัม และ 162.72±6.80 กรัม สูงกว่าจีโนไทป์ TT (134.19±13.45 กรัม) และเมื่อพิจารณาอิทธิพลของยีนในไก่พื้นเมืองทั้งนี้ พันธุ์ พบความสัมพันธ์ของยีน MSTN กับน้ำหนักตัวเพิ่มขึ้นเมื่ออายุ 14 สัปดาห์ โดยรูปแบบจีโนไทป์ GA ให้ค่าเฉลี่ยน้ำหนักตัวสูงที่สุด เท่ากับ 1241.67±23.77 กรัม สูงกว่าจีโนไทป์ AA และ GG เท่ากับ 1193.69±25.06 กรัม และ 1172.88±30.44 กรัม ตามลำดับ นอกจากนี้ ยังพบว่าที่อายุ 14 สัปดาห์ ไก่ประดู่หางดำ มข. 55 มีค่าเฉลี่ยน้ำหนักตัว สูงกว่าไก่ชี เคเคยู12 อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.05) เท่ากับ 1253.90±28.56 กรัม และ 1151.60±20.12 กรัม ผลการศึกษาครั้งนี้ แสดงให้เห็นความหลากหลายรูปแบบยีน PIT1 และ MSTN น่าจะมีส่วนเกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและน้ำหนักตัวในไก่พื ้นเมือง แต่ไม่พบความสัมพันธ์ของยีน TGF-β3 กับลักษณะต่าง ๆ ที่ศึกษา ดังนั้นมีความเป็นไปได้ในการใช้รูปแบบยีน PIT1 และยีน MSTN เพื่อพัฒนาเป็นเครื่องหมายพันธุกรรมช่วยในการคัดเลือกลักษณะการเจริญเติบโตและนน้ำหนักตัวในไก่พื ้นเมืองไทยต่อไป
Article Details
How to Cite
บท
บทความวิจัย (research article)
References
พิริยาภรณ์ สังคปรีชา, มนต์ชัย ดวงจินดา, บัญญัติ เหล่าไพบูลย์, และวุฒิไกร บุญคุ้ม. 2558. การประมาณค่าพารามิเตอร์ทางพันธุกรรมของสมรรถนะการเจริญเติบโตในไก่ดำสายพันธุ์ต่างๆ และลูกผสมไก่ดำ. แก่นเกษตร. 43: 309-318.
มนต์ชัย ดวงจินดา. 2544. การใช้โปรแกรม SAS เพื่อการวิเคราะห์ทางสัตว์. ภาควิชาสัตวศาสตร์ คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น, ขอนแก่น.
มนต์ชัย ดวงจินดา, บัญญัติ เหล่าไพบูลย์, เทวินทร์ วงษ์พระลับ, สจี กัณหาเรียง, วุฒิไกร บุญคุ้ม, ยุพิน ผาสุข และ พิชญ์รัตน์ แสนไชยสุริยา. 2556. รายงานวิจัยฉบับสมบูรณ์เสนอต่อสำนักประสานงานชุดโครงการ ศูนย์เครือข่ายวิจัยและพัฒนาด้านการปรับปรุงพันธุ์สัตว์ (ไก่พื้นเมือง) สำนักงานกองทุนสนับสนุนการวิจัย, กรุงเทพฯ.ศูนย์เครือข่ายวิจัยและพัฒนาด้านการปรับปรุงพันธุ์สัตว์ (ไก่พื้นเมือง). 2553. การวัดความกว้างอก รอบอก. แหล่งข้อมูล: https://goo.gl/cXszQ1 ค้นเมื่อ 10 สิงหาคม 2561.
สจี กัณหาเรียง. 2560. การประเมินความหลากหลายพันธุกรรมของลักษณะผลผลิตเนื้อ และคุณภาพเนื้อในไก่พื้นเมืองไทย. รายงานการวิจัยฉบับสมบูรณ์. สนับสนุนโดยสำนักงานกองทุนสนับสนุนการวิจัย (สกว.) และ มหาวิทยาลัยขอนแก่น (Project Code : TRG5880022).
อภิชัย รัตนวราหะ. 2541. ไก่พื้นเมือง: สัตว์เศรษฐกิจระดับชาวบ้าน. พิมพ์ครั้งที่ 3. สำนักพิมพ์มติชน, กรุงเทพฯ.
Allais, S., H. Leve ́ziel and N. Payet-Duprat. 2010. The two mutations, Q204X and nt821 of the myostatin gene affect carcass and meat quality in young heterozygous bulls of French beef breeds. J. Anim. Sci. 88:446–54.
Amirinia, C., H. R. Seyedabadi, N. Amirmozafari, R. V. Torshizi, M. Chamani, A. J. Aliabad and M. A. Abbasi. 2011. Association of transforming growth factor-ß3 gene polymorphism with growth and body composition traits in Iranian commercial broiler lines. Afr. J. Biotechnol. 10:1784-1788.
Baron, E. E., A. .A. Wenceslau, L. E. Alvares, K. Nones, D. C. Ruy, G. S. Schmidt, E. L. Zanella, L. L. Coutinho and M. C. Ledur. 2002. High level of polymorphism in the myostatin chicken gene. Pp. 19-23 in Proc. 7th World Congr. Genet. Appl. Livest. Prod. Montpellier, France.
Bai, J.Y., Q. Zhang and X. P. Jia. 2006. Comparison of different foreground and background selection methods in marker-assisted introgression. Acta Genetica Sinica.33:1073-1080.
Buasook, T., M. Duangjinda, B. Laopaiboon and S. Kunhareang. 2015. Genetic Pattern of MSTN and TGF-β3 in Thai Native Chicken Crossbred. KHON KAEN AGR. J. 43:200-202.
Carrijo, S. M., M. M. De Alencar, F. L. B. Toral, and L. C. De Almedia Regitano. 2008. Association of Pit1 genotypes with growth traits in Canchim cattle. Sci. Agric.65:116-121.
Goodwin, W., A. Linacre, and S. Hadi. 2007. An Introduction to Forensic Genetics. John Wiley & Sons Ltd., Chicheste.
Gu, Z. L., D. H. Zhu, N. Li, H. Li, X. M. Deng, and C. X. Wu. 2003. Polymorphisms of myostatin gene and its relationship with the development of skeletal muscle and fat in chickens. Science in China Series C: Life Sciences. 33:273–80.
Gu Z., D. Zhu, N. Li, H. Li, X. Deng, and C. Wu. 2004. The single nucleotide polymorphisms of the chicken myostatin gene are associated with skeletal muscle and adipose growth. Sci. China Ser. C Life Sci. 47: 26-31.
Guillaume, F., S. Fritz, D. Boicharo, and T. Druet. 2008. Estimation by simulation of the efficiency of the French marker – assisted selection program in dairy cattle. Gnet. Sel. Evol. 40: 91-102.
Jaturasitha, S., T. Srikanchai, M. Kreuzer, and M. Wicke. 2008. Differences in carcass and meat characteristics between chicken indigenous to northern Thailand (Black-boned and Thai native) and imported extensive breeds (Bresse and Rhode Island Red). Poult. Sci. 87:160–169.
Jiang, R., J. Li, L. Qu, H. Li, and N. Yang. 2004. A new single-nucleotide polymorphism in the chicken pituitary-specific transcription factor (POU1F1) gene associated with growth rate. Anim. Genet. 35:344–346.
Karim, L., W. Coppieters, L. Grobet, A. Valentini, and M. Georges. 2000. Convenient genotyping of six myostatin mutations causing double-muscling in cattle using a multiplex oligonu-cleotide ligation assay. Anim. Genet.31:396-399.
Le Bihan-Duval, E. M. Debut, C. M. Berri1, N. Sellier, V. Santé-Lhoutellier, Y. Jégo, and C. Beaumont. 2008. Chicken meat quality: genetic variability and relationship with growth and muscle characteristics. BMC Genetics. 9:53 doi:10.1186/1471-2156-9-53.
Li, H., N. Deeb, H. Zhou, A. D. Mitchell, C. M. Ashwell, and S. J. Lamont. 2003. Chicken quantitative trait loci for growth and body composition associated with transforming growth factor beta genes. Poult. Sci. 82:347–356.
Liu, L. X., T. F. Dou, Q. H. LI, H. Rong, H. Q. Tong, Z. Q. Xu, Y. Huang, D. H. Gu, X. B. Chen, C. R. Ge, and J. J. Jia. 2016. Myostatin mRNA expression and its association with body weight and carcass traits in Yunnan Wuding chicken. Genet. Mol. Res. 15: 1-12.
Lu, S. X. and C. X. Wu. 2002. Research and application of animal genetic marker-assisted selection. Yi Chuan.24: 359-362.
Lu, J., S. Hou, W. Huang, J. Yu, and W. Wang. 2011. Polymorphisms in the myostatin gene and their association with growth and carcass traits in duck. Afr. J. Biotech. 54: 11309-11312.
Nie, Q., B. Sun, D. Zhang, C. Luo, N. A. Ishag, M. Lei, G. Yang, and X. Zhan. 2005. High diversity of the chicken growth hormone gene and effects on growth and carcass traits. J. Hered. 96:698-703.
Nie, Q. H., M. X. Fang, L. Xie, M. Zhou, Z. M. Liang, Z. P. Luo, G. H. Wang, W. S. Bi, C. J. Liang, W. Zhang, and X. Q. Zhang. 2008. The PIT-1gene polymorphisms were associated with chicken growth traits. BMC Genet. 9:20-24.
Roberts, A. B., and M. B. Sporn. 2012. Transforming growth factorbeta: A large family of multifunctional regulatory proteins. J. Anim. Sci. 66:67–75.
Saadey, S. M., A. Galal, H.I. Zaky, and A. Zein ElDein. 2008. Diallel Crossing Analysis for Body Weight and Egg Production Traits of two native Egyptian and two Exotic Chicken Breeds. International Journal of poultry Science. 7: 64-71.
SAS Institude, Inc. 2015. SAS/STAT®14.1 User’s Guide. Cary, NC: SAS Institute Inc.Saxena, V. K., A. K. Sachdev, R. Gopal, and A. B. Pramod. 2009. Roles of important candidate genes on broiler meat quality. World’s Poult. Sci. J. 65:37–50.
Siwendu, N. A., D. Norris, J.W. Ngambi, H.A. Shinmelis, and Benyi, K. 2013. Heterosis and combining ability for body weight in diallele cross of three chicken genotypes. Trop. Anim. Helth. Prod. 45: 965-970.
Wang, J. Y. and G. H. Chen. 2004. Quantitative genetics and animal breeding. Nanjing.
Wiener, P., J. A. Woolliams, A. Frank-Lawale, M. Ryan, R. I. Richardson, G. R. Nute, J. D. Wood, D. Homer, and J. L. Williams. 2009. The effects of a mutation in the myostatin gene on meat and carcass quality. Meat Sci. 83:127–34.
Williams, S. M., S. E. Price, and P. B. Siegel. 2002. Heterosis of growth and reproductive traits in fowl. Poultry Science. 8: 1109-1112.
Xue, K., H. Chen, S. Wang, X. Cai, B. Liu, C. F. Zhang, C. Z. Lei, X. Z. Wang, Y. M. Wang , and H. Niu. 2006. Effect of genetic variations of the POU1F1 gene on growth traits of Nanyang cattle. Acta Genetica Sinica.33:901-907.
Ye, X., S. R. Brown, K. Nones, L. L. Coutinho, J. C. Dekkers, and S. J. Lamont. 2007. Associations of myostatin gene polymor-phisms with performance and mortality traits in broiler chickens. Genet. Sel. Evol.39:73-89.
Zhang, C., B. Liu, H. Chen, X. Lan, C. Lei, Z. Zhang, and R. Zhang. 2009. Associations of a HinfI PCR-RFLP of POU1F1 gene with growth traits in Qinchuan cattle. Anim. Biotechnol. 20:71-74. Zhang, G. X., X. H. Zhao, J. Y. Wang, F. X. Ding, and L. Zhang. 2011. Effect of an exon 1 mutation in the myostatin gene on the growth traits of the Bian chicken. Anim. Genet. 43:458–459.
Zhou, H., A. D. Mitchell, J. P. McMurtry, C. M. Ashwell, and S. J. Lamont. 2005. Insulin-like growth factor-I gene polymorphism associations with growth, body composition, skeleton integrity, and metabolic traits in chickens. Poult. Sci. 84:212-219.
Zintzaras, E. 2010. Impact of Hardy-Weinberg equilibrium deviation on allele-based risk effect of genetic association studies and meta-analysis. Eur. J. Epidemiol. 25: 553-560.
มนต์ชัย ดวงจินดา. 2544. การใช้โปรแกรม SAS เพื่อการวิเคราะห์ทางสัตว์. ภาควิชาสัตวศาสตร์ คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น, ขอนแก่น.
มนต์ชัย ดวงจินดา, บัญญัติ เหล่าไพบูลย์, เทวินทร์ วงษ์พระลับ, สจี กัณหาเรียง, วุฒิไกร บุญคุ้ม, ยุพิน ผาสุข และ พิชญ์รัตน์ แสนไชยสุริยา. 2556. รายงานวิจัยฉบับสมบูรณ์เสนอต่อสำนักประสานงานชุดโครงการ ศูนย์เครือข่ายวิจัยและพัฒนาด้านการปรับปรุงพันธุ์สัตว์ (ไก่พื้นเมือง) สำนักงานกองทุนสนับสนุนการวิจัย, กรุงเทพฯ.ศูนย์เครือข่ายวิจัยและพัฒนาด้านการปรับปรุงพันธุ์สัตว์ (ไก่พื้นเมือง). 2553. การวัดความกว้างอก รอบอก. แหล่งข้อมูล: https://goo.gl/cXszQ1 ค้นเมื่อ 10 สิงหาคม 2561.
สจี กัณหาเรียง. 2560. การประเมินความหลากหลายพันธุกรรมของลักษณะผลผลิตเนื้อ และคุณภาพเนื้อในไก่พื้นเมืองไทย. รายงานการวิจัยฉบับสมบูรณ์. สนับสนุนโดยสำนักงานกองทุนสนับสนุนการวิจัย (สกว.) และ มหาวิทยาลัยขอนแก่น (Project Code : TRG5880022).
อภิชัย รัตนวราหะ. 2541. ไก่พื้นเมือง: สัตว์เศรษฐกิจระดับชาวบ้าน. พิมพ์ครั้งที่ 3. สำนักพิมพ์มติชน, กรุงเทพฯ.
Allais, S., H. Leve ́ziel and N. Payet-Duprat. 2010. The two mutations, Q204X and nt821 of the myostatin gene affect carcass and meat quality in young heterozygous bulls of French beef breeds. J. Anim. Sci. 88:446–54.
Amirinia, C., H. R. Seyedabadi, N. Amirmozafari, R. V. Torshizi, M. Chamani, A. J. Aliabad and M. A. Abbasi. 2011. Association of transforming growth factor-ß3 gene polymorphism with growth and body composition traits in Iranian commercial broiler lines. Afr. J. Biotechnol. 10:1784-1788.
Baron, E. E., A. .A. Wenceslau, L. E. Alvares, K. Nones, D. C. Ruy, G. S. Schmidt, E. L. Zanella, L. L. Coutinho and M. C. Ledur. 2002. High level of polymorphism in the myostatin chicken gene. Pp. 19-23 in Proc. 7th World Congr. Genet. Appl. Livest. Prod. Montpellier, France.
Bai, J.Y., Q. Zhang and X. P. Jia. 2006. Comparison of different foreground and background selection methods in marker-assisted introgression. Acta Genetica Sinica.33:1073-1080.
Buasook, T., M. Duangjinda, B. Laopaiboon and S. Kunhareang. 2015. Genetic Pattern of MSTN and TGF-β3 in Thai Native Chicken Crossbred. KHON KAEN AGR. J. 43:200-202.
Carrijo, S. M., M. M. De Alencar, F. L. B. Toral, and L. C. De Almedia Regitano. 2008. Association of Pit1 genotypes with growth traits in Canchim cattle. Sci. Agric.65:116-121.
Goodwin, W., A. Linacre, and S. Hadi. 2007. An Introduction to Forensic Genetics. John Wiley & Sons Ltd., Chicheste.
Gu, Z. L., D. H. Zhu, N. Li, H. Li, X. M. Deng, and C. X. Wu. 2003. Polymorphisms of myostatin gene and its relationship with the development of skeletal muscle and fat in chickens. Science in China Series C: Life Sciences. 33:273–80.
Gu Z., D. Zhu, N. Li, H. Li, X. Deng, and C. Wu. 2004. The single nucleotide polymorphisms of the chicken myostatin gene are associated with skeletal muscle and adipose growth. Sci. China Ser. C Life Sci. 47: 26-31.
Guillaume, F., S. Fritz, D. Boicharo, and T. Druet. 2008. Estimation by simulation of the efficiency of the French marker – assisted selection program in dairy cattle. Gnet. Sel. Evol. 40: 91-102.
Jaturasitha, S., T. Srikanchai, M. Kreuzer, and M. Wicke. 2008. Differences in carcass and meat characteristics between chicken indigenous to northern Thailand (Black-boned and Thai native) and imported extensive breeds (Bresse and Rhode Island Red). Poult. Sci. 87:160–169.
Jiang, R., J. Li, L. Qu, H. Li, and N. Yang. 2004. A new single-nucleotide polymorphism in the chicken pituitary-specific transcription factor (POU1F1) gene associated with growth rate. Anim. Genet. 35:344–346.
Karim, L., W. Coppieters, L. Grobet, A. Valentini, and M. Georges. 2000. Convenient genotyping of six myostatin mutations causing double-muscling in cattle using a multiplex oligonu-cleotide ligation assay. Anim. Genet.31:396-399.
Le Bihan-Duval, E. M. Debut, C. M. Berri1, N. Sellier, V. Santé-Lhoutellier, Y. Jégo, and C. Beaumont. 2008. Chicken meat quality: genetic variability and relationship with growth and muscle characteristics. BMC Genetics. 9:53 doi:10.1186/1471-2156-9-53.
Li, H., N. Deeb, H. Zhou, A. D. Mitchell, C. M. Ashwell, and S. J. Lamont. 2003. Chicken quantitative trait loci for growth and body composition associated with transforming growth factor beta genes. Poult. Sci. 82:347–356.
Liu, L. X., T. F. Dou, Q. H. LI, H. Rong, H. Q. Tong, Z. Q. Xu, Y. Huang, D. H. Gu, X. B. Chen, C. R. Ge, and J. J. Jia. 2016. Myostatin mRNA expression and its association with body weight and carcass traits in Yunnan Wuding chicken. Genet. Mol. Res. 15: 1-12.
Lu, S. X. and C. X. Wu. 2002. Research and application of animal genetic marker-assisted selection. Yi Chuan.24: 359-362.
Lu, J., S. Hou, W. Huang, J. Yu, and W. Wang. 2011. Polymorphisms in the myostatin gene and their association with growth and carcass traits in duck. Afr. J. Biotech. 54: 11309-11312.
Nie, Q., B. Sun, D. Zhang, C. Luo, N. A. Ishag, M. Lei, G. Yang, and X. Zhan. 2005. High diversity of the chicken growth hormone gene and effects on growth and carcass traits. J. Hered. 96:698-703.
Nie, Q. H., M. X. Fang, L. Xie, M. Zhou, Z. M. Liang, Z. P. Luo, G. H. Wang, W. S. Bi, C. J. Liang, W. Zhang, and X. Q. Zhang. 2008. The PIT-1gene polymorphisms were associated with chicken growth traits. BMC Genet. 9:20-24.
Roberts, A. B., and M. B. Sporn. 2012. Transforming growth factorbeta: A large family of multifunctional regulatory proteins. J. Anim. Sci. 66:67–75.
Saadey, S. M., A. Galal, H.I. Zaky, and A. Zein ElDein. 2008. Diallel Crossing Analysis for Body Weight and Egg Production Traits of two native Egyptian and two Exotic Chicken Breeds. International Journal of poultry Science. 7: 64-71.
SAS Institude, Inc. 2015. SAS/STAT®14.1 User’s Guide. Cary, NC: SAS Institute Inc.Saxena, V. K., A. K. Sachdev, R. Gopal, and A. B. Pramod. 2009. Roles of important candidate genes on broiler meat quality. World’s Poult. Sci. J. 65:37–50.
Siwendu, N. A., D. Norris, J.W. Ngambi, H.A. Shinmelis, and Benyi, K. 2013. Heterosis and combining ability for body weight in diallele cross of three chicken genotypes. Trop. Anim. Helth. Prod. 45: 965-970.
Wang, J. Y. and G. H. Chen. 2004. Quantitative genetics and animal breeding. Nanjing.
Wiener, P., J. A. Woolliams, A. Frank-Lawale, M. Ryan, R. I. Richardson, G. R. Nute, J. D. Wood, D. Homer, and J. L. Williams. 2009. The effects of a mutation in the myostatin gene on meat and carcass quality. Meat Sci. 83:127–34.
Williams, S. M., S. E. Price, and P. B. Siegel. 2002. Heterosis of growth and reproductive traits in fowl. Poultry Science. 8: 1109-1112.
Xue, K., H. Chen, S. Wang, X. Cai, B. Liu, C. F. Zhang, C. Z. Lei, X. Z. Wang, Y. M. Wang , and H. Niu. 2006. Effect of genetic variations of the POU1F1 gene on growth traits of Nanyang cattle. Acta Genetica Sinica.33:901-907.
Ye, X., S. R. Brown, K. Nones, L. L. Coutinho, J. C. Dekkers, and S. J. Lamont. 2007. Associations of myostatin gene polymor-phisms with performance and mortality traits in broiler chickens. Genet. Sel. Evol.39:73-89.
Zhang, C., B. Liu, H. Chen, X. Lan, C. Lei, Z. Zhang, and R. Zhang. 2009. Associations of a HinfI PCR-RFLP of POU1F1 gene with growth traits in Qinchuan cattle. Anim. Biotechnol. 20:71-74. Zhang, G. X., X. H. Zhao, J. Y. Wang, F. X. Ding, and L. Zhang. 2011. Effect of an exon 1 mutation in the myostatin gene on the growth traits of the Bian chicken. Anim. Genet. 43:458–459.
Zhou, H., A. D. Mitchell, J. P. McMurtry, C. M. Ashwell, and S. J. Lamont. 2005. Insulin-like growth factor-I gene polymorphism associations with growth, body composition, skeleton integrity, and metabolic traits in chickens. Poult. Sci. 84:212-219.
Zintzaras, E. 2010. Impact of Hardy-Weinberg equilibrium deviation on allele-based risk effect of genetic association studies and meta-analysis. Eur. J. Epidemiol. 25: 553-560.