ผลของระดับ Lactobacillus casei และพลูคาว (Houttuynia cordata Thunb.) ต่อสมบัติทางเคมี กายภาพ และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของน้ำหมักชีวภาพพลูคาว
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของระดับ Lactobacillus casei (L. casei) และผงพลูคาว (Houttuynia cordata powder: HCP) ที่มีต่อคุณสมบัติทางเคมี กายภาพ และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของน้ำหมักชีวภาพพลูคาว วางแผนการทดลองแบบ 4 × 3 factorial in completely randomized design (CRD) โดยมีปัจจัย A คือ ระดับของ L. casei ได้แก่ 0, 1, 10 และ 20% (v/v) ตามลำดับ และปัจจัย B คือ ระดับของ HCP ได้แก่ 10, 12.5 และ 15% (w/v) ตามลำดับ วิเคราะห์ข้อมูลประกอบด้วย ปริมาณแบคทีเรียทั้งหมด ปริมาณสารฟีนอลิก ปริมาณฟลาโวนอยด์ ปริมาณเควอร์ซิทริน ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ DPPH IC50 และ ABTS IC50 ความชื้น ค่า pH ปริมาณของแข็งที่ละลายได้ทั้งหมด และความเป็นกรดทั้งหมด ผลการทดลองพบว่า ทั้งปัจจัยระดับของ L. casei และ HCP ส่งผลต่อคุณสมบัติของน้ำหมักชีวภาพอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p<0.05) โดยเฉพาะในกลุ่มที่เติม L. casei 1% ร่วมกับ HCP 15% พบว่า มีปริมาณแบคทีเรียทั้งหมดสูงที่สุด 8.667 × 106 CFU/ml ปริมาณสารฟีนอลิก 22.351 มก./ก. ปริมาณฟลาโวนอยด์ 13.874 มก./ก. และปริมาณเควอร์ซิทริน 904.438 มคก./ล. พร้อมทั้งมีค่าฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในระดับดี โดยมีค่า DPPH IC50 398.297 มคก./มล. และ ABTS IC50 145.239 มคก./มล. ทั้งนี้เมื่อพิจารณาจากค่าปริมาณจุลินทรีย์ สารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ การเติม L. casei 1% ร่วมกับ HCP 15% แสดงถึงศักยภาพในการพัฒนาน้ำหมักชีวภาพพลูคาวที่มีคุณภาพทางเคมี กายภาพ และฤทธิ์ทางชีวภาพที่เหมาะสมต่อการประยุกต์ใช้ในอุตสาหกรรมปศุสัตว์อย่างมีประสิทธิภาพ
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
จริยา ชมวารินทร์, กัญญลักษณ์ ชัยคาภา และนเรศ วโรภาสตระกูล. 2541. แบคทีเรียวิทยาพื้นฐาน. ขอนแก่น: โรงพิมพ์คลังนานาวิทยา.
ทศพล พลคำมาก, ธีระ ฤทธิรอด และสิรินดา ยุ่นฉลาด. 2559. การเพิ่มฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของน้ำพลูคาวด้วยการผสมกับกระชายดำและหมักด้วยแบคทีเรียกรดแลคติก. แหล่งข้อมูล: https://ph02.tci-thaijo.org/index.php/gskku/article/view/60981/50228. ค้นเมื่อ 18 กันยายน 2564.
นักสิทธิ์ ปัญโญใหญ่. 2554. ผลของอุณหภูมิอบแห้งต่อฤทธิ์ในการต้านอนุมูลอิสระของสมุนไพรพลูคาว (Houttuynia cordata Thunb.). วารสารวิทยาศาสตร์เกษตร. 42: 556-558.
บัณฑรวรรณ ธุระพระ, จันทนา บุญยะรัตน์, เยาวเรศ ชูลิขิต และสุภาวดี ดาวดี. 2559. การวิเคราะห์ปริมาณสารสำคัญและฤทธิ์ต้านออกซิเดชันในส้มโอ. วารสารเภสัชศาสตร์อีสาน. 11: 80-91.
ภัททิรา ประสาทแก้ว. 2561. ผลของการเสริมใบพลูคาวต่อภูมิต้านทานโรค การให้ผลผลิต และคุณภาพไข่ของไก่ไข่. วารสารวิทยาศาสตร์เกษตร. 49: 115-118.
สถาบันวิจัยสมุนไพร. 2546. สมุนไพรน่ารู้: ผักคาวตอง Houttuynia cordata Thunb. กรุงเทพฯ: สถาบันวิจัยสมุนไพร กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข.
วีระกิจ หิรัญวิวัฒน์กุล. 2561. โพรไบโอติกส์. แหล่งข้อมูล: https://www.nonthavej.co.th/Probiotics.php. ค้นเมื่อ 16 กันยายน 2566.
ใจพร พุ่มคำ. 2555. อาหาร (ไม่) ปลอดภัย ผลจากการใช้ยาปฏิชีวนะในสัตว์. แหล่งข้อมูล: https://he01.tci-thaijo.org/index.php/fdajournal/article/view/138475/102928. ค้นเมื่อ 18 กันยายน 2563.
Afsharmanesh, M., and B. Sadaghi. 2014. Effects of dietary alternatives (probiotic, green tea powder, and Kombucha tea) as antimicrobial growth promoters on growth, ileal nutrient digestibility, blood parameters, and immune response of broiler chickens. Comparative Clinical Pathology. 23: 717-724.
AOAC. 1999. Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemists. 15th ed. Arlington, VA: Association of Official Analytical Chemists.
AOAC. 2000. Official methods of analysis of AOAC international. Volume 2, 17th ed. AOAC International.
Guo, Y., R. S. Bruno, and M. G. Traber. 2020. Bioavailability of flavonoids: mechanisms, measurement, and implications for nutrition and health. Advances in Nutrition. 11: 398-408.
Filannino, P., G. Cardinali, C. G. Rizzello, S. Buchin, M. De Angelis, M. Gobbetti, and R. Di Cagno. 2014. Metabolic responses of Lactobacillus plantarum strains during fermentation and storage of vegetable and fruit juices. Applied and Environmental Microbiology. 80: 2206-2215.
Hatab, S., R. Athanasio, R. Holley, A. Rodas-Gonzalez, and C. Narvaez-Bravo. 2016. Survival and reduction of shiga toxin-producing Escherichia coli in a fresh cold-pressed juice treated with antimicrobial plant extracts. Journal of Food Science. 81: 1987-1995.
Hayashi, K., M. Kamiya, and T. Hayashi. 1995. Virucidal effects of the steam distillate from Houttuynia cordata and its components on HSV-1, influenza virus and HIV. Planta Medica. 61: 237-241.
Hur, S. J., S. Y. Lee, Y. C. Kim, I. Choi, and G. B. Kim. 2014. Effect of fermentation on the antioxidant activity in plant-based foods. Food Chemistry. 160: 346-356.
Kahn, L. H., G. Bergeron, M. W. Bourassa, B. De Vegt, J. Gill, F. Gomes, and E. Topp. 2019. From farm management to bacteriophage therapy: strategies to reduce antibiotic use in animal agriculture. Annals of the New York Academy of Sciences. 1441: 31-39.
Kwon, E. E., S. Kim, Y. J. Jeon, and H. Yi. 2012. Biodiesel production from sewage sludge: new paradigm for mining energy from municipal hazardous material. Environmental Science and Technology. 46: 10222-10228.
Likhitwitayawuid, K., B. Sritularak, K. Benchanak, V. Lipipun, J. Mathew, and R. F. Schinazi. 2005. Phenolics with antiviral activity from Millettia erythrocalyx and Artocarpus lakoocha. Natural Product Research. 19: 177-182.
Lilly, D. M., and R. H. Stillwell. 1965. Probiotics. Growth promoting factors produced by micro-organisms. Science. 147: 747-748.
Morita, N., K. Hayashi, A. Fujita, and H. Matsui. 1995. Extraction of antiviral substances from Houttuynia cordata Thunb. Chemical Abstracts. 123: article ID 93249.
Mountzouris, K. C., P. Tsitrsikos, I. Palamidi, A. Arvaniti, M. Mohnl, G. Schatzmayr, and K. Fegeros. 2010. Effects of probiotic inclusion levels in broiler nutrition on growth performance, nutrient digestibility, plasma immunoglobulins, and cecal microflora composition. Poultry Science. 89: 58-67.
Pradhan, S., S. Rituparna, H. Dehury, M. Dhall, and Y. D. Singh. 2023. Nutritional profile and pharmacological aspect of Houttuynia cordata Thunb. and their therapeutic applications. Pharmacological Research - Modern Chinese Medicine. 9: article ID 100311.
SAS Institute Inc. 1996. SAS/STAT User’s Guide. Version 6.12. SAS Institute Inc., Cary, North Carolina, USA.
Samchai, S., P. Seephonkai, A. Sangdee, A. Puntumchai, and U. Klinhom. 2009. Antioxidant, cytotoxic and antimalarial activities from crude extracts of mushroom Phellinus linteus. Journal of Biological Sciences. 9: 778-783.
Shori, A. B. 2013. Antioxidant activity and viability of lactic acid bacteria in soybean-yogurt made from cow and camel milk. Journal of Taibah University for Science. 7: 202-208.
Wang, Y., Z. Ren, L. Fu, and X. Su. 2016. Two highly adhesive lactic acid bacteria strains are protective in zebrafish infected with Aeromonas hydrophila by evocation of gut mucosal immunity. Journal of Applied Microbiology. 120: 441-451.
Yao, S., H. Yang, M. Zhang, J. Xian, R. Zhou, Y. Jin, J. Huang, and C. Wu. 2024. Sucrose contributed to the biofilm formation of Tetragenococcus halophilus and changed the biofilm structure. Food Microbiology. 124: article ID 104616.
Zhishen, J., T. Mengcheng, and W. Jianming. 1999. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry. 64: 555-559.
