Effects of different levels of Lactobacillus casei and Houttuynia cordata Thunb. on chemical, physical and antioxidant properties of bio-fermented Houttuynia cordata juice
Main Article Content
Abstract
This study aimed to investigate the effects of different levels of Lactobacillus casei (L. casei) and Houttuynia cordata powder (HCP) on the chemical, physical properties and antioxidant activity of bio-fermented juice. The experiment was arranged in a 4 × 3 factorial in a completely randomized design (CRD). Factor A consisted of four levels of L. casei at 0, 1, 10 and 20% (v/v), and Factor B comprised three levels of HCP at 10, 12.5 and 15% (w/v). The variables analyzed included total bacterial count, total phenolic content, total flavonoid content, quercitrin concentration, antioxidant activity (DPPH IC50 and ABTS IC50), moisture content, pH, total soluble solids, and total acidity. The results demonstrated that both the levels of L. casei and HCP significantly influenced the properties of bio-fermented Houttuynia cordata juice (p<0.05). Notably, the group supplemented with 1% L. casei and 15% HCP showed the highest total bacterial count at 8.667 × 106 CFU/ml, along with a total phenolic content of 22.351 mg/g, total flavonoid content of 13.874 mg/g, and quercitrin content of 904.438 µg/L. In addition, this group exhibited favorable antioxidant activities, with DPPH IC50 and ABTS IC50 values of 398.297 µg/ml and 145.239 µg/ml, respectively. These findings indicate a well-balanced combination of microbial population, bioactive compounds, and antioxidant capacity, highlighting the potential of using 1% L. casei with 15% HCP as an optimal formulation for producing bio-fermented Houttuynia cordata juice with desirable chemical, physical, and biological properties suitable for application in the livestock industry.
Article Details

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
จริยา ชมวารินทร์, กัญญลักษณ์ ชัยคาภา และนเรศ วโรภาสตระกูล. 2541. แบคทีเรียวิทยาพื้นฐาน. ขอนแก่น: โรงพิมพ์คลังนานาวิทยา.
ทศพล พลคำมาก, ธีระ ฤทธิรอด และสิรินดา ยุ่นฉลาด. 2559. การเพิ่มฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของน้ำพลูคาวด้วยการผสมกับกระชายดำและหมักด้วยแบคทีเรียกรดแลคติก. แหล่งข้อมูล: https://ph02.tci-thaijo.org/index.php/gskku/article/view/60981/50228. ค้นเมื่อ 18 กันยายน 2564.
นักสิทธิ์ ปัญโญใหญ่. 2554. ผลของอุณหภูมิอบแห้งต่อฤทธิ์ในการต้านอนุมูลอิสระของสมุนไพรพลูคาว (Houttuynia cordata Thunb.). วารสารวิทยาศาสตร์เกษตร. 42: 556-558.
บัณฑรวรรณ ธุระพระ, จันทนา บุญยะรัตน์, เยาวเรศ ชูลิขิต และสุภาวดี ดาวดี. 2559. การวิเคราะห์ปริมาณสารสำคัญและฤทธิ์ต้านออกซิเดชันในส้มโอ. วารสารเภสัชศาสตร์อีสาน. 11: 80-91.
ภัททิรา ประสาทแก้ว. 2561. ผลของการเสริมใบพลูคาวต่อภูมิต้านทานโรค การให้ผลผลิต และคุณภาพไข่ของไก่ไข่. วารสารวิทยาศาสตร์เกษตร. 49: 115-118.
สถาบันวิจัยสมุนไพร. 2546. สมุนไพรน่ารู้: ผักคาวตอง Houttuynia cordata Thunb. กรุงเทพฯ: สถาบันวิจัยสมุนไพร กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข.
วีระกิจ หิรัญวิวัฒน์กุล. 2561. โพรไบโอติกส์. แหล่งข้อมูล: https://www.nonthavej.co.th/Probiotics.php. ค้นเมื่อ 16 กันยายน 2566.
ใจพร พุ่มคำ. 2555. อาหาร (ไม่) ปลอดภัย ผลจากการใช้ยาปฏิชีวนะในสัตว์. แหล่งข้อมูล: https://he01.tci-thaijo.org/index.php/fdajournal/article/view/138475/102928. ค้นเมื่อ 18 กันยายน 2563.
Afsharmanesh, M., and B. Sadaghi. 2014. Effects of dietary alternatives (probiotic, green tea powder, and Kombucha tea) as antimicrobial growth promoters on growth, ileal nutrient digestibility, blood parameters, and immune response of broiler chickens. Comparative Clinical Pathology. 23: 717-724.
AOAC. 1999. Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemists. 15th ed. Arlington, VA: Association of Official Analytical Chemists.
AOAC. 2000. Official methods of analysis of AOAC international. Volume 2, 17th ed. AOAC International.
Guo, Y., R. S. Bruno, and M. G. Traber. 2020. Bioavailability of flavonoids: mechanisms, measurement, and implications for nutrition and health. Advances in Nutrition. 11: 398-408.
Filannino, P., G. Cardinali, C. G. Rizzello, S. Buchin, M. De Angelis, M. Gobbetti, and R. Di Cagno. 2014. Metabolic responses of Lactobacillus plantarum strains during fermentation and storage of vegetable and fruit juices. Applied and Environmental Microbiology. 80: 2206-2215.
Hatab, S., R. Athanasio, R. Holley, A. Rodas-Gonzalez, and C. Narvaez-Bravo. 2016. Survival and reduction of shiga toxin-producing Escherichia coli in a fresh cold-pressed juice treated with antimicrobial plant extracts. Journal of Food Science. 81: 1987-1995.
Hayashi, K., M. Kamiya, and T. Hayashi. 1995. Virucidal effects of the steam distillate from Houttuynia cordata and its components on HSV-1, influenza virus and HIV. Planta Medica. 61: 237-241.
Hur, S. J., S. Y. Lee, Y. C. Kim, I. Choi, and G. B. Kim. 2014. Effect of fermentation on the antioxidant activity in plant-based foods. Food Chemistry. 160: 346-356.
Kahn, L. H., G. Bergeron, M. W. Bourassa, B. De Vegt, J. Gill, F. Gomes, and E. Topp. 2019. From farm management to bacteriophage therapy: strategies to reduce antibiotic use in animal agriculture. Annals of the New York Academy of Sciences. 1441: 31-39.
Kwon, E. E., S. Kim, Y. J. Jeon, and H. Yi. 2012. Biodiesel production from sewage sludge: new paradigm for mining energy from municipal hazardous material. Environmental Science and Technology. 46: 10222-10228.
Likhitwitayawuid, K., B. Sritularak, K. Benchanak, V. Lipipun, J. Mathew, and R. F. Schinazi. 2005. Phenolics with antiviral activity from Millettia erythrocalyx and Artocarpus lakoocha. Natural Product Research. 19: 177-182.
Lilly, D. M., and R. H. Stillwell. 1965. Probiotics. Growth promoting factors produced by micro-organisms. Science. 147: 747-748.
Morita, N., K. Hayashi, A. Fujita, and H. Matsui. 1995. Extraction of antiviral substances from Houttuynia cordata Thunb. Chemical Abstracts. 123: article ID 93249.
Mountzouris, K. C., P. Tsitrsikos, I. Palamidi, A. Arvaniti, M. Mohnl, G. Schatzmayr, and K. Fegeros. 2010. Effects of probiotic inclusion levels in broiler nutrition on growth performance, nutrient digestibility, plasma immunoglobulins, and cecal microflora composition. Poultry Science. 89: 58-67.
Pradhan, S., S. Rituparna, H. Dehury, M. Dhall, and Y. D. Singh. 2023. Nutritional profile and pharmacological aspect of Houttuynia cordata Thunb. and their therapeutic applications. Pharmacological Research - Modern Chinese Medicine. 9: article ID 100311.
SAS Institute Inc. 1996. SAS/STAT User’s Guide. Version 6.12. SAS Institute Inc., Cary, North Carolina, USA.
Samchai, S., P. Seephonkai, A. Sangdee, A. Puntumchai, and U. Klinhom. 2009. Antioxidant, cytotoxic and antimalarial activities from crude extracts of mushroom Phellinus linteus. Journal of Biological Sciences. 9: 778-783.
Shori, A. B. 2013. Antioxidant activity and viability of lactic acid bacteria in soybean-yogurt made from cow and camel milk. Journal of Taibah University for Science. 7: 202-208.
Wang, Y., Z. Ren, L. Fu, and X. Su. 2016. Two highly adhesive lactic acid bacteria strains are protective in zebrafish infected with Aeromonas hydrophila by evocation of gut mucosal immunity. Journal of Applied Microbiology. 120: 441-451.
Yao, S., H. Yang, M. Zhang, J. Xian, R. Zhou, Y. Jin, J. Huang, and C. Wu. 2024. Sucrose contributed to the biofilm formation of Tetragenococcus halophilus and changed the biofilm structure. Food Microbiology. 124: article ID 104616.
Zhishen, J., T. Mengcheng, and W. Jianming. 1999. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chemistry. 64: 555-559.