การตรวจพิสูจน์และยืนยันการอาศัยอยู่ของเชื้อเห็ดเอคโตไมคอร์ไรซาบริเวณรากพืชอาศัย และเปอร์เซ็นต์การเกิดรากเอคโตไมคอร์ไรซา หลังใส่เชื้อและออกปลูกในสภาพแปลงธรรมชาติ

Main Article Content

ธนภักษ์ อินยอด
ธนากร ลัทธิ์ถีระสุวรรณ
ขนิษฐา ชวนะนรเศรษฐ์
ธนภัทร เติมอารมย์
ชาตรี กอนี
ณัฐพัชร์ ศรีหะนัลต
ปิยะดา เอี่ยมประสงค์

บทคัดย่อ

การศึกษานี้ตรวจสอบการอาศัยอยู่ของเห็ดเอคโตไมคอร์ไรซาบริเวณรากพืชอาศัยและวัดเปอร์เซ็นต์การเกิดรากเอคโตไมคอร์ไรซาหลังการใส่เชื้อและปลูกในสภาพแปลงธรรมชาติพื้นที่แปลงธรรมชาติ โดยทดลองกับเห็ดตับเต่า (Phlebopus portentosus) เห็ดเผาะ (Astraeus odoratus) และเห็ดระโงกเหลือง (Amanita hemibapha) ใส่เชื้อปริมาตร 25 มิลลิลิตรต่อต้น หลังปลูกเป็นเวลา 1 ปี พบว่ารากพืชที่ได้รับการใส่เชื้อเห็ดตับเต่าและเห็ดเผาะมีการสร้างเอคโตไมคอร์ไรซาโดยมีเส้นใยเกาะที่ผิวรากและมีเปอร์เซ็นต์การเกิดรากเอคโตไมคอร์ไรซาเฉลี่ยระหว่าง 66.24% และ 63.79% และ 50.40-63.86% ตามลำดับ สำหรับเห็ดระโงกเหลืองที่ปลูกเป็นเวลา 6 เดือน มีเปอร์เซ็นต์การเกิดรากเอคโตไมคอร์ไรซาเฉลี่ย 31.60-39.24% ซึ่งสูงกว่าต้นควบคุมอย่างมีนัยสำคัญ การตรวจสอบการมีอยู่ของ DNA เห็ดเผาะ เห็ดตับเต่า และเห็ดระโงกเหลืองในรากพืชอาศัยโดยวิธีพีซีอาร์ (Polymerase Chain Reaction) ด้วยชุดไพรเมอร์ที่มีความจำเพาะต่อเห็ดทั้ง 3 ชนิด ซึ่งพบแถบ DNA ที่สามารถยืนยันพิสูจน์ได้ว่าในรากพืชอาศัยมีเชื้อเห็ดไมคอร์ไรซาทั้ง 3 ชนิดนี้อยู่ในรากพืชจริง การทดลองนี้แสดงให้เห็นว่าการใช้วิธีการทางชีวโมเลกุล สามารถยืนยันชนิดของเห็ดไมคอร์ไรซาได้อย่างแม่นยำ และเหมาะสมสำหรับระบุชนิดของตัวอย่างที่ไม่สามารถจำแนกด้วยการใช้ลักษณะทางสัณฐานวิทยาได้

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
อินยอด ธ. ., ลัทธิ์ถีระสุวรรณ ธ. ., ชวนะนรเศรษฐ์ ข. ., เติมอารมย์ ธ. ., กอนี ช., ศรีหะนัลต ณ. ., & เอี่ยมประสงค์ ป. . (2026). การตรวจพิสูจน์และยืนยันการอาศัยอยู่ของเชื้อเห็ดเอคโตไมคอร์ไรซาบริเวณรากพืชอาศัย และเปอร์เซ็นต์การเกิดรากเอคโตไมคอร์ไรซา หลังใส่เชื้อและออกปลูกในสภาพแปลงธรรมชาติ. วารสารแก่นเกษตร, 54(2), 430–445. สืบค้น จาก https://li01.tci-thaijo.org/index.php/agkasetkaj/article/view/268460
ประเภทบทความ
บทความวิจัย (research article)

เอกสารอ้างอิง

ธนภักษ์ อินยอด, ธนากร ลัทธิ์ถีระสุวรรณ, ขนิษฐา ชวนะนรเศรษฐ์, ธนภัทร เติมอารมณ์, ชาตรี กอนี, สุริมา ญาติโสม, สุจิตรา บัวลอย และปิยะดา เอี่ยมประสงค์. 2564. การศึกษาสภาวะที่เหมาะสมต่อการเจริญของเส้นใยเห็ดเอคโตไมคอร์ไรซาบางชนิดในสภาพปลอดเชื้อ. วารสารเกษตรนเรศวร. 18: 1-13.

ธนภักษ์ อินยอด, ขนิษฐา ชวนะนรเศรษฐ์, ธนภัทร เติมอารมณ์, ธนากร ลัทธิ์ถีระสุวรรณ, อลิษา อินจันทร์, ณัฐพัชร์ ศรีหะนัลต, จุฬามณี พละสุข และชาตรี กอนี. 2568. การออกแบบไพรเมอร์เพื่อใช้เพิ่มปริมาณดีเอ็นเอบริเวณ Internal transcribed spacer ที่มีความจำเพาะต่อเห็ดตับเต่า (Phlebopus portentosus (Berk. and Broome) Boedijn). วารสารวิชชา มหาวิทยาลัยราชภัฏนครศรีธรรมราช. 44: 91-108.

ธนิตา อาสว่าง, อุไรวรรณ วิจารณกุล, รุ้งเพชร แข็งแรง, ณัฎฐิกา สุวรรณาศรัย และเชิดชัย โพธิ์ศรี. 2558. เอคโตไมคอร์ไรซาของเห็ดเผาะสิรินธรในกล้าไม้ยางนา. ใน: การประชุมวิชาการและนำเสนอผลงานวิชาการเครือข่ายงานวิจัยนิเวศวิทยาป่าไม้แห่งประเทศไทย ครั้งที่ 4. คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยนเรศวร, พิษณุโลก.

ปิยวรรณ กลมเกลี้ยง, ธีระชัย ธนานันต์ และนิรมล ศากยวงศ์. 2557. การจำแนกราด้วยวิธีไอทีเอสพีซีอาร์และความสามารถในการบำบัดสีรีแอคทีฟ RR141. วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี. 22: 684-694.

วิกานดา พรหมณี. 2560. การศึกษาดีเอ็นเอบาร์โค้ดของพืชสกุลมะเขือในประเทศไทย. วิทยานิพนธ์วิทยาศาสตรมหาบัณฑิต มหาวิทยาลัยศิลปากร, นครปฐม.

วิพรพรรณ์ เนื่องเม็ก และมนัส ทิตย์วรรณ. 2563. วัสดุผลิตหัวเชื้อเห็ดเผาะและผลต่อการเจริญเติบโตของพืชอาศัย. วารสารแก่นเกษตร. 48: 1173-1180.

สุพัตรา เจริญภักดี บดีรัฐ. 2561. นิเวศวิทยาของเห็ดเผาะในพื้นที่มหาวิทยาลัยราชภัฏพิบูลสงคราม จังหวัดพิษณุโลก. วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี มหาวิทยาลัยอุบลราชธานี. 20: 124-133.

อุทัยวรรณ แสงวณิช. 2547. ศักยภาพของเห็ดป่าในการเพิ่มรายได้ของเกษตรกรในระบบวนเกษตร. ใน: เอกสารประกอบการบรรยายในการประชุมวิชาการวนเกษตร ครั้งที่ 1 “มิติของระบบวนเกษตร สำหรับชุมชนอนาคต” วันที่ 1-3 กรกฎาคม 2547. พิษณุโลก.

Adams, R. I., H. E. Hallen, and A. Pringle. 2005. Using the incomplete genome of the ectomycorrhizal fungus Amanita bisporigera to identify molecular polymorphisms in the related Amanita phalloides. Molecular Ecology Notes. 6: 218-220.

Appiah, T., C. Agyare, and Y. Luo. 2017. Molecular identification of some Ghanaian mushrooms using internal transcribed spacer regions. Molecular Biology. 6: 1-5.

Blackwell, M. 2011. The fungi: 1, 2, 3 ... 5.1 million species?. American Journal of Botany. 98: 426-438.

Brundrett, M. C., and L. Tedersoo. 2018. Evolutionary history of mycorrhizal symbioses and global host plant diversity. New Phytologist. 220: 1108-1115.

Cullings, K. W. 1992. Design and testing of a plant-specific PCR primer for ecological and evolutionary studies. Molecular Ecology. 1: 233–240.

Doyle, J. J., and E. E. Dickson. 1987. Preservation of plant samples for DNA restriction endonuclease analysis. Taxon. 36: 715-722.

Lafontaine, D. L. J., and D. Tollervey. 2001. The function and synthesis of ribosomes. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2: 514-520.

Mora, C., D. P. Tittensor, S. Adl, A. G. B. Simpson, and B. Worm. 2011. How many species are there on Earth and in the Ocean. Biology. 9: 1-8.

Nuangmek, W., R. Saenmuangma, and M. Titayavan. 2016. Ecology and distribution of earthstars in plant genetic conservation project under the royal initiative of her royal highness princess Maha Chakri Sirindhorn at University of Phayao. Khon Kaen Agriculture Journal. 40: 960-964.

Peng Li, Z., C. C. Shen, S. F. Xu, F. W. Wang, Q. G. Zhang, and Z. W. Zhao. 2014. Development of a specific PCR for the identification of arbuscular mycorrhizal fungi in roots. Mycosystema. 33: 1106-1116.

Peterson, R. L., H. B. Massicotte, and L. H. Melville. 2004. Mycorrhizas: Anatomy and cell biology. Mycologist. 19: 133.

Phillips, J. M., and D. S. Hayman. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society. 55: 158-161.

Sanmee, R., B. Dell, P. Lumyong, K. Izumori, and S. Lumyong. 2010. Nutritive value of popular wild edible mushrooms from northern Thailand. Food Chemistry. 122: 479-487.

Suwannasai, N., P. Dokmai, A. Yamada, R. Watling, and C. Phosri. 2020. First ectomycorrhizal syntheses between Astraeus sirindhorniae and Dipterocarpus alatus (Dipterocarpaceae), pure culture characteristics, and molecular detection. Biodiversitas. 21: 231-238.

Ye, J., G. Coulouris, I. Zaretskaya, I. Cutcutache, S. Rozen, and T. L. Madden. 2012. Primer-BLAST: A tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction. BMC Bioinformatics. 13: doi: https://doi.org/10.1186/1471-2105-13-134.

Yorou, N. S., A. Koné, M. Guissou, N. Guelly, D. Maba, M. Ekué, and A. De Kesel. 2014. Biodiversity and sustainable use of wild Edible fungi in the Sudanian centre of endemism: A Plea for Valorisation. In: Ectomycorrhizal Symbioses in Tropical and Neotropical Forests. CRC Press, New York.