ผลของการเสริมสารสกัดกัญชงในน้ำยาเจือจางน้ำเชื้อต่อคุณภาพน้ำเชื้อสุกรที่อุณหภูมิเย็น
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ปัญหาหลักของกระบวนการผสมเทียมในฟาร์มเกษตรกรรายย่อยในประเทศไทยคือ การเก็บรักษาน้ำเชื้อสุกรแช่เย็น ซึ่งเกิดจาก oxidative stress ทำให้ลดคุณภาพน้ำเชื้อหลังการเก็บรักษา ดังนั้น ผู้วิจัยจึงทำการศึกษาเสริมสารสกัดกัญชงที่ประกอบด้วยสารกลุ่มแคนนาบินอยด์มีคุณสมบัติเป็น antioxidants ในน้ำยาเจือจางน้ำเชื้อสุกรแช่เย็น โดยทำการรีดน้ำเชื้อสุกรพ่อพันธุ์ดูร็อคเจอร์ซี จำนวน 2 ตัว มาเจือจางด้วยน้ำยาเจือจางน้ำเชื้อสูตรมาตรฐาน (Beltsville thawing solution extender; BTS) ที่เสริมสารสกัดกัญชงโดยคำนวณจากระดับความเข้มข้นของสาร cannabidiol (CBD)ที่เหมาะสม 5 ระดับได้แก่ 0, 5, 10, 25 และ 50 µg CBD/ml จากนั้นนำตัวอย่างน้ำเชื้อมาเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 17 °C เป็นระยะเวลา 0, 12, 24, 48, และ 72 ชั่วโมง ศึกษาวิเคราะห์ร้อยละการเคลื่อนที่ของอสุจิ (motile) ร้อยละการตายของอสุจิ (static) ร้อยละของอสุจิที่เคลื่อนที่ไปข้างหน้า (progressive) ด้วย computer assisted sperm analysis; CASA พบว่า ร้อยละการตายของอสุจิในกลุ่มที่เสริมสารสกัดกัญชงที่ความเข้มข้น 5 µg CBD/ml มีแนวโน้มต่ำที่สุด และร้อยละของอสุจิที่เคลื่อนที่ไปข้างหน้าในกลุ่มที่เสริมสารสกัดกัญชงที่ความเข้มข้น 5 µg/ml มีแนวโน้มสูงที่สุด โดยเฉพาะค่าวิเคราะห์หลังการเก็บรักษาที่ 12 ชั่วโมง อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P < 0.05) โดยสารสกัดกัญชงเป็นสารต้านอนุมูลอิสระลดความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชั่นในน้ำเชื้อสามารถปรับปรุงคุณภาพน้ำเชื้อสุกรแช่เย็นได้
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
Abdellatif, M.A., S.A. Gabr, M.A. El-Sherbieny and A.I.A. Yousif. 2022. Effect of aqueous and methanolic green tea extracts on motility, normal forms, and kinetic parameters of spermatozoa in Rahmani ram semen equilibrated at 5 °C for 4 hours. Journal of Animal and Poultry Production 13(5): 63-70.
Alagbonsi, A.I., L.A. Olayaki, H.A. Abdulrahim, T.S. Adetona and G.T. Akinyemi. 2019. Cannabinoid-deficient Benin republic hemp (Cannabis sativa L.) improves semen parameters by reducing prolactin and enhancing anti-oxidant status. BMC Complementary and Alternative Medicine 19(1): 132, doi: 10.1186/s12906-019-2541-5.
Amann, R.P. and D. Waberski. 2014. Computer-assisted sperm analysis (CASA): Capabilities and potential developments. Theriogenology 81(1): 5-17.
Bansal, A.K. and G.S. Bilaspuri. 2011. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Veterinary Medicine International 2011: 686137, doi: 10.4061/2011/686137.
Caiza de la Cueva, F.I., T. Rigau, R. Pujol, J. Piedrafita and J.E. Rodríguez-Gil. 1997a. Resistance to hyperosmotic stress in boar spermatozoa: The role of the ionic pumps and the relationship with cryosurvival. Animal Reproduction Science 48(2-4): 301-315.
Caiza de la Cueva, F.I., M.R. Pujol, T. Rigau, S. Bonet, J. Miró, M. Briz and J.E. Rodríguez-Gil. 1997b. Resistance to osmotic stress of horse spermatozoa: The role of ionic pumps and their relationship to cryopreservation success. Theriogenology 48(6): 947-968.
Chasiotis, V.K., D.A. Tzempelikos and A.E. Filios. 2021. Assessment of constant and time-varying temperature schemes on the convective drying characteristics of hemp leaves. Case Studies in Thermal Engineering 26, doi.10.1016/j.csite.2021.101098.
Chomchai, S. 1999. Manual for Artificial Insemination in Pigs. 3rd ed. National Swine Research and Training Center, Kasetsart University, Nakhon Pathom. 294 p. (in Thai)
Einarsson, S., B. Crabo and L. Ekman. 1970. A comparative study on the chemical composition of plasma from the cauda epididymidis, semen fractions, and whole semen in boars. Acta Veterinaria Scandinavica 11(2): 156-180.
Gadea Joaquin. 2003. Semen extenders used in the artificial insemination of swine. Spanish Journal of Agricultural Research 1(2): 17-27.
Jaidee, T. and P. Sootanan. 2022. A survey on molecular biological processes of cannabinoids by functional module-based network analysis. Burapha Science Journal 27(1): 274-299. (in Thai)
King, G.J. and J.W. Macpherson. 1966. Alkaline and acid phosphatase activity, pH and osmotic pressure of boar semen. Canadian Journal of Comparative Medicine and Veterinary Science 30(11): 304-307.
Lopez Rodriguez, A., A.V. Soom, L. Arsenakis and D. Maes, 2017. Boar management and semen handling factors affect the quality of boar extended semen. Porcine Health Mana-gement 3(15): 1-12.
Manosroi A.,C. Chankhampan, B.Kietthanakorn, W. Ruksiriwanich, P. Chaikul, K. Boonpisuttinant, M. Sainakham, W. Manosroi, T. Tangjai and J. Manosroi. 2019. Pharmaceutical and Cosmeceutical Biological Activities of Hemp (Cannabis sativa L var. sativa) Leaf and Seed Extracts. Chiang Mai Journal of Science 46(2): 180-195.
Padrik, P., T. Hallap, T. Kaart, T. Bulitko and Ü. Jaakma. 2012. Relationships between the results of hypo-osmotic swelling tests, sperm motility, and fertility in Estonian Holstein dairy bulls. Czech Journal of Animal Science 57(10): 490-497.
Painupong, A. 2017. Free radicals and anti-oxidants in humen. PKRU SciTech Journal 1(2): 20-27. (in Thai)
Park, Y.S., S.H. Lee, H.W. Choi, H.S. Lee, J.S. Lee and J.T. Seo. 2018. Abnormal human sperm parameters contribute to sperm DNA fragmentation in men with varicocele. The World Journal of Men's Health 36(3): 239-247.
Payne, K.S., D.J. Mazur, J.M. Hotaling and A.W. Pastuszak. 2019. Cannabis and male fertility: A systematic review. The Journal of Urology 202(4): 674-681.
Perez-Llano, B., J.L. Lorenzo, P. Yenes, A. Trejo and P. Garcia-Casado. 2001. A short hypoosmotic swelling test for the prediction of boar sperm fertility. Theriogenology 56(3): 387-398.
Pintus, E., M. Kadlec, M. Jovičić, M. Sedmíková and J.L. Ros-Santaella. 2018. Aminoguanidine protects boar spermatozoa against the deleterious effects of oxidative stress. Pharmaceutics 10(4): 212, doi: 10.3390/pharmaceutics10040212.
Prochowska, S., W. Nizanski and A. Fontbonne. 2022. Hypo-osmotic swelling test (HOST) for feline spermatozoa: The simplified procedure and the aspect of sperm morphology. Animals 12(7): 903, doi: 10.3390/ani12070903.
Rodríguez-Gil, J.E. and T. Rigau. 1996. Effects of ouabain on the response to osmotic changes in dog and boar spermatozoa. Theriogenology 45(4): 873-888.
Ros-Santaella, J.L. and E. Pintus. 2021. Plant extracts as alternative additives for sperm preservation. Antioxidants 10(5): 772, doi: 10.3390/antiox10050772.
Schanknecht, E., A. Bachari, N. Nassar, T. Piva and N. Mantri. 2023. Phytochemical constituents and derivatives of Cannabis sativa; bridging the gap in melanoma treatment. International Journal of Molecular Sciences 24(1): 859, doi: 10.3390/ijms24010859.
Shepherd, M.J., A.M. Minton, C. Schwab and L.A. Herickhoff. 2022. Effects of boar sperm antioxidant supplementation on fertility. Animal Reproduction Science 237: 106923, doi: 10.1016/j.anireprosci.2022.106923.
Sonseeda, P., T. Vongphalup and J. Phongpeng. 2011. Effect of solid on subsequent quality of boar semen. KKU Veterinary Journal 21(2): 164-171. (in Thai)
Taoufik, B., S. Hamid, E.B. Aziz, F. Abdellah, S. Seddik, E. Yassine, F. Mouhcine, C. Zoubida and T. Mohamed. 2017. Comparative study of three varieties of Cannabis sativa L. cultivate in different region of Morocco. International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research 9(5): 643-653.
Tassaneesuwan, N., C. Thammarat and P. Khongkow. 2023. Safety and potential effects of cannabidiol on skin cells. Journal of Health Science and Medical Research 41(3): 2023919, doi: 10.31584/jhsmr.2023919.
Thun, R., M. Hurtado and F. Janett. 2002. Comparison of Biociphos-Plus® and TRIS-egg yolk extender for cryopreservation of bull semen. Theriogenology 57(3): 1087-1094.
Vitorovic, J., N. Jokovic, N. Radulovic, T. Mihajilov-Krstev, V.J. Cvetkovic, N. Jovanovic, T. Mitrovic, A. Aleksic and N. Bernstein. 2021. Antioxidant activity of hemp (Cannabis sativa L.) seed oil in Drosophila melanogaster larvae under non-stress and H2O2-Induced Oxidative Stress Conditions. Antioxidants 10(6): 830, doi: 10.3390/antiox10060830.
Vyt, P., D. Maes, E. Dejonckheere, F. Castryck and A. Van Soom. 2004. Comparative study on five different commercial extenders for boar semen. Reproduction in Domestic Animals 39(1): 8-12.
Wiebke, M., B .Hensel, E. Nitsche-Melkus, M. Jung and M. Schulze. 2022. Cooled storage of semen from livestock animals (part I): Boar, bull, and stallion. Animal Reproduction Science 246: doi: 10.1016/j.anireprosci106822.
Yeste, M., M. Briz, E. Pinart, S. Sancho, E. Bussalleu and S. Bonet. 2010. The osmotic tolerance of boar spermatozoa and its usefulness as sperm quality parameter. Animal Reproduction Science 119(3-4): 265-274.