Effect of 5-aminolevulinic Acid on Growth Performance and Immune Responses in Hybrid Striped Catfish (Pangasianodon gigas × Pangasianodon hypopthalmus) ผลของกรด 5-อะมิโนลีวูลินิกต่อการเจริญเติบโตและการตอบสนองของภูมิคุ้มกันในปลาสวายปรับปรุงสายพันธุ์ (Pangasianodon gigas × Pangasianodon hypopthalmus)
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาผลของกรด 5-อะมิโนลีวูลินิก (5-aminolevulinic acid; ALA) ที่ผลิตจากแบคทีเรีย Rhodopseudomonas palustris JP225 ต่อการเจริญเติบโตและการตอบสนองของภูมิคุ้มกันในปลาสวายปรับปรุงสายพันธุ์ (Pangasianodon gigas × P. hypophthalmus) โดยเลี้ยงปลาที่มีน้ำหนักตั้งต้นเฉลี่ย 7.71-7.78 กรัม ด้วยอาหารทดลองเสริมด้วย ALA ที่ระดับความเข้มข้น 0 (ชุดควบคุม) 2.5 5.0 7.5 และ 10.0 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม พบว่าในระยะเวลา 4 สัปดาห์ ปลาที่เลี้ยงด้วยอาหารเสริม ALA ที่ระดับความเข้มข้น 2.5 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม มีน้ำหนักสุดท้าย น้ำหนักที่เพิ่มขึ้น อัตราการเจริญเติบโตจำเพาะสูงที่สุด และมีอัตราการเปลี่ยนอาหารเป็นเนื้อดีที่สุดอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับปลาที่เลี้ยงด้วยอาหารสูตรอื่น ๆ นอกจากนี้ยังพบว่าการเสริม ALA ที่ระดับความเข้มข้น 2.5 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม สามารถเพิ่มปริมาณเม็ดเลือดแดง เม็ดเลือดขาว ฮีโมโกลบินรวม ฮีมาโตคริต กิจกรรมการจับกินสิ่งแปลกปลอม ดัชนีการจับกินสิ่งแปลกปลอม และค่าเฉลี่ยเม็ดบีทที่ถูกเม็ดเลือดขาวจับกินให้มีค่าสูงที่สุด และมีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับปลาที่เลี้ยงด้วยอาหารควบคุม เมื่อเลี้ยงปลาเป็นระยะเวลา 8 สัปดาห์ พบว่าการเจริญเติบโตของปลาที่ได้รับอาหารผสม ALA ทุกระดับความเข้มข้นไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p > 0.05) นอกจากนี้ยังพบว่าปลาที่ได้รับอาหารผสม ALA ที่ระดับความเข้มข้น 10 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม มีการตอบสนองของภูมิคุ้มกัน ได้แก่ ฮีโมโกลบินรวม ฮีมาโตคริต และโปรตีนในซีรั่มลดลง แต่มีค่าเฉลี่ยกิจกรรม respiratory burst และดัชนีการจับกินสิ่งแปลกปลอมสูงที่สุด และมีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) เมื่อเปรียบเทียบกับปลาที่เลี้ยงด้วยอาหารควบคุม งานวิจัยนี้แสดงให้เห็นว่าการเสริม ALA ที่ผลิตจากแบคทีเรีย R. palustris JP225 ที่ระดับความเข้มข้น 2.5 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม ในอาหารปลาเป็นระยะเวลา 4 สัปดาห์ สามารถส่งเสริมการเจริญเติบโตและภูมิคุ้มกันในปลาสวายปรับปรุงสายพันธุ์ได้
Article Details
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ในวารสารวิชชา มหาวิทยาลัยราชภัฏนครศรีธรรมราช ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรง ซึ่งกองบรรณาธิการวารสารไม่จำเป็นต้องเห็นด้วยหรือร่วมรับผิดชอบใด ๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา รูปภาพ ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ในวารสารวิชชา มหาวิทยาลัยราชภัฏนครศรีธรรมราช ถือเป็นลิขสิทธ์ของวารสารวิชชา มหาวิทยาลัยราชภัฏนครศรีธรรมราช หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำข้อมูลทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อการกระทำการใด ๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักษณ์อักษรจากวารสารวิชชา มหาวิทยาลัยราชภัฏนครศรีธรรมราชก่อนเท่านั้น
The content and information in the article published in Wichcha journal Nakhon Si Thammarat Rajabhat University, It is the opinion and responsibility of the author of the article. The editorial journals do not need to agree. Or share any responsibility.
References
เกรียงศักดิ์ เม่งอำพัน ดวงพร อมรเลิศพิศาล สุดาพร ตงศิริ และอุดมลักษณ์ สมพงศ์. (2554). ระบบการเลี้ยงปลาบึกและปลาหนังลูกผสมที่มีประสิทธิภาพ. รายงานผลงานวิจัย. สำนักวิจัยและส่งเสริมวิชาการการเกษตร และสำนักงานคณะกรรมการวิจัยแห่งชาติ.
เกรียงศักดิ์ เม่งอำพัน จิตรลดา สอนตะโก และดวงพร อมรเลิศไพศาล. (2555). ผลของสาหร่ายสไปรูลินาต่อการเจริญเติบโตและการเจริญพันธุ์ของพ่อแม่พันธุ์ของปลาหนังกลุ่ม Pangasius และการอนุบาลปลาหนัง 4 สายพันธุ์ในกระชัง. วารสารเทคโนโลยีการประมง, 5(2), 12-26.
วิศรุต ช่อเส้ง นัทท์ นันทพงศ์ และวุฒิพร พรหมขุนทอง. (2562). การแทนที่ปลาป่นด้วยแหล่งโปรตีนจากพืชในอาหารปลาสวายลูกผสม. แก่นเกษตร, 47(2), 281-292.
อมรรัตน์ ตั้งประสิทธิภาพ. (2549). การผลิตกรด 5-อะมิโนลีวูลินิกภายในเซลล์จาก Rhodobacter sphaeroides SH5 และผลต่อการเจริญเติบโตและกลไกการป้องกันตนเองของกุ้งกุลาดำ(Penaeus monodon). วิทยานิพนธ์ปรัชญาดุษฎีบัณฑิต. มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์, สงขลา.
Chen, Y.J., Kim, I.H., Cho, J.H., Min, B.J., Yoo, J.S. and Wang, Q. (2008). Effect of δ-aminolevulinic acid on growth performance, nutrient digestibility, blood parameters and the immune response of weanling pigs challenged with Escherichia coli lipopolysaccharide. Livestock Science, 114(1), 108-116.
Chung, S. and Secombes, C.J. (1988). Analysis of events occurring within teleost macrophages during the respiratory burst. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry, 89(3), 539-544.
Immenschuh, S., Baumgart-Vogt, E., Tan, M., Iwahara, S., Ramadori, G. and Fahimi, H.D. (2003). Differential cellular and subcellular localization of heme-binding protein 23/peroxiredoxin I and heme oxygenase-1 in rat liver. Journal of Histochemistry and Cytochemistry, 51(12), 1621-1631.
Ito, H., Nishio, Y., Hara, T., Sugihara, H., Tanaka, T. and Li, X.K. (2018). Oral administration of 5-aminolevulinic acid induces heme oxygenase-1 expression in peripheral blood mononuclear cells of healthy human subjects in combination with ferrous ion. European Journal of Pharmacology, 833, 25-33.
Kiatpapan, P., Phonghatsabun, M., Yamashita, M., Murooka, Y. and Panbangred, W. (2011). Production of 5-aminolevulinic acid by Propionibacterium acidipropionici TISTR 442. Journal of Bioscience and Bioengineering, 111(4), 425-428.
Klein, O., Dornemann, D. and Senger, H. (1980). Two biosynthetic pathways to 5-aminolevulinic acid in algae. International Journal of Biochemistry, 12(5-6), 725-728.
Liu, S., Zhang, G., Li, J., Li, X. and Zhang, J. (2016). Optimization of biomass and 5-aminolevulinic acid production by Rhodobacter sphaeroides ATCC17023 via response surface methodology. Applied Biochemistry and Biotechnology, 179(3), 444-458.
Mateo, R.D., Morrow, J.L., Dailey, J.W., Ji, F. and Kim, S.W. (2006). Use of δ-aminolevulinic acid in swine diet: Effect on growth performance, behavioral characteristics and hematological/immune status in nursery pigs. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 19(1), 97-101.
Mauzerall, D. and Granick, S. (1956). The occurrence and determination of δ-aminolevulinic acid and porphobilinogen in urine. Journal of Biological Chemistry, 219(1), 435-446.
Rengpipat, S., Rukpratanporn, S., Piyatiratitivorakul, S. and Menasaveta, P. (2000). Immunity enhancement in black tiger shrimp (Penaeus monodon) by a probiont bacterium (Bacillus S11). Aquaculture, 191(4), 271-288.
Ryter, S.W., Alam, J. and Choi, M.K. (2006). Heme oxygenase-1/carbon monoxide: from basic science to therapeutic applications. Physiological Review, 86(2), 583-650.
Saikeur, A., Choorit, W., Prasertsan, P., Kantachote, D. and Sasaki, K. (2009). Influence of precursors and inhibitor on the production of extracellular 5-aminolevulinic acid: and biomass by Rhodopseudomonas palustris KG31. Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 73(5), 987-992.
Sasaki, K., Watanbe, K., Tanaka, T., Hotta, Y. and Nagai, S. (1995). 5-aminolevulinic acid production by Chlorella sp. during heterotrophic cultivation in the dark. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 11(3), 361-362.
Sato,K., Matsushita, K., Aoki, M., Fuziwara, J., Miyanari, S. and Kamada, T. (2012). Dietary supplementation with 5-aminolevulinic acid modulates growth performance and inflammatory response in broiler chickens. Poultry Science, 91(7), 1582-1589.
Spurlock, M.E. (1997). Regulation of metabolism and growth during immune challenge: an overview of cytokine function. Journal of Animal Science, 75(7), 1773-1783.
Suwannasang, A., Dangwetngam, M., Issaro, A., Phromkunthong and Suanyuk, N. (2014). Pathological manifestations and immune responses of serotypes Ia and III Streptococcus agalactiae and infections in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Songklanakarin Journal of Science and Technology, 36(5), 499-506.
Tanaka, T., Takahashi, K., Hotta, T., Takeuchi, Y. and Konnai, M. (1992). Promotive effect 5-aminolevulinic on yield of several crops. In Proceeddings of the 19th annual meeting of plant growth regulator Society of America, San Francisco (pp. 237-241). Plant Growth Regulator Society of America. Washington DC.
Thuvander, A., Norrgren, L. and Fossum, C. (1987). Phagocytic cells in blood from rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) characterized by flow cytometry and electronmicroscopy. Journal of Fish Biology, 31(2), 197-208.
Wang, J.P., Jung, J.H. and Kim, I.H. (2011). Effects of dietary supplementation with delta-aminolevulinic acid on growth performance, hematological status, and immune responses of weanling pigs. Journal Livestock Science, 140(1), 131-135.
Yan, L. and Kim, I.H. (2011). Evaluation of dietary supplementation of delta-aminolevulinic acid and chitooligosaccharide on growth performance, nutrient digestibility, blood characteristic and fecal microbial shedding in weaned pigs. Animal Feed Science and Technology, 169(3-4), 275-280.
Younis, E.M., Al-Quffail, A.S., Al-Asgah, N.A., Abdel-Warith, A.A. and Al-Hafedh, Y.S. (2018). Effect of dietary fish meal replacement by red algae, Gracilaria arcuata, on growth performance and body composition of Nile tilapia Oreochromis niloticus. Saudi Journal of Biological Sciences, 25(2), 198-203.
Zhang, J., Kang, Z., Chen, J. and Du, G. (2015). Optimization of the heme biosynthesis pathway for the production of 5-aminolevulinic acid in Escherichia coli. Scientific Reports, 5, 8584.
Zhang, L.W., Fang, Y.P. and Fang, J.Y. (2011). Enhancement techniques for improving 5-aminolevulinic acid delivery through the skin. Dermatologica Sinica, 29(1), 1-7.