Effect of variants in cGH, IGF-I, VIPR-1 and PRL genes on reproductive and egg production traits in crossbred native chicken
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
The objectives of this study were to investigate the genetic variation in cGH,IGF-I,VIPR-1 and PRL genes, and to evaluate their association with reproductive and eggs production traits. A total of 192 crossbred native chickens were studied. Genetic variation of cGH,IGF-I,VIPR-1 and PRL genes was genotyped by PCR-RFLP method, and association analysis was performed by Proc GLM. In the studied population, the genotype of cGH was AA,AG and GG, which a frequency was 0.115, 0.526 and 0.359, respectively. Genotype of IGF-I was AA,AC and CC, which a frequency was 0.171,0.471 and 0.358, respectively. Genotype of VIPR-1 was CC,CT and TT, which a frequency was 0.175,0.246 and 0.579, respectively. Genotype of PRL was ID and DD, which frequency was 0.100 and 0.900, respectively. The analysis revealed an association between variations of cGH and IGF-I with reproductive and egg production traits in crossbred native chicken (P<0.05). For cGH, the chicken with genotype AC had the highest of first egg weight (38.44±0.89 g) compared with the genotypes AA (37.05±1.57 g) and GG (35.00±1.11 g). For IGF-I, the chicken with genotype CC had the highest number of egg production at 270 days (70.25±4.74 egg) compared with the genotypes AA (53.20±5.82 egg) and AC (61.20±4.18 egg). In the same way, the genotype CC had associated with the highest number of egg production at 300 days (85.08±5.57 egg) compared to those in the genotypes AA (64.04±6.79 egg) and AC (76.71±4.83 egg). However, the study found no association between genotypic patterns of the VIPR-1 and PRL genes with reproductive and egg production traits in crossbred native chicken (P>0.05). These findings indicated that both cGH and IGF-I genes might be involved in reproductive and egg production performances, and hence variation in cGH and IGF-I could potentially be useful as genetic marker for improving egg production of crossbred native chickens.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
ทองสา บัวสุข, มนต์ชัย ดวงจินดา, ยุพิน ผาสุข, และ สจี กัณหาเรียง. 2557. รูปแบบของยีน cGH, IGF-1, ApoB2, ApoVLDL-II และ FASN กับน้ำหนักตัวและระดับคอเลสเตอรอลในพลาสมาของไก่พื้นเมืองไทยลูกผสม. แก่นเกษตร. 42(3): 357-368.
นิกร ปรีชา, รังสรรค์ เจริญสุข, ทศพร อินเจริญ, สนธยา นุ่มท้วม, นิทัศน์ วิชาสิทธิ์, และ ธิติมา เพ็ชรคง. 2560. ความหลากหลายทาง พันธุกรรมของยีน cGH, MC5R, IGFBP2 และ IGF-1 และความสัมพันธ์กับลักษณะการเจริญเติบโตในไก่เล็กฮอร์นขาวและโรดไอร์แลนด์แดง. แก่นเกษตร. 45(ฉบับพิเศษ 1): 783-789.
บัญญัติ เหล่าไพบูลย์. 2561. “ไก่ไร้เก๊าท์” ผลงานวิจัย ม.ขอนแก่น ยกระดับขึ้นพรีเมี่ยมฟูด กินแล้วไม่เป็นเก๊าท์. แหล่งข้อมูล: https://www.77kaoded.com/content/70412. ค้นเมื่อ 26 พฤศจิกายน 2562.
ศรีนวล คณานิตย์, มนต์ชัย ดวงจินดา, บัญญัติ เหล่าไพบูลย์, และ ปรัชญาพร เอกบุตร. 2553. ความหลากหลายทางพันธุกรรมของยีน Vasoactive Intestinal Peptide Receptor-1 (VIPR-1) ในไก่ชี ไก่ประดู่ และไก่เล็กฮอร์น. แก่นเกษตร. 38(ฉบับพิเศษ): 85-89.
สจี กัณหาเรียง, ทองสา บัวสุข, มนต์ชัย ดวงจินดา, บัญญัติ เหล่าไพบูลย์ และยุพิน ผาสุข. 2561. ความสัมพันธ์ของยีน cGH, VIPR-1, FASN และ IGF-1 ต่อน้ำหนักตัว และขนาดรอบอกในไก่พื้นเมืองไทยพันธุ์ชี เคเคยู 12. แก่นเกษตร. 46(4): 721-732.
สุกัญญา เจริญศิลป์, มนต์ชัย ดวงจินดา, สุภร กตเวทิน, และ พรรณวดี โสพรรณรัตน์. 2555. การตรวจหาเครื่องหมายพันธุกรรมที่สัมพันธ์กับลักษณะการให้ผลผลิตไข่ ในไก่พื้นเมืองไทยพันธุ์ประดู่หางดำและพันธุ์ชี. แก่นเกษตร. 40: 257-268.
สำนักงานเลขานุการของคณะกรรมการยุทธศาสตร์ชาติ, สำนักงานคณะกรรมการพัฒนาการเศรษฐกิจและสังคมแห่งชาติ. 2561. ยุทธศาสตร์ชาติ. แหล่งข้อมูล: https://www.nesdb.go.th/download/document/SAC/NS_SumPlanOct2018.pdf. ค้นเมื่อ 15 ธันวาคม 2562.
อนุวัฒน์ จันดามุก. 2563. การศึกษาเครื่องหมายพันธุกรรมที่เกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและการสืบพันธุ์ในพ่อแม่พันธุ์ไก่ไข่มุกอีสาน 2. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต. มหาวิทยาลัยขอนแก่น.
Chaiseha, Y., O. M. Youngren, and M.E. El Halawani. 2004. Expression of vasoactive intestinal peptide receptor messenger RNA in the hypothalamus and pituitary throughout the turkey reproductive cycle. Biology of Reproduction. 70: 593-599.
Cui, J.X., H.L. Du, Y. Liang, X.M. Deng, N. Li, and X.Q. Zhang. 2006. Association of polymorphism in the promoter region of chicken prolactin with egg production. Journal of Poultry Science. 85: 26-31.
Dekkers, J.C.M. 2004. Commercial application of marker-and gene-assisted selection in livestock: Strategies and lessons. Journal of Animal Sciences. 82: E313-E328.
Feng, X.P., U. Kuhnlein, S.E. Aggrey, J.S. Gavora, and D. Zadworny. 1997. Trait association of genetic markers in the growth hormone and the growth hormone receptor gene in a white leghorn strain. Journal of Poultry Science. 76: 1770-1775.
Goodwin, W., L. Adrian, and H. Sibte. 2007. An Introduction to Forensic Genetics. John Wiley and Sons Ltd, Oxford.
Jaturasitha, S., T. Srikanchai, M. Kreuzer, and M. Wicke. 2008. Differences in carcass and meat characteristics between chicken indigenous to northern Thailand (Black-boned and Thai native) and imported extensive breeds (Bresse and Rhode Island Red). Journal of Poultry Science. 87(1): 160-169.
Jiang, R.S., L.L. Zhang, Z.Y. Geng, T. Yang, and S.S. Zhang. 2009. Single nucleotide polymorphisms in the 5’-flanking region of the prolactin gene and the association with reproduction traits in geese. South African Journal of Animal Science. 39: 83-87.
Jiang, R.S., X.Y., Chen, and Z.Y. Geng. 2010. Broodiness, egg production, and correlations between broody traits in an indigenous chicken breed. Journal of Poultry Science. 89: 1094-1096.
Monget. P., S. Fabre, P. Mulsant, F. Lecerf, J.M. Elsen, S. Mazerbourg, C. Pisselet, and D. Monniaux. 2002. Regulation of ovarian folliculogenesis by IGF and BMP system in domestic animals. Domestic Animal Endocrinology. 23: 139-154.
Ngu, N.T., N.H. Xuan, C.T. Vu, N.T. An, N.T. Dung, and N.T.H. Nhan. 2015. Effects of genetic polymorphisms on egg production in indigenous noi chicken. Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences. 3(6): 487-493.
Nguyen, A.T.L., S. Kunhareang, and M. Duangjinda. 2015. Association of chicken growth hormones and insulin-like growth factor gene polymorphisms with growth performance and carcass traits in Thai broilers. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. 28(12): 1686-1695.
Nie, Q., B. Sun, D. Zhang, C. Luo, N.A. Ishag, M. Lei, G. Yang, and X. Zhang. 2005. High diversity of the chicken growth hormone gene and effects on growth and carcass traits. Journal of Heredity. 96: 698-703.
Prajan, S., P. Na-Lampang, P. Kaewsatuan, S. Homkhachon, W. Khosinklang, and A. Molee. 2015. The effect of genes on egg production in female line and growth performance of its progeny. Khon Kaen Agriculgure Journal. 43 SUPPL. 2: 165-168.
Roberts. R.D., P.J. Sharp, D.W. Burt, and C. Goddard. 1994. Insulin-like growth factor-1 in the ovary of the laying hen:gene expression and biological actions on granulosa and fecal cell. General and Comparative Endocrinology. 93: 327-336.
SAS. 1998. User’s Guide: V.6.12. SAS Institute Inc., Cary, NC.
Xu, H.P., H. Zeng, D.X. Zhang, X.L. Jia, C.L. Luo, and M.X. Fang. 2011. Polymorphisms associated with egg number at 300 days of age in chickens. Genetics and Molecular Research Journal. 10(4): 2279-2289.
Zhou, H., A.D. Mitchell, J.P. McMurtry, C.M. Ashwell, and S.J. Lamont. 2005. Insulin-like growth factor-I gene polymorphism associations with growth, body composition, skeleton integrity, and metabolic traits in chickens. Journal of Poultry Science. 82: 9-16.
Zhou, M., F.F. Liang, Y.S. Rao, H. Zeng, D.X. Zhang, and X.Q. Zhang. 2008. Association of twelve polymorphisms of the VIPR-1 gene with chicken early egg production traits. Chinese Journal of Animal and Veterinary Sciences. 39: 1147-1152.
