Arthrobotrys oliogospora BCC 3847 and A. javanica BCC 7879 for management of root-knot nematode (Meloidogyne incognita) in chili pepper

Main Article Content

Kewarin Klamchao
Rudsamee Wasuwan
Chettida Srisuksam
Lukwa Chaorainak
Nuchanart Tangjitsomkid
Alongkorn Amnuaykanjanasin

Abstract

Root-knot Nematodes (RKN) is a damaging pest in several crops, including chili pepper, and leads to a severe loss of crop products. Past managements include crop rotation to a different crop such as sunn hemp to limit the spread of RKNs. Biological control using microorganisms is an alternative to control the pest in the field, consequently promoting existing and future markets of organic products.  This study focused on two nematophagous fungi feeding specifically on nematodes, Arthobotrys oligospora BCC 3847 and A. javanica BCC 7879. Scanning electron and compound microscopy showed that both fungi formed various trapping structures, including adhesive net, adhesive knob, constricting ring and adhesive loop. The latter structure is particularly unique for A. oligospora BCC 3847, and has 3-4 hyphal rings arranged in a knot type. Arthobotrys oligospora and A. javanica having these trapping structures caused 34 and 17% mortality of RKNs after 7 days post-inoculation (dpi), respectively. Similar structures were also found in in vitro soil experiment. Viability test indicated that A. oligospora and A. javanica were found in the soil at 1,395 and 92.5 CFU/g during 15-30 dpi. Greenhouse trials demonstrated that inoculation of the two Arthobotrys isolates in the soil 15 days before RKN inoculation decreased the number of root galls by 63-66%, compared with a RKN-infested treatment. Utilization of A. oligospora BCC 3847 can be a preventive protocol for reducing the occurrence of root galls in chili pepper.

Article Details

How to Cite
กล่ำเชาว์ เ., Wasuwan, R. ., Srisuksam, C. ., Chaorainak, L. ., Tangjitsomkid, N. ., & Amnuaykanjanasin, A. . (2021). Arthrobotrys oliogospora BCC 3847 and A. javanica BCC 7879 for management of root-knot nematode (Meloidogyne incognita) in chili pepper. Khon Kaen Agriculture Journal, 49(5), 1234–1248. retrieved from https://li01.tci-thaijo.org/index.php/agkasetkaj/article/view/249520
Section
บทความวิจัย (research article)

References

ไตรเดช ข่ายทอง, ธิติยา สารพัฒน์, มนตรี เอี่ยมวิมังสา และเสงี่ยม แจ่มจํารูญ. 2554. ประสิทธิภาพของสาร abamectin ในการควบคมไส้เดือนฝอยรากปมในมันฝรั่ง. สำนักวิจัยอารักขาพืช กรมวิชาการเกษตร. แหล่งข้อมูล: https://www.doa.go.th/research/attachment.php?aid=1108. ค้นเมื่อ 2 มิถุนายน 2564.

ไตรเดช ข่ายทอง และมนตรี เอี่ยมวิมังสา. 2554. การใช้ปอเทืองควบคุมไส้เดือนฝอยรากปมในมันฝรั่ง. รายงานผลวิจัยประจำปี 2554 สำนักวิจัยอารักขาพืช กรมวิชาการเกษตร. แหล่งข้อมูล: https://www.doa.go.th/research/attachment.php?aid=307 ค้นเมื่อ 2 มิถุนายน 2564

สุรีย์พร บัวอาจ, บุษราคัม อุดมศักดิ์, นุชนารถ ตั้งจิตสมคิด และวีระศักดิ์ ศักดิ์ศิริรัตน์. 2557. ประสิทธิภาพของก้อนเชื้อเห็ดเรืองแสง Neonothopanus nambi Speg. ต่อไส้เดือนฝอยรากปม (Meloidogyne incognita Chitwood) ในพริก.วารสารวิชาการเกษตร. 32: 393-398.

มยุรฉัตร ทัดเทียม. 2554. การผลิตมวลชีวภาพของเชื้อรา Pochonia chlamydosporia var. catenulate และประสิทธิภาพในการควบคุมไส้เดือนฝอยรากปม (Meloidogyne incognita) ในมะเขือเทศ. วารสารวิจัย มข. 16 (4): 348-358.

ยุวดี ชูประภาวรรณ และ สุภาวดี แก้วระหัน. 2557. รายงานการประเมินชีวภัณฑ์เชื้อรา Pochonia chlamydosporia YT008 ในการควบคุมไส้เดือนฝอยรากปม. แก่นเกษตร. 42(3): 661-667

สุมาลี เม่นสิน. 2550. การคัดเลือกและผลิตเชื้อราปฏิปักษ์ (Arthtobotrys sp.) เพื่อควบคุมไส้เดือนฝอยรากปมในผักกาดหอมห่อ. มหาวิทยาลัยเชียงใหม่, เชียงใหม่.

Agrios G. N. 1997. Plant Pathology. San Diego: Academic Press.

Dackman, C., and B. Nordbring-Hertz. 1992. Conidial trap – a new survival structure of the nematode-trapping fungus Arthrobotrys oligospora. Mycological Research. 96: 194-198.

Jansson, H. B, and L. V. Lopez-Llorca. 2001. Biology of nematophagous fungi. P. 145-173. In: Misra JK & Horn BW (eds). Mycology: Trichomycetes, Other Fungal Groups and Mushrooms. Enfield: Science Publishers.

Kerry, B.R. 2000. Rhizosphere interactions and the exploitation of microbial agents for the biological control of plant-parasitic nematodes. Annual Review of Phytopathology. 38: 423-454.

Kiewnick, S., and R. A. Sikora. 2003. Efficacy of Paecilomyces lilacinus (strain 251) for the control of root-knot nematodes. Communications in Agricultural and Applied Biological Sciences. 68: 123-128.

Liu, X., M. Xiang, and Y. Che. 2009. The living strategy of nematophagous fungi. Mycosscience 50: 20-25.

Nansen, P. 1993. Current and future prospects for control of ostertagiasis in northern Europe-examples from Denmark. Vet Parasitol. 46: 3-21.

Nordbring-Hertz, B., H. B. Jansson, and E. Friman. 1995. Nematophagous Fungi. Film No C1851 Göttinggen, Germany: Institutfür den Wissenschaftlichen Film.

Nordbring-Hertz, B., H.B. Jansson, and A. Tunlid. 2006. Nematophagous fungi. In: Encyclopedia of Life Sciences. John Wiley, USA.

Nordmeyer, D. 1992. The search for novel nematicidal compounds. P. 281–293. In: F.J. Gommers and W. Th. Maas (eds) Nematology from molecules to ecosystem. European Society of Nematologists, Inc. Invergowrie, Dundee, Scotland.

Sasser, J. N. 1980. Root knot nematodes: A global menace to crop production. Plant Disease. 64: 36-41.

Skidmore, A. M., and C. M. Dickinson. 1976. Colony interactions and hyphal interference between sepatoria nodorum and phylloplane fungi. Transactions of the British Mycological Society. 66: 57-64.

Su, H., Y. Zhou, J. Zhou, H. Feng, D. Jiang, K. Q. Zhang, and J. Yang. 2017. Trapping devices of nematode- trapping fungi: Formation, evolution, and genomic perspectives. Biology Reviews. 92: 357-368.

Hays, Z., and D. Watson. 2019. Fungal Ecology, Diversity and Metabolites. ED-TECH Press, UK.

Zopf, W. 1888. Zur Kenntnis der Infektions-Krankheiten neiderer Thiere. Nova Acta Leop Acad Naturf Halle 52: 7.