Propagation of papaya (Carica papaya L.) cv. Holland in tissue culture

Main Article Content

Penkhae Rungrueng
Kiriya Sungthongwises
Kanjana Luangsuwalai

Abstract

Papaya (Carica papaya L.) is an important economical fruit plants in Thailand. Papaya is trioecious with three basic sex forms: female, male and hermaphrodite on separate plants. The fruit developed from hermaphrodite flower contains more flesh, less seed, and longer fruit shape (pyriform) than female flower. Therefore, only hermaphrodite plant results in a more commercial value for the fruit production. Normally, Papaya from seed provided 70 % hermaphrodite and 30 % of females. In papaya planting, 2 - 3 seedlings are planted per hole to obtain a hermaphrodite. A lot of papaya seedlings were used to grow in the field. Propagation by tissue culture tends to produce the original varieties and large quantities papaya trees in a short time. The purpose of this research was to effect of NAA and BA with MS media on tissue culture of papaya a cv. Holland. Shoot tip was cultivated on MS medium supplemented with 0-0.2 mg/l (NAA) and 0 - 0.45 mg/l (BA) in vitro condition at 25 ± 2 oC with light 16 hrs./day for 60 days. The results showed that the MS media with NAA + BA no Influence on the number of shoots and shoot length (P > 0.05). But have significantly in the number of roots, root length and number of leave (P < 0.01). MS media with NAA 0.10 mg/L + BA 0.45 mg/Lgave the highest number of shoots (4.14 + 0.69 shoots) and NAA 0.10 mg/L + BA 0.15 mg/L gave the highest number of roots (8.71 + 2.21).

Article Details

How to Cite
Rungrueng, P. ., Sungthongwises, K. ., & Luangsuwalai, K. . (2019). Propagation of papaya (Carica papaya L.) cv. Holland in tissue culture. Khon Kaen Agriculture Journal, 47(3), 459–466. retrieved from https://li01.tci-thaijo.org/index.php/agkasetkaj/article/view/249838
Section
บทความวิจัย (research article)

References

กรณ์ กรภัทร์ชัยกุล และลัดดาวัลย์ รักษ์ธรรม. 2558. การขยายพันธุ์โมกมัน [Wrijhtia arborea (Dennst.) Mabb.] ในหลอดทดลอง. ว. วิทยาศาสตร์ละเทคโนโลยี. 23(5): 833 - 845.

พีรเดช ทองอําไพ. 2529. ฮอร์โมนพืชและสารสังเคราะห์ แนวทางการใช้ประโยชน์ในประเทศไทย. กรุงเทพฯ : หจก. ไดนามิคการพิมพ์. ละไม ยะปะนัน. 2561. ไปดูมะละกอพันธุ์ใหม่ “ส้มตำ 90” ต้นกะเทย 90 % ทนไวรัส ดก เตี้ย เนื้อกรอบ-ศรแดงทำได้. แหล่งข้อมูล: https://www.kasetvoice.com/post/4401 ค้นเมื่อ 1 พฤศจิกายน 2561.

สนอง เศษโม้, รภัสสา จันทาศรี, เกรียงศักดิ ไพรวรรณ ์และ พนิดา อะริมัตทสึ. 2557. การเปรียบเทียบพันธุ์มะละกอสำหรับบริโภคผลดิบ 4 พันธุ์ ในจังหวัดมหาสารคาม. ว. เกษตรพระวรุณ. 11(2): 117-126.

สมดังใจ สายสิงห์ทอง สงวนศักดิ์ ธนาพรพูนหงษ์ และสุชาดา เวียร์ศิลป์ . 2554. ผลของผงถ่านกัมมันต์และ 2,4-D ต่อการเกิดแคลลัสของข้าวพันธุ์สุพรรณบุรี 1. ว. เกษตร. 27(2): 175 - 185.

สำนักงานมาตรฐานสินค้าเกษตรและอาหารแห่งชาติ. 2558. มาตรฐานสินค้าเกษตรมะละกอ. กรุงเทพฯ: สำนักงานมาตรฐานสินค้าเกษตรและอาหารแห่งชาติ กระทรวงเกษตรและสหกรณ์.

สิรนุช ลามศรีจันทร์. 2540. การกลายพันธุ์. พิมพ์ครั้งที่ 2. ภาควิชารังสีประยุกต์และไอโซโทป คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์. กรุงเทพฯ.

สิริกุล วะสี. 2557. มะละกอ...พืชความหวังใหม่ของเกษตรกร. agriculture@risk เล่มที่ 8. สำนักงานกองทุนสนับสนุนการวิจัย.

สังคม เตชะวงศ์เสถียร. ม.ป.ป. สรีรวิทยาผลิตพืช: ปัจจัยที่มีผลต่อการเจริญเติบโตและพัฒนาของพืช. สาขาพืชสวน ภาควิชาพืชศาสตร์และทรัพยากรการเกษตร คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น. ขอนแก่น.

Anandan, R., S. Thirugnanakumar, D. Sudhakar, and P. Balasubramanian. 2011. In vitro organogenesis and plantlet regeneration of (Carica papaya L.). J. Agric tech. 7(5): 1339 - 1348.

Bhattacharya, J., N.N. Renukdas, S.S. Khuspe, and S.K. Rawal. 2003. Multiple shoot regeneration from immature embryo explants of papaya. Biol Plantarum. 47(3): 327 - 331.

Bindu, B. and B. Podikunju. 2017. Tissue culture protocol for in-vitro propagation of papaya (Carica papaya L.). J Krishi Vigyan. 6(1): 205 - 212.

Bruce, S. and C.A. Peter, 2008. Handbook of Environmental Physiology of Fruit Crops. 1st Ed. pp: 217.

Graystona, S.J., S. Wangb, C.D. Campbella, and Edwards, A.C. 1998. Selevtive influence of plant species on microbial diversity in the rhizosphere. Soil Biol and Biochem. 30(3): 369 - 378.

Mumo, N. N., F. K. Rimberia, G. E. Mamati, and A. W. Kihurani. 2013. In vitro regeneration of selected Kenyan papaya (Carica papaya L.) lines through shoot tip culture. Afr. J. Biotechnol. 12(49): 6826 - 6832.

Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 15: 473 - 497.

Radzuan, N.S., N.A. Hasbullah, F.K.A. Patah, H. Idris, and M. M. Lassim. 2018. Effects of plant growth regulators on shoot regeneration and callus induction of Carica papaya L. 32 - 35. In 12th Int’l Conference on Advances in Agricultural, Chemical, Biological & Medical Sciences (AACBMS-18) August 6-8, 2018 Pattaya (Thailand).

Setargie, A., F. Mekbib, and E. Abraha. 2015. In vitro propagation of papaya (Carica papaya L.). WORLD J. Agric Sci 11(2): 84 - 88.

Soliman, H.I., M. Gabr, and N.A. Abdallah, (2010). Efficient transformation and regeneration of fig (Ficus carica L.) via somatic embryogenesis. GM Crops. 1(1): 40 - 51.