Effect of auxin on somatic embryo induction and plant regeneration of oil palm SUP-PSU
Main Article Content
Abstract
Oil palm cv. SUP-PSU is high yield variety that can adapt well in various growing environments. Commercial production is generally carried out by conventional method through seed propagation. However, it is time-consuming, and the number of plants is not enough for demanding of growers. Tissue culture technique is an alternative method to solve those problems. Thus, the objectives of this research was to study effects of auxins and culture media on plantlet regeneration of oil palm in vitro. The embryogenic callus (EC) derived from culturing zygotic embryo was transferred to oil palm culture medium (OPCM) supplemented with different concentrations of 3,6-dichloro-2-methoxybenzoic acid (dicamba) for 4 weeks. The results showed that 0.1 mg/l dicamba could induce the highest percentage of somatic embryo (SE) induction (80%) as well as number of SEs (1.4 embryos/tube) with root-like structure obtaining callus whereas the highest number of shoots (1.14 shoots/tube) was obtained on the medium added with 0.3 mg/l dicamba with yellowish callus. Subculturing shoots to OPCM without plant growth regulators resulted in shoot elongation. Rooting of the shoots was successfully obtained on OPCM augmented with 0.5 mg/l a-naphthalene acetic acid (NAA). On this culture medium, the highest root induction at 100%, average number of roots at 7.38 roots/shoot, root length at 1.5 cm, growth index at 1.22 and number of leaves at 3.75 leaves/plant were noticed at 8 weeks. Therefore, OPCM with 0.3 mg/l dicamba are suitable for SE induction while adding 0.5 mg/l NAA to the medium are optimum for root induction. Both plant growth regulators containing medium can apply for propagation and improvement of oil palm in future.
Article Details
References
ชีรวัลย์ สิทธิศักดิ์, ทัศนี ขาวเนียม และสมปอง เตชะโต. 2560. ผลของการสับและสภาพวางเลี้ยงต่อการเพิ่มปริมาณโซมาติกเอ็มบริโอของปาล์มน้ำมันพันธุ์ทรัพย์ ม.อ. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์ 4: 41-46.
ธนวดี พรหมจันทร์. 2551. การชักนำโซมาติกเอ็มบริโอชุดที่สองและการวิเคราะห์ความแปรปรวนของต้นปาล์มน้ำมันที่พัฒนาโดยใช้เครื่องหมายอาร์เอพีดี. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์, สงขลา.
ธีระ เอกสมทราเมษฐ์. 2554. การปรับปรุงพันธุ์ปาล์มน้ำมัน. สำนักวิจัยและพัฒนา. มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์, สงขลา.
ยุพาภรณ์ ศิริโสม และสมปอง เตชะโต. 2557. การประเมินการสร้างรากของปาล์มน้ำมัน 2 สายต้นในหลอดทดลอง. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์ 1: 6-9.
ศตปพร เกิดสุวรรณ และสมปอง เตชะโต. 2557. ผลของไดแคมบาต่อการชักนำโซมาติกเอ็มบริโอและการพัฒนาเป็นต้นของปาล์มน้ำมัน. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์ 1: 2-9.
ศูนย์วิจัยปาล์มน้ำมันสุราษฎร์ธานี. 2553. วิชาการปาล์มน้ำมัน. แหล่งข้อมูล: http://www.doa.go.th/palm/linkTechnical/nursery%20seedling.html. ค้นเมื่อ 3 สิงหาคม 2561.
สำนักวิจัยและพัฒนา มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์. 2561. ปาล์มน้ำมัน “พันธุ์ทรัพย์ ม.อ.”. แหล่งข้อมูล: http://www.rdi.ku.ac.th ค้นเมื่อ 3 สิงหาคม 2561.
สกุลรัตน์ แสนปุตะวงษ์, สมปอง เตชะโต และ สรพงค์ เบญจศรี. 2557. ผลของผงถ่านและอาหารเหลวต่อการงอกและการพัฒนาเป็นพืชต้นใหม่จากโซมาติกเอ็มบริโอชุดที่สองของปาล์มน้ำมัน. วารสารแก่นเกษตร 42: 456-461.
สมปอง เตชะโต. 2539. ตำราเรียนรายวิชา 510-401 บทปฏิบัติการเทคโนโลยีชีวภาพของพืชปลูก. ภาควิชาพืชศาสตร์ คณะทรัพยากรธรรมชาติ มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์.
สมปอง เตชะโต, อาสลัน หิเล และอิบรอเฮม ยีดำ. 2547. การชักนำเอ็มบริโอเจนิคแคลลัสและพืชต้นใหม่จากใบอ่อนปาล์มน้ำมันต้นโตที่ให้ผลผลิตดี. วารสารสงขลานครินทร์ วิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี 26: 617-628.
อภิชญา นุกูลรัตน์, สุรีรัตน์ เย็นช้อน และสมปอง เตชะโต. 2560. ผลของกรดแอสคอร์บิค ออกซิน และน้ำตาลต่อการชักนำโซมาติกเอ็มบริโอของปาล์มน้ำมันพันธุ์ทรัพย์ ม.อ. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์ 4: 1-7.
Agarwal, S., K. Kanwar and D. R. Sharma. 2004. Factors affecting secondary somatic embryogenesis and embryo maturation in Morus alba L. Acta Hort. 102: 359–368.
Corley, R. H. V. and P. B. Tinker. 2003. The Oil Palm, 4th ed. Blackwell Publishing, Oxford.
Gomes, H. T., P. M. C. Bartos and J. E. Scherwinski-Pereira. 2015. Optimizing rooting and survival of oil palm (Elaeis guineensis) plantlets derived from somatic embryos. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 51: 111-117.
Hilae, A. and S. Te-chato. (2005). Effects of carbon sources and strength of MS medium on germination of somatic embryos of oil palm (Elaeis quineensis Jacq.). Songklanakarin J. Sci. Technol. 27: 629-635.
Jayanthi, M., B. Susanthi, N. M. Mohan and P. K. Mandal. 2015. In vitro somatic embryogenesisand plantlet regeneration from immature male inflorescence of adult dura and tenera palmsof Elaeis guineensis (Jacq.) SpringerPlus 4: 1-7.
Kurup, S. S., M. A. M. Aly, G. Lekshmi and N. H. Tawfik. 2014. Rapid in vitro regeneration of date palm (Phoenix dactylifera L.) cv. Kheneizi using tender leaf explant. Emir. J. Food Agr. 26: 539-544.
Mallon, R., P. Covelo and A. M. Vieitez. 2012. Improving secondary embryogenesis in Quercus robur: application of temporary immersion for mass propagation. Tree 26: 731–741.
Promchan, T., S. Sanputawong and S. Te-chato. 2012. Effect of sizes of haustorium embryo on secondary somatic embryo formation and histological study in oil palm. J. Agric. Technol. 8: 671-679.
Sheil, D., A. Casson, E. Meijaard, M. V. Noordwijk, J. Gaskell, J. Sunderland-Groves, K. Wertz and M. Kanninen. 2009. The impacts and opportunities of oil palm in Southeast Asia. Occasional 51: 1-67.
Steinmacher, D. A., M. P. Guerra, K. Saare-Surminski and R. Lieberei, R. 2011. A temporary immersion system improves in vitro regeneration of peach palm through secondary somatic embryogenesis. Ann. Bot. 108: 1463–1475.
Teixeira, J. B., M. R. Sondahl and E. G. Kirby. 1994. Somatic embryogenesis from immature inflorescences of oil palm. Plant Cell Rep. 13: 247-250.
Thawaro, S. and S. Te-chatoS. 2010. Effect of culture medium and genotype on germination of hybrid oil palm zygotic embryos. ScienceAsia 36: 26–32.