Antifungal activity of stingless bee, Tetragonula pagdeni (Schwarz), propolis extracts against tangerine green mold rot
Article Sidebar
Published:
May 18, 2021
Keywords:
mycelial inhibition propolis postharvest fungi fruit
Main Article Content
Abstract
Green mold rot, caused by Penicillium spp., is an important problem of postharvest tangerines. Using natural coating agent containing with water diffusion preventing agent, and antifungal activity obtain is necessary to reduce harmful chemical residue to consumers. This study aimed to evaluate efficacy of the suitable organic solvents and concentrations of a Thai stingless bee propolis extracts against tangerine green mold rot. The propolis was extracted by three organic solvents and in vitro tested the mycelial growth inhibition of fungi causing green mold rot isolated from tangerines at concentrations of 1, 2.5 and 5% (w/v). The result showed that the highest mycelial growth inhibition by propolis methanol extract (PME) with 2.5% (w/v) concentration (65.80±8.35%) is not significantly different with other types of propolis, except for the 2.5% (w/v) of propolis ethanol extract (PEE). The total average of percentage inhibition revealed that the propolis acetone extract (PAE) gave the highest inhibition following by PME and PAE (propolis ethanol extract), respectively.
Article Details
How to Cite
Phoonan, W. ., & Noppakun, K. . (2021). Antifungal activity of stingless bee, Tetragonula pagdeni (Schwarz), propolis extracts against tangerine green mold rot. Khon Kaen Agriculture Journal, 49(3), 691–700. retrieved from https://li01.tci-thaijo.org/index.php/agkasetkaj/article/view/250849
Section
บทความวิจัย (research article)
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
ชนะตะวัน คริสเตนเซ่น, ทวิธาร จีนะสฤษดิ์, ลลิตตา จันทร์ทอง, สุชาดา พันธุ์สถิตย์วงศ์, และนพพล เล็กสวัสดิ์. 2557. สารเคลือบผิวผลไม้เศรษฐกิจไทย. แหล่งข้อมูล: http://www.agro.cmu.ac.th/absc/data/57/57-017. ค้นเมื่อ 20 กุมภาพันธ์ 2563.
เบญจมาภรณ์ ศรีคำแหง. 2548. การควบคุมโรคเน่าราเขียวของผลส้มพันธุ์สายน้ำผึ้งหลังการเก็บเกี่ยวโดยใช้กรดอินทรีย์ร่วมกับสารเคลือบผิว. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต มหาวิทยาลัยเชียงใหม่, เชียงใหม่.
วชิราภรณ์ ฟูนัน. 2562. วิธีการสกัดสารสกัดหยาบจากพรอพอลิสของชันโรงที่มีผลต่อการยับยั้งการเจริญของเชื้อราก่อโรคผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว. (ออนไลน์). ใน: ประชุมวิชาการระดับชาติ “วลัยลักษณ์วิจัย” ครั้งที่ 11 วันที่ 27-28 มีนาคม 2562. มหาวิทยาลัยวลัยลักษณ์, นครศรีธรรมราช.
วิจิตรา ลีละศุภกุล. 2547. การควบคุมโรคผลส้มหลังการเก็บเกี่ยวโดยชีววิธี. รายงานวิจัยฉบับสมบูรณ์ ทุนงบประมาณแผ่นดิน. มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์.
ศิริวรรณ อธิคมกุลชัย. 2550. พรอพอลิส: ของขวัญจากธรรมชาติ. วารสารไทยเภสัชศาสตร์และวิทยาการสุขภาพ. 3: 286-295.
สำนักงานเศรษฐกิจการเกษตร กระทรวงเกษตรและสหกรณ์. 2562. ส้มเขียวหวาน: เนื้อที่ยืนต้น เนื้อที่ให้ผล ผลผลิต และผลผลิตต่อไร่ ปี 2562. http://www.oae.go.th/assets/portals/1/fileups/prcaidata/files/lime62.pdf. ค้นเมื่อ 20 กุมภาพันธ์ 2563.
สำนักวิจัยและพัฒนาวิทยาการหลังการเก็บเกี่ยวและแปรรูปผลิตผลเกษตร กรมวิชาการเกษตร. 2557. โรคผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว. จามจุรีโปรดักส์, กรุงเทพฯ.
สุพรรณิการ์ สมใจเพ็ง และรังสิยา แก้ววิเชียร. 2563. การยับยั้งการเจริญของเชื้อรา Penicillium sp. และ Fusarium sp. ที่คัดแยกได้จากพริกไทย (Piper nigrum L.) โดยใช้สารประกอบกลุ่ม GRAS. แก่นเกษตร. 48 (ฉบับพิเศษ 1): 1189-1196.
อัญชลี สวาสดิ์ธรรม. 2556. มหัศจรรย์ชันโรง. ทริปเพิ้ล กรุ๊ป, กรุงเทพฯ.
Dirar, A. I., D. H. M. Alsaadi, M. Wada, M. A. Mohamed, T. Watanabe, and H. P. Devkota. 2019. Effects of extraction solvents on total phenolic and flavonoid contents and biological activities of extracts from Sudanese medicinal plants. South African Journal of Botany. 120: 261-267.
Do, Q. D., A. E. Angkawijaya, P. L. Tran-Nguyen, L. H. Huynh, F. E. Soetaredjo, S. Ismadji, and Y. Ju. 2014. Effect of extraction solvent on total phenol content, total flavonoid content, and antioxidant activity of Limnophila aromatica. Journal of Food and Drug Analysis. 22: 296-302.
El- Fadaly, H., and E. E. Y. El-Badrawy. 2001. Flavonoids of propolis and their antibacterial activities. Pakistan Journal of Biological Sciences. 4: 204-207.
Hernández Zarate, M. S., M. R. Abraham Juárez, A. Cerón García, C. Ozuna López, A. J. Gutiérrez Chávez, J. J. N. Segoviano Garfias, and F. Avila Ramos. 2018. Flavonoids, phenolic content, and antioxidant activity of propolis from various areas of Guanajuato, Mexico. Food Science and Technology. 38: 210-215.
Koc, A. N., S. Silici, F. Mutlu-Sariguzel, and O. Sagdic. 2007. Antifungal activity of propolis in four different fruit juices. Food Technology and Biotechnology. 45: 57–61.
Matny, O. N. 2015. Efficacy evaluation of Iraqi propolis against gray mold of stored orange caused by Penicillium digitatum. Plant Pathology Journal. 14(3): 153-157.
Matny, O. N., S. H. S. Al-Warshan, and A. M. Ali. 2015. Antifungal evaluation of Iraqi propolis against Penicillium expansum and mycotoxin production in apple. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 4: 399-405.
Moraes Bazioli, J., J. R. Belinato, J. H. Costa, D. Y. Akiyama, J. G. de Moraes Pontes, K. C. Kupper, F. Augusto, J. E. de Carvalho, and T. P. Fill. 2019. Biological control of citrus postharvest phytopathogens. Toxins (Basel). 11(8): 460.
Peng, L., S. Yang, Y. J. Cheng, F. Chen, S. Pan, and G. Fan. 2012. Antifungal activity and action mode of pinocembrin from propolis against Penicillium italicum. Food Science and Biotechnology. 21: 1533–1539.
Sánchez, C., P. Duarte., P. Vasilenko., M. Santos., M. Loebler., A.S. Cruz., and M. Gonçalves. 2016. Potential application of Portuguese propolis to control blue mould disease in 'Rocha' pear. Acta Horticulturae. 1144: 359-364.
Soylu, E. M., A. E. Özdemir, E. Ertürk, N. Sahnler, and S. Soylu. 2008. Antifungal activity of propolis against postharvest disease agent Penicillium digitatum. Asian Journal of Chemistry. 20: 4823-4830.
Temiz, A., A. S. Mumcu, A. Ö. Tüylü, K. Sorkun, and B. Salih. 2013. Antifungal activity of propolis samples collected from different geographical regions of Turkey against two food-related mold, Aspergillus versicolor and Penicillium aurantiogriseum. GIDA-The Journal of Food. 38: 135-142.
Xu, X., R. Pu, Y. Li, Z. Wu, C. Li, X. Miao, and W. Yang. 2019. Chemical compositions of propolis from China and the United States and their antimicrobial activities against Penicillium notatum. Molecules. 24: 3576.
Yang, S., L. Peng, Y. Cheng, C. Feng, and P. Siyi. 2010. Control of citrus green and blue molds by Chinese propolis. Food Science and Biotechnology. 19: 1303–1308.
เบญจมาภรณ์ ศรีคำแหง. 2548. การควบคุมโรคเน่าราเขียวของผลส้มพันธุ์สายน้ำผึ้งหลังการเก็บเกี่ยวโดยใช้กรดอินทรีย์ร่วมกับสารเคลือบผิว. วิทยานิพนธ์ปริญญาวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต มหาวิทยาลัยเชียงใหม่, เชียงใหม่.
วชิราภรณ์ ฟูนัน. 2562. วิธีการสกัดสารสกัดหยาบจากพรอพอลิสของชันโรงที่มีผลต่อการยับยั้งการเจริญของเชื้อราก่อโรคผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว. (ออนไลน์). ใน: ประชุมวิชาการระดับชาติ “วลัยลักษณ์วิจัย” ครั้งที่ 11 วันที่ 27-28 มีนาคม 2562. มหาวิทยาลัยวลัยลักษณ์, นครศรีธรรมราช.
วิจิตรา ลีละศุภกุล. 2547. การควบคุมโรคผลส้มหลังการเก็บเกี่ยวโดยชีววิธี. รายงานวิจัยฉบับสมบูรณ์ ทุนงบประมาณแผ่นดิน. มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์.
ศิริวรรณ อธิคมกุลชัย. 2550. พรอพอลิส: ของขวัญจากธรรมชาติ. วารสารไทยเภสัชศาสตร์และวิทยาการสุขภาพ. 3: 286-295.
สำนักงานเศรษฐกิจการเกษตร กระทรวงเกษตรและสหกรณ์. 2562. ส้มเขียวหวาน: เนื้อที่ยืนต้น เนื้อที่ให้ผล ผลผลิต และผลผลิตต่อไร่ ปี 2562. http://www.oae.go.th/assets/portals/1/fileups/prcaidata/files/lime62.pdf. ค้นเมื่อ 20 กุมภาพันธ์ 2563.
สำนักวิจัยและพัฒนาวิทยาการหลังการเก็บเกี่ยวและแปรรูปผลิตผลเกษตร กรมวิชาการเกษตร. 2557. โรคผลไม้หลังการเก็บเกี่ยว. จามจุรีโปรดักส์, กรุงเทพฯ.
สุพรรณิการ์ สมใจเพ็ง และรังสิยา แก้ววิเชียร. 2563. การยับยั้งการเจริญของเชื้อรา Penicillium sp. และ Fusarium sp. ที่คัดแยกได้จากพริกไทย (Piper nigrum L.) โดยใช้สารประกอบกลุ่ม GRAS. แก่นเกษตร. 48 (ฉบับพิเศษ 1): 1189-1196.
อัญชลี สวาสดิ์ธรรม. 2556. มหัศจรรย์ชันโรง. ทริปเพิ้ล กรุ๊ป, กรุงเทพฯ.
Dirar, A. I., D. H. M. Alsaadi, M. Wada, M. A. Mohamed, T. Watanabe, and H. P. Devkota. 2019. Effects of extraction solvents on total phenolic and flavonoid contents and biological activities of extracts from Sudanese medicinal plants. South African Journal of Botany. 120: 261-267.
Do, Q. D., A. E. Angkawijaya, P. L. Tran-Nguyen, L. H. Huynh, F. E. Soetaredjo, S. Ismadji, and Y. Ju. 2014. Effect of extraction solvent on total phenol content, total flavonoid content, and antioxidant activity of Limnophila aromatica. Journal of Food and Drug Analysis. 22: 296-302.
El- Fadaly, H., and E. E. Y. El-Badrawy. 2001. Flavonoids of propolis and their antibacterial activities. Pakistan Journal of Biological Sciences. 4: 204-207.
Hernández Zarate, M. S., M. R. Abraham Juárez, A. Cerón García, C. Ozuna López, A. J. Gutiérrez Chávez, J. J. N. Segoviano Garfias, and F. Avila Ramos. 2018. Flavonoids, phenolic content, and antioxidant activity of propolis from various areas of Guanajuato, Mexico. Food Science and Technology. 38: 210-215.
Koc, A. N., S. Silici, F. Mutlu-Sariguzel, and O. Sagdic. 2007. Antifungal activity of propolis in four different fruit juices. Food Technology and Biotechnology. 45: 57–61.
Matny, O. N. 2015. Efficacy evaluation of Iraqi propolis against gray mold of stored orange caused by Penicillium digitatum. Plant Pathology Journal. 14(3): 153-157.
Matny, O. N., S. H. S. Al-Warshan, and A. M. Ali. 2015. Antifungal evaluation of Iraqi propolis against Penicillium expansum and mycotoxin production in apple. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 4: 399-405.
Moraes Bazioli, J., J. R. Belinato, J. H. Costa, D. Y. Akiyama, J. G. de Moraes Pontes, K. C. Kupper, F. Augusto, J. E. de Carvalho, and T. P. Fill. 2019. Biological control of citrus postharvest phytopathogens. Toxins (Basel). 11(8): 460.
Peng, L., S. Yang, Y. J. Cheng, F. Chen, S. Pan, and G. Fan. 2012. Antifungal activity and action mode of pinocembrin from propolis against Penicillium italicum. Food Science and Biotechnology. 21: 1533–1539.
Sánchez, C., P. Duarte., P. Vasilenko., M. Santos., M. Loebler., A.S. Cruz., and M. Gonçalves. 2016. Potential application of Portuguese propolis to control blue mould disease in 'Rocha' pear. Acta Horticulturae. 1144: 359-364.
Soylu, E. M., A. E. Özdemir, E. Ertürk, N. Sahnler, and S. Soylu. 2008. Antifungal activity of propolis against postharvest disease agent Penicillium digitatum. Asian Journal of Chemistry. 20: 4823-4830.
Temiz, A., A. S. Mumcu, A. Ö. Tüylü, K. Sorkun, and B. Salih. 2013. Antifungal activity of propolis samples collected from different geographical regions of Turkey against two food-related mold, Aspergillus versicolor and Penicillium aurantiogriseum. GIDA-The Journal of Food. 38: 135-142.
Xu, X., R. Pu, Y. Li, Z. Wu, C. Li, X. Miao, and W. Yang. 2019. Chemical compositions of propolis from China and the United States and their antimicrobial activities against Penicillium notatum. Molecules. 24: 3576.
Yang, S., L. Peng, Y. Cheng, C. Feng, and P. Siyi. 2010. Control of citrus green and blue molds by Chinese propolis. Food Science and Biotechnology. 19: 1303–1308.
