Effects of culture media, sucrose and chitosan concentrations on Dendrobium palpebrae Lindl. micropropagation

Main Article Content

Soontreeya Kalawong
Panuwat Yimyong
Suphat Rittirat
Sakulrat Suwanno
Apiradee Siangsuepchart

Abstract

The purpose of this research was to establish method for the effective propagation and plant survival of Dendrobium palpebrae Lindl. The evaluated parameters included kinds of basal media, sucrose concentrations and chitosan. Protocorms were cultured on half strength MS medium (½ MS) (Murashige and Skoog), VW medium (Vacin and Went) and ND medium with 0.2 % sucrose (New Dogashima medium; Tokuhara and Mii) and 150 ml coconut water and 7.5 g/L agar. After 50 days of culture, VW medium gave the highest protocorm number (2.11±0.30 protocorms), plant height (1.51±0.15 mm.) and leaf number (3.52±0.37 leaves). In addition, sucrose concentrations were improved on protocorm number and plant growth of orchid. These results shown that VW medium with 7 % sucrose gave the highest protocorm number at 3.92±0.38 protocorms, plant height at 2.85±0.26 mm., leaf number at 4.91±0.10 leaves and root number at 3.55±0.24 roots, significantly difference at the confidence level (P≤0.01). For chitosan treatments, medium with low concentrations at 10% of chitosan gave the better result in root length and survival rate than medium without chitosan.

Article Details

How to Cite
Kalawong, S. ., Yimyong, P. ., Rittirat, S. ., Suwanno, S. ., & Siangsuepchart , A. . (2020). Effects of culture media, sucrose and chitosan concentrations on Dendrobium palpebrae Lindl. micropropagation. Khon Kaen Agriculture Journal, 48(2), 395–404. retrieved from https://li01.tci-thaijo.org/index.php/agkasetkaj/article/view/251219
Section
บทความวิจัย (research article)

References

ไซนีย๊ะ สะมาลา, พลวัต ภัทรกุลพิสุทธิ, และสุรีรัตน์ เย็นช้อน. 2558. การขยายพันธุ์กล้วยไม้สิงโตฟันจักภายใต้สภาวะปลอดเชื้อ. แก่นเกษตร, 43: 277-284.

ไซนีย๊ะ สะมาลา, วินิจชัย พลเดช, ครรชิต ธรรมศิริ, ศศิกานต์ ประสงค์สม, และ ฐกฤต อิ่มสมบรูณ์. 2559. ผลของ BA และน้ำมะพร้าวต่อการเพิ่มปริมาณยอดของกล้วยไม้กะเรกะร่อนด้ามข้าว. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์, 3: 52-56.

นฤมล ธนานันต์. 2557. การประเมินความสัมพันธ์ทางพันธุ์กรรมของกล้วยไม้สกุลหวายกลุ่มเอื้องสายด้วยเครื่องหมาย แฮตอาร์ดีพี. วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 22: 99-108.


นุชรัฐ บาลลา และอัญชลี จาละ. 2553. การเพิ่มจำนวนกล้วยไม้เอื้องเงินหลวงโดยการตัดแบ่งโปรโตคอร์ม. ใน: การประชุมวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 48 วันที่ 3-5 กุมภาพันธ์ 2553 มหาวิทยาลัย เกษตรศาสตร์.

พรทิพย์ วงศ์แก้ว และศุภลักษณ์ สิงหบุตร. 2548. การศึกษาประสิทธิภาพของไคโตซานในการยับยั้งเชื้อแบคทีเรียและสาเหตุโรคสำคัญทางเศรษฐกิจของพืช. ปทุมธานี: ศูนย์เทคโนโลยีโลหะและวัสดุแห่งชาติ สำนักงานพัฒนาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งชาติ. ปทุมธานี.

ภาวดี เมธะดานนท์. 2544. ความรู้เกี่ยวกับไคติน–ไคโตซาน. ปทุมธานี: ศูนย์เทคโนโลยีโลหะและวัสดุแห่งชาติ. สำนักงานพัฒนาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งชาติ. ปทุมธานี. 10 หน้า.

วันฟิรฮาน บินยามะ, รอยฮัน หะมะ, และสุภาวดี รามสูตร. 2557. ผลของสูตรอาหารต่อการเจริญเติบโตของกล้วยไม้เอื้องไอยเรศ. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์, 1: 20-24.

วุฒิชัย ฤทธิ, บุญสนอง ช่วยแก้ว, ปรียาภรณ์ พรหมบางญวน, และศุภลักษณ์ ทักษิน. 2559. ผลของไคโตซานต่อการเจริญเติบโตและพัฒนาของต้นอ่อนเอื้องรงรอง. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์, 3: 8-13.

ศุภาวีร์ แสงจันทร์จิรเดช, และจักรพงศ์ แท่งทอง. 2558. การเพาะเมล็ดเอื้องดอกมะขามในสภาพปลอดเชื้อ. อุบลราชธานี: คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยราชภัฏอุบลราชธานี. อุบลราชธานี.

ศิริลักษณ์ เจริญดี. 2554. การอนุรักษ์และการขยายพันธุ์กล้วยไม้เอื้องเงินหลวงโดยวิธีเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. กรุงเทพฯ: มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์.

สมพร ประเสริฐส่งกุล. 2555. การใช้ไคโตซานในการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช. วารสารราชภัฏยะลา, 7: 125-134.

สมพร ประเสริฐส่งสกุล และหาพิส ปุโรง. 2557. ผลของไคโตซานต่อการเจริญเติบโตของกล้วยไม้เอื้องเงินหลวงในหลอดทดลอง. วารสารวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยขอนแก่น. 42: 127-134.

สุภาวดี รามสูตร, ปรีดา บุญเวศน์, และวริยา นวลนุช. 2558. ผลของสูตรอาหารต่อการเจริญเติบโตของกล้วยไม้เอื้องกุหลาบกระเป๋าปิดในหลอดทดลอง. วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์, 2: 11-14.

อบฉันท์ ไทยทอง. 2552. กล้วยไม้เมืองไทย. พิมพ์ครั้งที่ 16. กรุงเทพฯ: บ้านและสวน. กรุงเทพฯ. 214 หน้า.

อนุรักษ์ สันป่าเป้า. 2561. ประสิทธิภาพของไคโตซานต่อการควบคุมโรคใบจุดของต้นกล้าปาล์มน้ำมัน. แก่นเกษตร, 46:1087-1091.

อาทิตยา ชายคีรี และวราภรณ์ ฉุยฉาย. 2560. ผลของสูตรอาหารต่อการเจริญเติบโตของกะเรกะร่อนปากเป็ดในสภาพปลอดเชื้อและผลของปุ๋ยในการอนุบาลหลังออกปลูก. แก่นเกษตร, 45:1197-1202.

Boonkerd, N., S. Chandrkrachang and W.F. Stevens. 1996. Effect of chitin on nodulation and N2 fixation rhizobia-soybean symbiosis, chitin and chitosan. pp. 183-187. In: Proceeding of the second Asia Pacific Symposium, 21-23 November 1996. Bioprocess Technology Program, Asian Institue of Technology, Bangkok, Thailand.

Johnson, M. and N. Janakiraman. 2013. Phytochemical and TLC studies on stem and leaves of the orchid Dendrobium panduratum subsp. villosum Gopalan and A. N. Henry. Indian Journal of Natural Products and Resources, 4: 250–254.

Krasimira, T. and K. Georgina. 2014. The effect of sucrose concentration on in vitro callogenesis of golden root–endangered medicinal plant. Scientific Bulletin Series F. Biotechnologies. 18: 77-82.

Letham, D. S. 1973. Cytokinin from Zea mays. Phytochemistry, 12: 2445-2455.

Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15: 473-497.

Napat, K., M. Chawanphat, T. Wuttinont, K. Virunh, L. Kittisak, R. Pornchai and S. Boonchoo. 2018. A new phenanthrene dimer from Dendrobium palpebrae. Asian Natural Products Research, 25: 1-7.

Prajapati, Ch.N. and N.M. Patel. 2013. Physico-Chemical and Phytochemical Evaluation of Dendrobium macraei Roots. International Journal of Research in Pharmaceutical and Biomedical Sciences, 4: 75–80.

Pornpienpakdee, P., R. Pichyangkura, S. Chadchawan, and P. Limpanavech. 2006. Chitosan effects on Dendrobium ‘Eiskul’ protocorm-like body production. pp 1-3. In: Proceeding of the 31st Congress on Science and Technology of Thailand, 18-20 October 2005, Suranaree University of Technology, Thailand

Suphat, R., T. Kanchit, and T. Sompong. 2012. Effect of media and sucrose concentrations with or without activated charcoal on the plantlet growth of P. cornu-cervi (Breda) Blume & Rchb. f. Journal of Agricultural Technology, 8: 2077-2087.

Shafazila, T. S., M. Pat Lee, T.S. Lee Kong Hung, P.Sh. Lee and L. Hung. 2010. Radical Scavenging Activities of Extract and Solvent Partition Fractions from Dendrobium Sonia “Red Bom” Flower. IEEE International Conference on Science and Social Research, 978: 762–765.

Tapash, K.B. and Md.M. Rahman. 2017. In vitro seed germination and flowering of Dendrobium palpebrae Lindl. orchid. Journal of Global Biosciences, 6: 4748-4757.

Tokuhara, K. and M. Mii. 1993. Micropropagation of Phalaenopsisand Doritaenopsisby culturing shoot tips of flower stalk buds. Plant Cell Report, 13: 7–11.

Vacin, E. and F. Went. 1949. Some pH change in nutrient solution. Botanic Gardens, Conservation News, 110: 605–613.

Van, O.J., M.E. Conklin and A.F. Blakeslee. 1941. Factors in coconut milk essential for growth of development of very young Datura embryo. Science, 94: 350-351.

Yoon, S.H., J.K. Lee, S.Y. Nam, E.Y. Hong, K.Y. Paek and S.W. Son. 2016. Effects of altering medium strength and sucrose concentration on in vitro germination and seedling growth of Cypripedium macranthos Sw. Journal Plant Biotechnology, 43: 132–137.

Zhou, X.M., C.J. Zheng, J.T. Wu and G.Y. Chen. 2017. A new phenolic glycoside from the stem of Dendrobium nobile. Journal Natural Product Research, 1042-1046.