Effect of polymorphisms in cGH, IGF-I, VIPR-1 and PRL genes on growth traits in Khaw Khum Koon chicken
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
This study aimed to investigate the genotypic patterns of the cGH, IGF-I, PRL, and VIPR-1 genes and their association with body weight, average daily gain, breast circumference and breast width in 511 Khaw Khum Koon chickens. Genetic variation of the cGH, IGF-I, and VIPR-1 genes was analyzed using the PCR-RFLP, and PRL using AS-PCR technique, the association analysis was conducted using the Proc GLM procedure. The results showed the genotype frequencies of the cGH gene were 0.098 (AA), (0.528) AG, (0.378) GG, for the IGF-I gene (0.235) AA, (0.485) AC, (0.280) CC, for the VIPR-1 gene (0.229) CC, (0.148) CT, (0.623) TT, for the PRL gene (0.008) II, (0.104) ID, (0.888). Association analysis revealed significant relationships (P<0.05) between the genotypes of cGH, IGF-I, and PRL genes and growth traits in Khaw Khum Koon chickens. For the cGH gene, chickens with the AA genotype had the highest birth weight (39.51 ± 0.85 g), compared to AG (39.02 ± 0.69 g) and GG (37.90 ± 0.71 g). For the IGF-I gene, chickens with the AC genotype had the highest average body weight, breast circumference, and average daily gain at 10 weeks (1,843.46 ± 40.02 g, 28.93 ± 0.42 cm, and 25.62 ± 0.34 g), compared to AA (1,814.42 ± 44.26 g, 28.31 ± 0.47 cm, and 25.28 ± 0.42 g) and CC (1,748.52 ± 43.17 g, 28.31 ± 0.46 cm, and 24.32 ± 0.38 g). For the PRL gene, chickens with the ID genotype had the highest average body weights at 6 and 8 weeks (966.71 ± 40.32 g and 1,537.79 ± 56.86 g), compared to the DD genotype (825.41 ± 16.48 g and 1,388.15 ± 23.25 g). However, no significant association (P>0.05) was found between the genotypes of the VIPR-1 gene and growth traits in Khaw Khum Koon chickens.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
ทองสา บัวสุข, มนต์ชัย ดวงจินดา, ยุพิน ผาสุข และสจี กัณหาเรียง. 2557. รูปแบบของยีน cGH, IGF-1, ApoB2, ApoVLDL-II และ FASN กับน้ำหนักตัวและระดับคอเลสเตอรอลในพลาสมาของไก่พื้นเมืองไทยลูกผสม. แก่นเกษตร. 42: 357-368.
นิกร ปรีชา, รังสรรค์ เจริญสุข, ทศพร อินเจริญ, สนธยา นุ่มท้วม, นิทัศน์ วิชาสิทธิ์ และธิติมา เพ็ชรคง. 2560. ความหลากหลายทางพันธุกรรมของยีน cGH, MC5R, IGFBP2 และ IGF-1 และความสัมพันธ์กับลักษณะการเจริญเติบโตในไก่เล็กฮอร์นขาวและโรดไอร์แลนด์แดง. แก่นเกษตร. 45: 783-789.
บัญญัติ เหล่าไพบูลย์. 2561. “ไก่ไร้เก๊าท์” ผลงานวิจัย ม.ขอนแก่น ยกระดับขึ้นพรีเมี่ยมฟูด กินแล้วไม่เป็นเก๊าท์. แหล่งข้อมูล: https://www.77kaoded.com/content/70412. ค้นเมื่อ 26 พฤศจิกายน 2568.
พรทิวา แก้วนาเคียน. 2559. การแสดงออกของยีน Growth hormone และยีน Insulin-like growth factor-I และการเกิด Heterotic effect ของลักษณะการเจริญเติบโตในไก่โคราช. นครราชสีมา: มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีสุรนารี.
ศรีนวล คณานิตย์, มนต์ชัย ดวงจินดา, บัญญัติ เหล่าไพบูลย์, และ ปรัชญาพร เอกบุตร. 2553. ความหลากหลายทางพันธุกรรมของยีน Vasoactive Intestinal Peptide Receptor-1 (VIPR-1) ในไก่ชี ไก่ประดู่ และไก่เล็กฮอร์น. แก่นเกษตร. 38: 85-89.
สุกัญญา เจริญศิลป์, มนต์ชัย ดวงจินดา, สุภร กตเวทิน และพรรณวดี โสพรรณรัตน์. 2555. การตรวจหาเครื่องหมายพันธุกรรมที่สัมพันธ์กับลักษณะการให้ผลผลิตไข่ ในไก่พื้นเมืองไทยพันธุ์ประดู่หางดำและพันธุ์ชี. แก่นเกษตร. 40: 257-268.
สำนักงานเลขานุการของคณะกรรมการยุทธศาสตร์ชาติ, สำนักงานคณะกรรมการพัฒนาการเศรษฐกิจและสังคมแห่งชาติ. 2561. ยุทธศาสตร์ชาติ. แหล่งข้อมูล: https://www.nesdb.go.th/download/document/SAC/NS_SumPlanOct2018.pdf. ค้นเมื่อ 15 ธันวาคม 2568.
อนุวัฒน์ จันดามุก. 2563. การศึกษาเครื่องหมายพันธุกรรมที่เกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและการสืบพันธุ์ในพ่อแม่พันธุ์ไก่ไข่มุกอีสาน 2. ขอนแก่น: มหาวิทยาลัยขอนแก่น.
อนุวัฒน์ จันดามุก และสจี กัณหาเรียง. 2565. ผลของรูปแบบยีน cGH, IGF-I, VIPR-1 และ PRL ต่อลักษณะการสืบพันธุ์และการให้ผลผลิตไข่ในไก่พื้นเมืองลูกผสม. แก่นเกษตร. 50: 481-492.
Bekele, F., T. Ådnoy, H. M. Gjoen, J. Kathle, and G. Abebe. 2010. Production performance of dual purpose crosses of two indigenous with two exotic chicken breeds in sub-tropical environment. International Journal of Poultry Science. 9: 702-710.
Chaiseha, Y., O. M. Youngren, and M. E. El Halawani. 2004. Expression of vasoactive intestinal peptide receptor messenger RNA in the hypothalamus and pituitary throughout the turkey reproductive cycle. Biology of Reproduction. 70: 593-599.
Cui, J. X., H. L. Du, Y. Liang, X. M. Deng, N. Li, and X. Q. Zhang. 2006. Association of polymorphism in the promoter region of chicken prolactin with egg production. Journal of Poultry Science. 85: 26-31.
Dekkers, J. C. M. 2004. Commercial application of marker-and gene-assisted selection in livestock: Strategies and lessons. Journal of Animal Science. 82: E313-E328.
Falconer, D. S. 1967. Introduction to Quantitative Genetics. New York: Ronald Press.
Goodwin, W., L. Adrian, and H. Sibte. 2007. An Introduction to Forensic Genetics. John Wiley and Sons Ltd, Oxford.
Jaturasitha, S., T. Srikanchai, M. Kreuzer, and M. Wicke. 2008. Differences in carcass and meat characteristics between chicken indigenous to northern Thailand (Black-boned and Thai native) and imported extensive breeds (Bresse and Rhode Island Red). Journal of Poultry Science. 87: 160-169.
Jiang, R. S., L. L. Zhang, Z. Y. Geng, T. Yang, and S. S. Zhang. 2009. Single nucleotide polymorphisms in the 5’-flanking region of the prolactin gene and the association with reproduction traits in geese. South African Journal of Animal Science. 39: 83-87.
Li, C. Y., and H. Li. 2006. Association of MC4R gene polymorphisms with growth and body composition traits in chicken. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. 19: 763-768.
Lopez, K. P., M. W. Schilling, and A. Corzo. 2011. Broiler genetic strain and sex effects on meat characteristics. Poultry Science. 90: 1105-1111.
Ngu, N. T., N. H. Xuan, C. T. Vu, N. T. An, N. T. Dung, and N. T. H. Nhan. 2015. Effects of genetic polymorphisms on egg production in indigenous noi chicken. Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences. 3: 487-493.
Nguyen, A. T. L., S. Kunhareang, and M. Duangjinda. 2015. Association of chicken growth hormones and insulin-like growth factor gene polymorphisms with growth performance and carcass traits in Thai broilers. Asian- Australasian Journal of Animal Sciences. 28: 1686-1695.
Nie, Q., B. Sun, D. Zhang, C. Luo, N. A. Ishag, M. Lei, G. Yang, and X. Zhang. 2005. High diversity of the chicken growth hormone gene and effects on growth and carcass traits. Journal of Heredity. 96: 698-703.
Patbandha, T. K., D. D. Garg, S. Marandi, D. G. Vaghamashi, S. S. Patil, and H. H. Savsani. 2017. Effect of chick weight and morphometric traits on growth performance of coloured broiler chicken. Journal of Entomology and Zoology Studies. 5: 1278-1281.
Promwatee, N., B. Laopaiboon, T. Vongpralub, Y. Phasuk, S. Kunhareang, W. Boonkum, and M. Duangjinda. 2013. Insulin-like growth factor I gene polymorphism associated with growth and carcass traits in Thai synthetic chickens. Genetics and Molecular Research. 12: 4332-4341.
SAS. 1998. User’s Guide: V.6.12. SAS Institute Inc., Cary, NC.
Saxena, V. K., A. K. Sachdev, R. Gopal, and A. B. Pramod. 2009. Roles of important candidate gene on broiler meat quality. World's Poultry Science Journal. 65: 37-50.
Tarachai, P. 2017. Poultry production: Broiler raising. Available: http://www.as.mju.ac.th/E-Book/t.pdf. Accessed Dec.16, 2025.
Xu, H. P., H. Zeng, D. X. Zhang, X. L. Jia, C. L. Luo, and M. X. Fang. 2011. Polymorphisms associated with egg number at 300 days of age in chickens. Genetics and Molecular Research Journal. 10: 2279-2289.
Zhou, H., A. D. Mitchell, J. P. McMurtry, C. M. Ashwell, and S. J. Lamont. 2005. Insulin-like growth factor-I gene polymorphism associations with growth, body composition, skeleton integrity, and metabolic traits in chickens. Journal of Poultry Science. 82: 9-16.
Zhou, M., F. F. Liang, Y. S. Rao, H. Zeng, D. X. Zhang, and X. Q. Zhang. 2008. Association of twelve polymorphisms of the VIPR-1 gene with chicken early egg production traits. Chinese Journal of Animal and Veterinary Sciences. 39: 1147-1152.
