การใช้ข้าวโพดร่วมกับสารประสานเม็ดทดแทนแป้งสาลีในอาหารของกุ้งขาว (<I>Litopenaeus vannamei</I>) ต่อสมรรถภาพการเติบโต ภูมิคุ้มกัน และการย่อยได้ของอาหาร

Main Article Content

ยิ่งยศ โสมย์ไพศาลศิลป์
ศรีน้อย ชุ่มคำ
ศุภวิทย์ ไตรวุฒานนท์
อรพินท์ จินตสถาพร

บทคัดย่อ

การศึกษาการใช้ข้าวโพดร่วมกับสารประสานเม็ดทดแทนแป้งสาลีในอาหารต่อสมรรถภาพการเติบโตและภูมิคุ้มกันของกุ้งขาว (Litopenaeus vannamei) วางแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ (CRD) จำนวน 3 กลุ่มทดลองๆ ละ 4 ซ้ำ คือ  อาหารสูตรควบคุมข้าวโพดทดแทนแป้งสาลีที่ระดับ 0% ร่วมกับสารประสานเม็ดที่ระดับ 0% (T1) อาหารสูตรข้าวโพดทดแทนแป้งสาลีที่ระดับ 50% ร่วมกับสารประสานเม็ดที่ระดับ 0% (T2) และอาหารสูตรข้าวโพดทดแทนแป้งสาลีที่ระดับ 50% ร่วมกับสารประสานเม็ดที่ระดับ 0.4% (T3) ซึ่งสารประสานเม็ดที่ใช้ คือ สารลิกโนซัลโฟเนตผสมกับกัวกัม ผลการศึกษาพบว่า กลุ่มที่ใช้อาหาร T2 มีอัตราการเปลี่ยนอาหารเป็นน้ำหนัก (FCR) เพิ่มมากขึ้นอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P < 0.05) และมีอัตราการเติบโตเฉลี่ยต่อวัน (ADG) อัตราการเติบโตจำเพาะ (SGR) ลดน้อยลงอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ (P < 0.01) แต่กลุ่มที่ใช้อาหาร T3 นั้น สมรรถภาพการเติบโตมีความแตกต่างอย่างไม่มีนัยสำคัญทางสถิติ (P > 0.05)  กับอาหารสูตรควบคุม T1 นอกจากนี้พบว่า กลุ่มที่ใช้อาหาร T2 และกลุ่มที่ใช้อาหาร T3 มีปริมาณโปรตีนในน้ำเลือดเพิ่มมากขึ้นอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P < 0.05) และปริมาณซูเปอร์ออกไซด์ดิสมิวเดสเพิ่มมากขึ้นอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ (P < 0.01) สีกุ้งขาวในกลุ่มที่ใช้อาหาร T2 และกลุ่มที่ใช้อาหาร T3 มีแนวโน้มสีแดงกว่ากลุ่มที่ได้รับอาหารสูตรควบคุม T1  (P = 0.052) และค่าการย่อยได้ของโปรตีนและคาร์โบไฮเดรตในห้องปฏิบัติการของอาหารกุ้งทั้ง 3 สูตรมีความแตกต่างอย่างไม่มีนัยสำคัญทางสถิติ (P > 0.05) ดังนั้นสามารถใช้ข้าวโพดทดแทนแป้งสาลีที่ระดับ 50% ร่วมกับสารประสานเม็ดที่ระดับ 0.4% ได้ โดยไม่ส่งผลต่อสมรรถภาพการเติบโตของกุ้งขาว

Article Details

บท
บทความวิจัย

References

Ali, S.A., C. Gopal, J.V. Ramana and A.R. Nazer 2005. Effect of different sources of starch and guar gum on aqua stability of shrimp feed pellets. Indian Journal of Fisheries 52(3): 301-305.

Alkoei, A. S., S.M.A. Jalali, S.A.H. Jalali and F. Kheiri 2024. Effects of dietary corn and protein levels on physical properties of extruded feed pellets and growth performance of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of the World Aquaculture Society 55(1): 125-148.

AOAC. 2000. Animal feed. pp. 1-54. In: W. Horwitz (ed.). Official Methods of Analysis of AOAC International. 17th ed. Association of Official Analytical Chemists (AOAC) International, Gaithersburg, Maryland.

Apper-Bossard, E., A. Feneuil, A. Wagner and F. Respondek. 2013. Use of vital wheat gluten in aquaculture feeds. Aquatic Biosystems 9: 21, doi: 10.1186/2046-9063-9-21

Bampidis, V., G. Azimonti, M. de Lourdes Bastos, H. Christensen, B. Dusemund, M. Kouba, M.K. Durjava, M. Lopez-Alonso, S.L. Puente, F. Marcon, B. Mayo, A. Pechova, M. Petkova, F. Ramos, Y. Sanz, R.E. Villa, R. Woutersen, G. Aquilina, G. Bories, J. Gropp, C. Nebbia, A. Finizio, A. Focks, I. Teodorovic, M.L. Innocenti and J. Tarres-Call. 2020. Safety of lignosulphonate for all animal species. EFSA Journal 18(2): e06000, doi: 10.2903/j.efsa.2020.6000.

Bedford, M.R. and H.L. Classen. 1993. An in vitro assay for prediction of broiler intestinal viscosity and growth when fed rye-based diets in the presence of exogenous enzymes. Poultry Science 72(1): 137-143.

Corey, A.M., K.G.S. Wamsley, T.S. Winowiski and J.S. Moritz. 2014. Effects of calcium lignosulfonate, mixer-added fat, and feed form on feed manufacture and broiler performance. Journal of Applied Poultry Research 23(3): 418-428.

Eid, A.E. and A.J. Matty. 1989. A simple in vitro method for measuring protein digestibility. Aquaculture 79(1-4): 111-119.

Ellis, A.E. 1990. Lysozyme assays. pp. 101-103. In: J.S. Stolen, T.C. Fletcher, D.P. Anderson, B.S. Roberson and W.B. Van Muiswinkel (eds.). Techniques in Fish Immunology. SOS Publications, Fair Haven.

Farmanfarmaian, A., T. Lauterio and M. Ibe. 1982. Improvement of the stability of commercial feed pellets for the giant shrimp (Macrobrachium rosenbergii). Aquaculture 27(1): 29-41.

Hahor, W., K. Thongprajukaew, N. Nuntapong, S. Saekhow, K. Rungruangsak-Torrissen, T. Dumrongrittamatt and A. Phonchai. 2022. Partial pretreatment of ingredient mixture effectively improved feed chemical composition, physicochemical properties and in vitro digestibility. Animal Feed Science and Technology 285: 115216, doi: 10.1016/j.anifeedsci.2022.115216.

Hemre, G.-I. and D.-F. Deng. 2015. Carbohydrates. pp. 95-110. In: C.-S. Lee, C. Lim, D. M. Gatlin III and C.D. Webster (eds.). Dietary Nutrients, Additives and Fish Health. John Wiley and Sons, Hoboken, New Jersey.

Jussila, J. and L.H. Evans. 1998. Growth and condition of marron Cherax tenuimanus fed pelleted diets of different stability. Aquaculture Nutrition 4(3): 143-149.

Kanto, U., S. Juttupornpong and W. Jintanavich. 2008. Cassava feed formula for pigs, poultry, cattle, dairy cattle and fish. Animal Nutrition Research and Development Center of Kasetsart University, Nakhon Pathom. 56 p. (in Thai)

Lessard, M. and G.J. Brisson. 1987. Effect of a Lactobacillus fermentation product on growth, immune response and fecal enzyme activity in weaned pigs. Canadian Journal of Animal Science 67(2): 509-516.

Lowry, O.H., N.J. Rosebrough, A.L. Farr and R.J. Randall. 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry 193(1): 265-275.

Lund, D. and K.J. Lorenz. 1984. Influence of time, temperature, moisture, ingredients, and processing conditions on starch gelatinization. C R C Critical Reviews in Food Science and Nutrition 20(4): 249-273.

Macedo, E.S., A.V. Urbich, J.S.T. Nakamura, T.P. da Cruz, P.A.P. Panaczevicz, B. Wernick, V.R.B. Furuya, L.E. Pezzato, D.M. Gatlin Iii and W.M. Furuya. 2023. Effect of xylanase and β-glucanase on growth performance, activity of digestive enzymes, digestibility, and microbiome diversity of juvenile Nile tilapia fed soybean meal and/or sorghum distillers dried grains with solubles-based diets. Aquaculture 565: 739134, doi: 10.1016/j.aquaculture.2022.739134.

Machado, M.F., F.A.R. Oliveira, V. Gekas and R.P. Singh. 1998. Kinetics of moisture uptake and soluble-solids loss by puffed breakfast cereals immersed in water. International Journal of Food Science & Technology 33(3): 225-237.

Maugle, P.D., O. Deshimaru, T. Katayama and K.L. Simpson. 1982. Characteristics of amylase and protease of the shrimp Penaeus japonicus. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries 48(12): 1753-1757.

Miller, G.L. 1959. Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Analytical chemistry 31(3): 426-428.

Nascimento, A.A., E.S. de Macedo, G.S. Gonçalves, T.P. da Cruz, B. Wernick, V.R.B. Furuya and W.M. Furuya. 2023. Xylanase and β-glucanase in tandem improve performance, digestive enzymes activity and digestibility in juvenile Nile tilapia fed corn distillers’ dried grains with solubles-added diet. Animal Feed Science and Technology 306: 115816, doi: 10.1016/j.anifeedsci.2023.115816.

Nascimento, T.M.T., H. Buzollo, , L.C.G. de Sandre, L.M. Neira, E.G. Abimorad and D.J. Carneiro. 2020. Apparent digestibility coefficients for amino acids of feed ingredients in tambaqui (Colossoma macropomum) diets. Revista Brasileira de Zootecnia 49: e20190032.

National Research Council. 1993. Nutrient Requirements of Fish. National Academies Press, Washington, DC. 114 p.

Nimse, S.B. and D. Pal. 2015. Free radicals, natural antioxidants, and their reaction mechanisms. RSC Advances 5(35): 27986-28006.

Niu, J., H.-Z. Lin, S.-G. Jiang, X. Chen, K.-C. Wu, L.-X. Tian and Y.-J. Liu. 2012. Effect of seven carbohydrate sources on juvenile Penaeus monodon growth performance, nutrient utilization efficiency and hepatopancreas enzyme activities of 6-phosphogluconate dehydrogenase, hexokinase and amylase. Animal Feed Science and Technology 174(1-2): 86-95.

Novriadi, R., E. Suwendi and R. Tan. 2022. The use of corn distiller’s dried grains with solubles as a protein source in practical diets for Pacific white leg shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture Reports 25: 101209, doi: 10.1016/j.aqrep.2022.101209.

Novriadi, R., I. Istiqomah, A. Isnansetyo, D. Balk, M. Jolly-Breithaupt and S. Davies. 2023. Corn fermented protein in production diets for pacific white legged shrimp Litopenaeus vannamei: Improved growth performance, health status and resistance to infection. Aquaculture Reports 30: 101571, doi: 10.1016/j.aqrep.2023.101571.

Obaldo, L.G., S. Divakaran and A.G. Tacon. 2002. Method for determining the physical stability of shrimp feeds in water. Aquaculture Research 33(5): 369-377.

Parisenti, J., L.H. Beirao, V.L.C.G. Tramonte, F. Ourique, C.C. da Silveira Brito and C.C. Moreira. 2011. Preference ranking of colour in raw and cooked shrimps. International Journal of Food Science & Technology 46(12): 2558-2561.

Plummer, D.T. 1988. An Introduction to Practical Biochemistry. 3rd ed. Tata McGraw Hill Publishing Co. Ltd., New Delhi. 292 p.

Romano, N. and V. Kumar. 2019. Starch gelatinization on the physical characteristics of aquafeeds and subsequent implications to the productivity in farmed aquatic animals. Aquaculture 11(4): 1271-1284.

Rossi, L.T., A.R. Sharpen, J.A. Zimmermann, C.R. Olivero, M.V. Zbrun, L.S. Frizzo, M.L. Signorini, C. Bacchetta, R.E. Cian, J. Cazenave, L.P. Soto and S.R. Drago. 2020. Intestinal microbiota modulation in juvenile Pacu (Piaractus mesopotamicus) by supplementation with Pyropia columbina and β-carotene. Aquaculture International 28(3): 1001-1016.

Saleh, A.A., A.M. Elnagar, Y.Z. Eid, T.A. Ebeid and K.A. Amber. 2021. Effect of feeding wheat middlings and calcium lignosulfonate as pellet binders on pellet quality growth performance and lipid peroxidation in broiler chickens. Veterinary Medicine and Science 7(1): 194-203.

Silva, B.C., H. Nolasco-Soria, F. Magallon-Barajas, R. Civera-Cerecedo, R. Casillas-Hernandez and W. Seiffert. 2016. Improved digestion and initial performance of whiteleg shrimp using organic salt supplements. Aquaculture Nutrition 22(5): 997-1005.

Smith, V.J. and K. Soderhall. 1991. A comparison of phenoloxidase activity in the blood of marine invertebrates. Developmental & Comparative Immunology 15(4): 251-261.

Song, G., Y. Zhao, J. Lu, Z. Liu, J. Quan and L. Zhu. 2024. Effects of astaxanthin on growth performance, gut structure, and intestinal microorganisms of Penaeus vannamei under microcystin-LR stress. Animals 14(1): 58, doi: 10.3390/ani14010058.

Supamattaya, K., J. Raungsri, S. Kiriratnikom and N. Suanyuk. 2000. Immune system in black tiger shrimp, Penaeus monodon Fabricius: VI. Effect of diseases on immuno-physiological function and blood components in black tiger shrimp (Penaeus monodon Fabricius). Songklanakarin Journal of Science and Technology 22(Suppl.): 615-621. (in Thai)

Swinkels, J.J.M. 1985. Composition and properties of commercial native starches. Starch 37(1): 1-5.

Thai Industrial Standards Institute (TISI). 1993. Thailand Industrial Standard for Prawn Feed (TIS 1198). Thai Industrial Standards Institute, Bangkok. 16 p. (in Thai)

Tiamiyu, L.O. and S.G. Solomon. 2012. Effects of different grain starches as feed binders for on-farm aqua-feeds. Global Journal of Pure and Applied Sciences 18(1&2): 19-23.

Ukeda, H., D. Kawana, S. Maeda and M. Sawamura. 1999. Spectrophotometric assay for superoxide dismutase based on the reduction of highly water-soluble tetrazolium salts by xanthine-xanthine oxidase. Bioscience, Biotechnology and Biochemistry 63(3): 485-488.

Wang, W., M. Liu, S. Fawzy, Y. Xue, M. Wu, X. Huang, G. Yi and Q. Lin. 2021. Effects of dietary Phaffia rhodozyma astaxanthin on growth performance, carotenoid analysis, biochemical and immune-physiological parameters, intestinal microbiota, and disease resistance in Penaeus monodon. Frontiers in Microbiology 12: 762689, doi: 10.3389/fmicb.2021.762689.

Wang, X., E. Li, C. Xu, J.G. Qin, S. Wang, X. Chen, Y. Cai, K. Chen, L. Gan, N. Yu, Z.-Y. Du and L. Chen. 2016. Growth, body composition, ammonia tolerance and hepatopancreas histology of white shrimp Litopenaeus vannamei fed diets containing different carbohydrate sources at low salinity. Aquaculture Research 47(6): 1932-1943.