Effect of Agitation and Aeration on the Growth of Aurantiochytrium sp. FIKU018 Fed-batch Cultured in Bioreactor ผลของอัตราการกวนและการให้อากาศต่อการเจริญเติบโตของ Aurantiochytrium sp. FIKU018 ที่เพาะเลี้ยงแบบเฟด-แบทช์ ในถังปฏิกรณ์ชีวภาพ

Main Article Content

เกศยา คำรังษี
เทพปัญญา เจริญรัตน์
ณฐินี สุวรรณสิงห์
สุเปญญา จิตตพันธ์

บทคัดย่อ

การกวนและการให้อากาศเป็นปัจจัยสำคัญที่มีผลต่อเซลล์และการเจริญเติบโตของเซลล์ที่เพาะเลี้ยงในถังปฏิกรณ์ชีวภาพ งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของอัตราการกวนและการให้อากาศต่อการเจริญเติบโตของ Aurantiochytrium sp. FIKU018 ที่เพาะเลี้ยงในถังปฏิกรณ์ชีวภาพ โดยเพาะเลี้ยง Aurantiochytrium sp. FIKU018 แบบเฟด-แบทช์ในถังปฏิกรณ์ชีวภาพขนาด 22 ลิตร ด้วยอาหาร GYP ในระยะแบทช์ และอาหาร GYP feed และ glucose feed ในช่วงเเฟด-แบทช์ ที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส ค่าความเป็นกรด-ด่าง 6.0 และแปรผันอัตราการกวนที่ 450-800 รอบต่อนาที และอัตราการให้อากาศ 0-1.5 วีวีเอ็ม เก็บตัวอย่างทุก 4 ชั่วโมง เพื่อตรวจวัดค่าการดูดกลืนแสง หาปริมาณน้ำหนักเซลล์แห้ง และวิเคราะห์ความเข้มข้นของน้ำตาลรีดิวซ์ พบว่าอัตราการกวนที่ 450 รอบต่อนาที ร่วมกับอัตราการให้อากาศที่เหมาะสมกับการเจริญเติบโตของเซลล์ ทำให้สามารถเพาะเลี้ยงเซลล์ในระบบเฟด-แบทช์ได้อย่างต่อเนื่องเป็นเวลา 64 ชั่วโมง โดยมีค่าอัตราการเจริญเติบโตจำเพาะเท่ากับ 0.21 ต่อชั่วโมง ค่าน้ำหนักเซลล์แห้งสูงสุดเท่ากับ 30.50±0.44 กรัมต่อลิตร และผลได้ของเซลล์จากสับสเทรตเมื่อสิ้นสุดกระบวนการเพาะเลี้ยงในระบบเฟด-แบทช์ด้วยอาหารเหลว glucose Feed เท่ากับ 0.45±0.05 กรัมเซลล์ต่อกรัมกลูโคส ซึ่งข้อมูลที่ได้จากการวิจัยนี้สามารถนำไปใช้เป็นข้อมูลพื้นฐานในการพัฒนากระบวนการเพาะเลี้ยง Aurantiochytrium sp. FIKU018 ในถังปฏิกรณ์เพื่อพัฒนาไปสู่ระดับอุตสาหกรรมต่อไป

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
คำรังษี เ., เจริญรัตน์ เ., สุวรรณสิงห์ ณ., & จิตตพันธ์ ส. (2021). Effect of Agitation and Aeration on the Growth of Aurantiochytrium sp. FIKU018 Fed-batch Cultured in Bioreactor ผลของอัตราการกวนและการให้อากาศต่อการเจริญเติบโตของ Aurantiochytrium sp. FIKU018 ที่เพาะเลี้ยงแบบเฟด-แบทช์ ในถังปฏิกรณ์ชีวภาพ. วารสารวิชชา มหาวิทยาลัยราชภัฏนครศรีธรรมราช, 40(1), 135–149. สืบค้น จาก https://li01.tci-thaijo.org/index.php/wichcha/article/view/250864
ประเภทบทความ
บทความวิจัย

เอกสารอ้างอิง

เทพปัญญา เจริญรัตน์ และวรสิทธิ์ โทจำปา. (2553). ปฏิบัติการเทคโนโลยีการหมัก. ปทุมธานี: โรงพิมพ์มหาวิทยาลัยธรรมศาสตร์.

Chang, G., Gao, N., Tian, G., Wu, Q., Chang, M. and Wang, X. (2013). Improvement of docosahexaenoic acid production on glycerol by Schizochytrium sp. S31 with constantly high oxygen transfer coefficient. Bioresource Technology, 142, 400-406.

Chatdumrong, W., Yongmanitchai, W., Limtong, S. and Worawattanamateekul, W. (2007). Optimization of docosahexaenoic acid (DHA) production and improvement of astaxanthin content in a mutant Schizochytrium limacinum isolated from mangrove forest in Thailand. Kasetsart Journal (Natural Science), 41(2), 324-334.

Chi, Z., Liu, Y., Frear, C. and Chen, S. (2009). Study of a two-stage growth of DHA-producing marine algae Schizochytrium limacinum SR21 with shifting dissolved oxygen level. Applied Microbiology Biotechnology, 81(6), 1141-1148.

Chin, H.J., Shen, T.F., Su, H.P. and Ding, S.T. (2006). Schizochytrium limacinum SR-21 as a source of docosahexaenoic acid: optimal growth and use as a dietary supplement for laying hens. Australian Journal of Agricultural Research, 57(1), 13-20.

Honda, D., Yokochi, T., Nakahara, T., Erata, M. and Higashihara, T. (1998). Schizochytrium limacinum sp. nov., a new thraustochytrid from a mangrove area in the west Pacific Ocean. Mycological Research, 102(4), 439-448.

Jakobsen, N.A., Aasen, M.I., Josefsen, D.K. and Strøm, R.A. (2008). Accumulation of docosahexaenoic acid-rich lipid in thraustochytrid Aurantiochytrium sp. strain T66: effects of N and P starvation and O2 limitation. Applied Microbiology Biotechnology, 80(2), 297-306.

Nagano, N., Taoka, Y., Honda, D. and Hayashi, M. (2009). Optimization of culture conditions of growth and docosahexaenoic acid production by a marine Thraustochytrid, Aurantiochytrium limacinum mh0186. Journal of Oleo Science, 58(12), 623-628.

Qu, L., Ji, J.X., Ren, J.L., Nie, K.Z., Feng, Y., Wu, J.W., Ouyang, K.P. and Huang, H. (2010). Enhancement of docosahexaenoic acid production by Schizochytrium sp. using a two-stage oxygen supply control strategy based on oxygen transfer coefficient. Letter in Applied Microbiology, 52(1), 22-27.

Raghukumar, S. (2008). Thraustochytrid marine protists: production of PUFAs and other emerging technologies. Marine Biotechnology, 10(6), 631-640.

Ren, J.L., Ji, J.X., Huang, H., Qu, L., Feng, Y., Tong, Q.Q. and Ouyang, K.P. (2010). Development of stepwise aeration control strategy for efficient docosahexaenoic acid production by Schizochytrium sp. Applied Microbiology Biotechnology, 87(5), 1649-1656.

Romeu-Nadal, M., Castellote, A.I., López-Sabater, M.C. (2008). Effect of cold storage on vitamins C and E and fatty acids in human milk. Food Chemistry, 106(1), 65-70.

Song, X., Zang, X. and Zhang, X. (2015). Production of high docosahexaenoic acid by Schizochytrium sp. using low-cost raw materials from food industry. Journal of Oleo Science, 64(2), 197-204.

Yaguchi T., Tanaka S., Yokochi T., Nakahara T., Higashihara T. (1997). Production of high yields of docosahexaenoic acid by Schizochytrium sp. strain SR21. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 74(11), 1431-1434.

Yokoyama, R. and Honda, D. (2007). Taxonomic rearrangement of the genus Schizochytrium sensu lato based onmorphology, chemotaxonomic characteristics, and 18S rRNA gene phylogeny (Thraustochytriaceae, Labyrinthulomycetes): emendation for Schizochytrium and erection of Aurantiochytrium and Oblongichytrium gen. nov. Mycoscience, 48(4), 199-211.

Zeng, Y., Ji, X.J, Lian, M., Ren, L.J., Jin, L.J, Ouyang, P.K. and Huang, H. (2011). Development of a temperature shift strategy for efficient docosahexaenoic acid production by a marine fungoid protist, Schizochytrium sp. HX-308. Applied Biochemistry and Biotechnology, 164(3), 249-255.