ผลของ NAA ร่วมกับ TDZ ต่อการชักนำให้เกิดต้นอ่อนในการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ พรรณไม้น้ำใบพายศรีลังกาสีน้ำตาล
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ใบพายศรีลังกาสีน้ำตาล เป็นพรรณไม้น้ำสวยงามสายพันธุ์ต่างประเทศที่สามารถขยายพันธุ์จนกลายเป็นพืชเศรษฐกิจที่มีมูลค่าการส่งออกเพิ่มสูงขึ้นอย่างต่อเนื่อง แต่ปริมาณยังไม่เพียงพอต่อความต้องการของตลาด จึงทำการศึกษาความเข้มข้นที่เหมาะสมของสารควบคุมการเจริญเติบโตต่อการชักนำให้เกิดต้นอ่อน โดยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อส่วนตายอดของใบพายศรีลังกาสีน้ำตาล ลงในอาหารกึ่งแข็งสูตร MS (Murashige and Skoog, 1962) ที่มีการเติมสารควบคุมการเจริญเติบโต 1-naphthaleneacetic acid (NAA) ความเข้มข้น 0, 0.1, 0.2 และ 0.3 mg/L ร่วมกับ thidiazuron (TDZ) ที่ความเข้มข้น 0, 1, 2 และ 3 mg/L เป็นระยะเวลา 6 สัปดาห์ พบว่าการใช้สารควบคุมการเจริญเติบโต NAA ที่ความเข้มข้น 0.1 mg/ L ร่วมกับ TDZ ความเข้มข้น 2 mg/ L มีความเหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตของเนื้อเยื่อใบพายศรีลังกาสีน้ำตาล โดยสามารถชักนำให้เกิดจำนวนต้นอ่อน (67.92±19.61 ต้น/ชิ้นเนื้อเยื่อเริ่มต้น) จำนวนใบ (67.42±19.46 ใบ/ชิ้นเนื้อเยื่อเริ่มต้น) และความสูงต้น (28.65±1.55 มิลลิเมตร/ต้น) เฉลี่ยมากที่สุดอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.05) การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อใบพายศรีลังกาสีน้ำตาลในอาหารสังเคราะห์ที่เหมาะสม จะสามารถเพิ่มปริมาณและเจริญเติบโตได้ดีภายในระยะเวลาที่สั้นลง ซึ่งเป็นการเพิ่มศักยภาพในการผลิตพรรณไม้น้ำให้ได้คุณภาพและทำให้สามารถเพิ่มมูลค่าของผลผลิตได้
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
วารสารเกษตรพระจอมเกล้า
References
Alawaadh, A. A., Dewir, Y. H., Alwihibi, M. S., Aldubai, A. A., El-Hendawy, S., & Naidoo, Y. (2020). Micropropagation of lacy tree philodendron (Philodendron bipinnatifidum Schott ex Endl.). HortScience, 55(3), 294-299.
ALdeen, A. M. T., & Abd El-Aal, M. S. (2021). Enhancement of Aglaonema commutatum propagation using thidiazuron and naphthalene acetic acid in Vitro. Lond. J. Med. Health Res, 21, 7-14.
Barna, K. S., & Wakhlu, A. K. (1995). Effects of thidiazuron on micropropagation of rose. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 31, 44–46.
Boyagoda, D. T. K., Jayamanne, S. C., & Herath, H. M. I. (2016). Development of micropropagation protocols for two different Cryptocoryne species in Sri Lanka (Cryptocoryne parva and Cryptocoryne xwillisii). In Proceedings of the 6' Research Symposium of Uwa Wellassa University, p. 3. UWU Publication.
Chouychai, W. (2009). Role of thidiazuron for plant tissue culture. Journal of Yala Rajabhat University, 4, 123-135. (in Thai).
Dewir, Y. H., Nurmansyah, N., Naidoo, Y., & Teixeira da Silva, J. A. (2018). Thidiazuron-induced abnormalities in plant tissue cultures. Plant Cell Rep, 37, 1451–1470.
El-Mahrouk, M. E., Dewir, Y. H., & Naidoo Y. (2016). Micropropagation and genetic fidelity of the regenerants of Aglaonema‘Valentine’ using randomly amplified polymorphic DNA. HortScience, 51, 398-402.
Han, B. H., & Park, B. M. (2008). In vitro micropropagation of Philodendron cannifolium. Journal of Plant Biotechnology, 35, 203-208.
Herath, H. M. I., Krishnarajah, S. A., & Wijesundara, D. S. A. (2008). Micropropagation of two endemic threatened Cryptocoryne species of Sri Lanka. Tropical Agricultural Research & Extension, 11, 19-24.
Jarassamrit, N. (1994). Plant Hormones and Plant Growth Regulators. Green Fence Publisher. (in Thai).
Kaveeta, R. (2002). Plant Tissue Culture: Principle and Techniques. Kasertsart University Publishing. (in Thai).
Klaocheed, S., Jehsu, W., Choojun, W., Thammasiri, K., Prasertsongskun, S., & Rittirat, S. (2020). Induction of direct shoot organogenesis from shoot tip explants of an ornamental aquatic plant, Cryptocoryne wendtii. Walailak Journal of Science and Technology (WJST), 17(4), 293-302.
Klomkamhaeng, C., Laohavisuti, N., & Jongput, B. (2019). Micropropagation of Anubias congensis by using thidiazuron (TDZ). King
Mongkut’s Agricultural Journal, 37(4), 642-647. (in Thai).
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiologia
Plantarum, 15, 473-497.
Pechkong, S., Sumanojitraporn, S., & Makkasap, C. (2010). Surface Sterilization Study and Growth Regulators Effect in Tissue Culture of Aquatic Plant Cryptocoryne albida. Aquatic Animal Genetics Research and Development Institute, Department of Fisheries. Technical Paper No. 9/2010. (in Thai).
Rodloy, A. (2020). Marketing and Production Management of Aquatic Plants in Thailand for Exported and Sustainable Use
of Resources. Inland Aquaculture Research and Development Division, Department of Fisheries, Technical Paper No.
/2020. (in Thai).
Soontornyatara, S., & Klammorn, P. (2020). Effect of different combinations of NAA and TDZ for shoot induction in vitro culture of
Aglaonema simplex (Blume) Blume. Acta Horticulturae, 1298, 485-490.
Stanly, C., Bhatt, A., & Keng, C. L. (2011). An efficient in vitro plantlet regeneration of Cryptocoryne wendtii and Cryptocoryne becketii through shoot tip culture. Acta Physiologiae Plantarum, 33, 619-624.
Techapinyawat, S. (1995). Plant Physiology. Green Fence Publisher. (in Thai).
Te-chato, S., Susanon, T., & Sontikun, Y. (2006). Cultivar explant type and culture medium influencing embryogenesis and organogenesis in Anthurium spp. Songklanakarin Journal of Science and Technology, 28, 717-722.