ผลของระดับความเข้มข้นคาเฟอีนและระยะเวลาการอุ่นที่แตกต่างกันต่อคุณภาพน้ำเชื้อพ่อพันธุ์สุกร จากการเก็บรักษา 3 วัน
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ในการศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของระดับความเข้มข้นของคาเฟอีนและระยะเวลาในการอุ่นน้ำเชื้อต่อคุณภาพน้ำเชื้อของพ่อพันธุ์สุกร โดยทำการรีดน้ำเชื้อจากพ่อพันธุ์สุกร 4 ตัว ตัวละ 3 ครั้ง แล้วเจือจางด้วยสารละลายเจือจางน้ำเชื้อ Beltsville Thawing Solution (BTS) และเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 17°C เป็นเวลา 3 วัน ออกแบบการทดลองแบบ Factorial in RCBD โดยมีปัจจัยคือระดับคาเฟอีน (0, 10 และ 100 µg/mL) และระยะเวลาอุ่นน้ำเชื้อที่ 37°C (5, 15 และ 30 นาที) ทำการประเมินคุณภาพน้ำเชื้อ ได้แก่ การเคลื่อนที่ ความผิดปกติ และจลศาสตร์การเคลื่อนที่ ผลการทดลองพบอิทธิพลร่วมระหว่างระดับคาเฟอีนและระยะเวลาอุ่นน้ำเชื้อมีต่อค่าการเคลื่อนที่ไปข้างหน้า (Progressive) และความผิดปกติที่มีหยดน้ำส่วนโคนหาง (Proximal Droplet) (P<0.05) โดยคาเฟอีนระดับ 100 µg/mL ส่งผลให้เปอร์เซ็นต์ Progressive และ Proximal Droplet สูงสุด (P<0.05) การอุ่นน้ำเชื้อเป็นเวลา 15 นาที เพิ่มค่า Progressive, ความผิดปกติบริเวณกึ่งกลางของอสุจิ (DMR) และ Proximal Droplet สูงสุด (P<0.05) ขณะที่การอุ่นน้ำเชื้อเป็นเวลา 5 นาที ให้ค่าการเคลื่อนที่โดยรวมสูงสุด (P<0.05) ด้านจลศาสตร์การเคลื่อนที่พบว่าระยะเวลาอุ่นมีผลต่อค่าความตรงของการเคลื่อนที่ (STR), ขนาดของการแกว่งของหัวอสุจิ (LIN), ความถี่ของการแกว่งหาง (BCF) และความแกว่งของการเคลื่อนที่ (WOB) (P<0.05) โดย 15 และ 30 นาที ให้ค่า STR และ BCF สูงกว่า 5 นาที ส่วนค่า LIN สูงสุดที่ 15 นาที และ WOB สูงสุดที่ 30 นาที (P<0.05) คาเฟอีนระดับ 100 µg/mL เพิ่มค่า Proximal Droplet และ ขนาดของการแกว่งของหัวอสุจิ (ALH) แต่ระดับ 0 µg/mL ให้ค่า BCF สูงที่สุด (P<0.05)
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
วารสารเกษตรพระจอมเกล้า
เอกสารอ้างอิง
Aitken, R. J., & Clarkson, J. S. (1987). Cellular basis of defective sperm function and its association with the genesis of reactive oxygen species by human spermatozoa. Journal of Reproduction and Fertility, 81(2), 459-469.
Aparicio, I. M., Garcia-Herreros, M., Gil, M. C., & Fernandez, J. L. (2005). Caffeine induces capacitation and acrosome reaction in boar spermatozoa. Journal of Andrology, 26(4), 578-586.
Borges, A. M., Pereira, R. J., & Andrade, A. F. (2017). The role of caffeine on mitochondrial function and sperm motility. Theriogenology, 98(1), 122-128.
IBM Corp. (2022). IBM SPSS Statistics for Windows (Version 29.0) [Computer software]. IBM Corp.
Flowers, W. L. (2002). Control of boar fertility through regulation of testicular temperature: A review. Swine Health and Production, 10(2), 59–64.
Funahashi, H., & Nagai, T. (2001). Regulation of in vitro penetration of frozen-thawed boar spermatozoa by caffeine and adenosine. Molecular Reproduction and Development, 58(4), 424–431. https://doi.org/10.1002/mrd.1040
Funahashi, H., & Nagai, T. (2001). Regulation of in vitro penetration of pig oocytes by caffeine and adenosine. Journal of Reproduction and Development, 47(1), 103-109.
Gomez, K. A., & Gomez, A. A. (1984). Statistical Procedures for Agriculture Research. John Wiley & Sons. Inc.
Henkel, R. R., & Schill, W.-B. (2003). Sperm preparation for ART. Reproductive Biology and Endocrinology, 1(1), 108. https://doi.org/10.1186/1477-7827-1-108.
Henning, H., Petrunkina, A. M., & Waberski, D. (2020). Improvement of the motility of boar sperm after cryopreservation. Theriogenology, 146(1), 26–33. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2020.01.013.
Hernandez, C. R., Rocha, L. G., & Sousa, P. C. (2007). Effects of caffeine supplementation on cooled boar semen: motility and oxidative stress parameters. Animal Reproduction Science, 102(1-2), 80-89.
Hernández, M., Roca, J., Calvete, J. J., Sanz, L., & Martínez, E. A. (2012). Effects of caffeine supplementation on boar sperm motility and fertilization success. Theriogenology, 78(8), 1685-1693.
Johnson, L. A., Weitze, K. F., Fiser, P., & Maxwell, W. M. C. (2000). Storage of boar semen. Animal Reproduction Science, 62(1-3), 143-172. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00157-3.
Kuster, C. E., & Althouse, G. C. (1997). The fecundity of porcine semen stored for 2 to 6 days in Androhep and Beltsville Thawing Solution. Theriogenology, 48(7), 1075–1084. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00310-0.
Mocé, E., Gadea, J., & Matas, C. (2010). Effect of caffeine treatment on boar sperm head membrane changes assessed by flow cytometry. Animal Reproduction Science, 117(3-4), 196-204.
Nuntapaitoon, M., Tummaruk, P., & Suwimonteerabutr, J. (2024). Supplementation of glutamine in a short-term boar semen extender during 17°C holding time enhances post-thaw sperm quality for cryopreservation. Porcine Health Management, 10(1), 50. https://doi.org/10.1186/s40813-024-00403-8.
Pereira, B. A., Rocha, L. G. P., Teles, M. C., Silva, W. E., Barbosa, J. A., Rabelo, S. S., Uchoa, A. S., Rodriguez-Gil, J. E., Pereira, L. J., & Zangeronimo, M. G. (2019). Addition of chlorogenic acid and caffeine during the processing of cooled boar semen. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 71(2), 489–499. https://doi.org/10.1590/1678-4162-10415.
Schulze, M., Hensel, B., Rüdiger, K., & Waberski, D. (2021). Cooled storage of semen from livestock animals (Part I): Boar, bull and stallion. Animal Reproduction Science, 226(1), 106712. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2021.106712.
