ผลของการเสริมนมแพะในน้ำยาเจือจางน้ำเชื้อที่มีต่อการเคลื่อนที่ของตัวอสุจิของแพะหลังการแช่แข็ง
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาการเสริมน้ำนมชนิดต่าง ๆ ในสารละลายเจือจางน้ำเชื้อที่มีต่อการเคลื่อนที่ของตัวอสุจิของแพะหลังการแช่แข็ง โดยเก็บน้ำเชื้อจากแพะพ่อพันธุ์ลูกผสมบอร์ 3 ตัว ในการเก็บน้ำเชื้อทำการเก็บน้ำเชื้อแพะสัปดาห์ละ 1 ครั้ง ติดต่อกัน 6 สัปดาห์ นำน้ำเชื้อของพ่อพันธุ์แพะแต่ละตัวที่รีดได้ในแต่ละครั้งมาแบ่งออกเป็น 3 ส่วน น้ำเชื้อแต่ละส่วนจะถูกเติมน้ำยาเจือจางน้ำเชื้อแต่ละสูตร ซึ่งสารเจือจางน้ำเชื้อที่ใช้ มีส่วนผสมหลักคือ Tris (hydroxymethyl) aminomethane ได้แก่ Tris + egg Yolk, Tris + goat milk หรือ Tris + cow milk จากนั้นทำการแช่แข็งน้ำเชื้อด้วยวิธีเดียวกัน แช่เย็นที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียส 4 ชั่วโมง และอังไอไนโตรเจนเหลว -121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 13 นาที จากนั้นนำลงเก็บรักษาในไนโตรเจนเหลว -196 องศาเซลเซียส หลังจากแช่แข็งเป็นระยะเวลา 24 ชั่วโมง ทำการสุ่มน้ำเชื้อแพะแช่แข็งจากแพะแต่ละตัวของแต่ละกลุ่มทดลอง ๆ ละ 6 ตัวอย่าง/สัปดาห์ ทั้งหมด 6 ครั้ง นำมาประเมินคุณภาพภายหลังละลาย ด้วยเครื่องวิเคราะห์คุณภาพน้ำเชื้อ Computer Assisted Sperm Analysis (CASA) เพื่อวิเคราะห์การเคลื่อนที่ของตัวอสุจิ ผลการศึกษาพบว่า สารละลายเจือจางสูตร Tris + goat milk ให้ค่าการเคลื่อนที่รวมของอสุจิ (Total motility) สูงที่สุด เมื่อเทียบกับสูตร Tris + egg yolk และ Tris + cow milk แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญยิ่งทางสถิติ และค่าการเคลื่อนที่ไปข้างหน้า (Progressive motility) ของสูตร Tris + goat milk สูงกว่าสูตรอื่นอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p < 0.05) และเปอร์เซ็นต์การเคลื่อนที่ไปข้างหน้า ค่า (path velocity; VAP), (straight-line velocity; VSL), (straightness; STR), (curvilinear velocity; VCL), (linearity; LIN) และ (beat cross frequency; BCF) ไม่แตกต่างกันทางสถิติ ค่า (lateral head displacement; ALH) พบว่าสารละลายสูตร Tris + egg yolk มีค่าเฉลี่ยสูงกว่าสูตรที่ผสมนมโคและนมแพะอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ สรุปได้ว่าสารละลายสูตร Tris + goat milk สามารถคงคุณภาพและการเคลื่อนที่รวมของอสุจิแพะหลังการแช่แข็งได้ดีกว่าสูตรอื่น จึงเป็นทางเลือกหนึ่งสำหรับการพัฒนาสารละลายเจือจาง เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพของน้ำเชื้อแพะ
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
วารสารเกษตรพระจอมเกล้า
เอกสารอ้างอิง
Aad, R., Dragojlov, I., & Vesentini, S. (2024). Sericin protein: structure, properties, and applications. Journal of Functional Biomaterials, 15(11), 322. https://doi.org/10.3390/jfb15110322.
Alm-Kristiansen, A. H. (2023). Motility subpopulations with distinct motility characteristics using swim-up-selected sperm cells from Norwegian red bulls: Effects of freezing–thawing and between-bull variation. Biology, 12(8), 1086. https://doi.org/10.3390/biology12081086.
Bergeron, A., Crete, M. H., Brindle, Y., & Manjunath, P. (2004). Low-density lipoprotein fraction from hen’s egg yolk decreases the binding of the major proteins of bovine seminal plasma to sperm and prevents lipid efflux from the sperm membrane. Biology of Reproduction, 70(3), 708–717. https://doi.org/10.1095/biolreprod.103.022996.
Department of Livestock Development. (2013). Production of Frozen Goat Semen 2013. Department of Livestock Development. Retrieved from: https://biotech.dld.go.th/files/manual/14_semengoat.pdf. (in Thai).
Department of Livestock Development. (2023). Statistics of Livestock in Thailand 2023. Department of Livestock Development. Retrieved from: https://certify2.dld.go.th/livestock-in-thailand-2023. (in Thai).
Dorado, J., Rodríguez, I., & Hidalgo, M. (2007). Cryopreservation of goat spermatozoa: Comparison of two freezing extenders based on post-thaw sperm quality and fertility rates after artificial insemination. Theriogenology, 68(2), 168-177. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2007.04.048.
Farah, Z. (1993). Composition and characteristics of camel milk. Journal of Dairy Research, 60(4), 603–626. https://doi.org/10.1017/S0022029900027953.
Galián, S., Peinado, B., Almela, L., Poto, A., & Ruiz, S. (2023). Post-thaw quality of spermatozoa frozen with three different extenders in the Murciano Granadina goat breed. Animals, 13(2), 309. https://doi.org/10.3390/ani13020309.
Manjunath, P. (2012). New insights into the understanding of the mechanism of sperm protection by extender components. Animal Reproduction, 9(4), 809–815. https://www.animal-reproduction.org/article/5b5a6053f7783717068b46cc/pdf/animreprod-9-4-809.pdf.
Nakafeero, A., Gonzalez-Bulnes, A., & Martinez-Ros, P. (2024). Use of short-term CIDR-based protocols for oestrus synchronisation in goats at tropical and subtropical latitudes. Animals, 14(11), 1560. https://doi.org/10.3390/ani14111560.
Nunes, J. F., & Salgueiro, C. C. M. (2011). Strategies to improve reproductive efficiency of goats in Brazil. Small Ruminant Research, 98(1-3), 176-184. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2011.03.036.
Raji, L. O., Raheem, K. A., Jimoh, A. A., Ashaolu, T. O., Murtala, R. O., Aladodo, R. A., Yusuf, I., & Sanusi, F. (2022). Evaluation of whole and skimmed cow milk extenders on West African Dwarf goat semen. Journal of Sustainable Veterinary & Allied Sciences, 3(2), 90-95. http://doi.org/10.54328/covm.josvas.2022.087.
Sias, B., Ferrato, F., Pellicer-Rubio, M. T., Forgerit, Y., Guillouet, P., Leboeuf, B., & Carrière, F. (2005). Cloning and seasonal secretion of the pancreatic lipase-related protein 2 present in goat seminal plasma. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular and Cell Biology of Lipids, 1686(3), 169–180. https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2004.09.008.
Solís, J. M., Sevilla, F., Silvestre, M. A., Araya-Zúñiga, I., Roldan, E. R., Saborío-Montero, A., & Valverde, A. (2024). Effect of thawing procedure and thermo-resistance test on sperm motility and kinematics patterns in two bovine breeds. Animals, 14(19), 2768. https://doi.org/10.3390/ani14192768.
Watson, P. F. (2000). The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal Reproduction Science, 60–61(1), 481–492. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00099-3.
Zhang, L., Jiang, C., Wang, X., Sohail, T., Sun, Y., Sun, X., Wang, J., & Li, Y. (2024). Freezing Hu ram semen: Influence of different penetrating cryoprotectants and egg yolk level on the post-thaw quality of sperm. Animal Bioscience, 37(9), 1548-1557. https://doi.org/10.5713/ab.24.0167.