Comparison on Mitochondrial DNA Fingerprint for Identification of Thai Native Silkworm Varieties

Main Article Content

Krissana Ruangrit
Jiraporn Tayutivutikul
Weerathep Pongprasert
Angsana Akrapisan

Abstract

There are many varieties of Thai native silkworms, Bombyx mori Linnaeus, showing high potential for silk product improvement. However, since they are all very closely related and basically have morphological identity especially in their adult stage, it is difficult to identify them in a breeding process. Therefore, a molecular technique, Polymerase Chain Reaction-Restriction Fragment Length Polymorphism (PCR-RFLP), was applied to study among 5 native silkworm varieties; Nonrusee, Nanglai, Keawsakol, Nangluang and Nangnoisrisaket 1, and compared to a wild silkworm, Philosamia ricini Boisduval. The regions between cytochrome oxidase subunit I-II gene (COI-COII gene) from mitochondrial genome of all silkworms were amplified by PCR, and were digested with 9 restriction enzymes; Bfa I, Cla I, Hha I, Mbo I, Mse I, Msp I, Rsa I, Taq I, and Xnm I to generate band polymorphisms on agarose and polyacrylamide gel. Four restriction enzymes; Cla 1, Hha 1, Msp I, and Xnm I were not useful in separating the Thai native silkworm varieties and the wild silkworm. However, there were five restriction enzymes that cut the COI-Coll gene target, and four of them; Bfa 1, Mbo I, Rsa I, and Tag I generated band patterns to differentiate between Thai native silkworm varieties and the wild silkworm. Only Mse I produced band polymorphisms that is not only separated the Thai native group from the wild one, but also divided them into two groups. The first group composed of Nonrusee and Nanglai, and the second group consisted of Keawsakol, Nangluang, and Nangnoisrisaket 1

Article Details

Section
Research Articles

References

พงชัย หาญยุทธนากร. 2544. การตรวจหาความเข้มข้นของดีเอ็นเอในสารละลาย. หน้า 4.1-4.7. ใน: เอกสารประกอบการอบรมเชิงปฏิบัติการเทคนิคเพื่อการศึกษาวิวัฒนาการ เชิงโมเลกุล. ภาควิชาชีววิทยา คณะวิทยาศาสตร์ จุฬาลงกรณ์มหาวิทยาลัย, กรุงเทพฯ.
วีณา เมฆวิชัย, สุรีรัตน์ เดี่ยววานิชย์ และสุจินดา มาลัย วิจิตรนนท์. 2544. การสกัดดีเอ็นเอ. หน้า 3.1-3.4. ใน: เอกสารประกอบการอบรมเชิงปฏิบัติการเทคนิคเพื่อการศึกษาวิวัฒนาการเชิงโมเลกุล. ภาควิชาชีววิทยาคณะวิทยาศาสตร์ จุฬาลงกรณ์มหาวิทยาลัย, กรุงเทพฯ.
สมโพธิ อัครพันธุ์, 2539. การพัฒนาหม่อนไหมในประเทศไทย. โรงพิมพ์ชุมนุมสหกรณ์การเกษตรแห่งประเทศ ไทย จำกัด, กรุงเทพฯ. 181 หน้า.
สุรินทร์ ปิยะโชคณากุล. 2536. พันธุวิศวกรรมเบื้องต้น. ภาควิชาพันธุศาสตร์ คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์, กรุงเทพฯ. 258 หน้า.
Hwang, J.S., J.S. Lee, T.W. Goo, E.Y. Yun, H.R. Sohn, H.R. Kim, and O.Y. Kwon. 1999. Molecular genetic relationships between Bombycidae and Satumiidae based on the mitochondrial DNA encoding of large and small rRNA. Genetic Analysis: Biomolecular Engineering 15: 223-228.
Langor, D.W., and F.A.H. Sperling. 1997. Mitochondrial DNA sequence divergence in weevils of the Pissodes strobi species complex (Coleoptera: Curculionidae). Insect Molecular Biology 6(3): 255-265.
Liu, Q.X., H. Ueda, and S. Hirose. 1998. Comparison of sequences of a transcriptional coactivator MBF2 from three lepidopteran species Bombyx mori, Bombyx mandarina and Samia cynthia. Gene 220: 55-59.
Lu, C., Y. Liu, S. Liao, Z. Zhou, Z. Xiang, X. Wang, M. Zhu, and H. Han. 2001. [Online]. Available: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Genbank/index.html. [30 November 2001]
Roehrdanz, R.L. 1993. An improved primer for PCR amplification of mitochondrial DNA in a variety of insect species. Insect Molecular Biology 2(2): 89-91
Roehrdanz, R.L. 1995. Amplification of complete insect mitochondrial genome in two easy pieces. Insect Molecular Biology 4(3): 169–172.
Sihanuntavong, D., S. Sittipraneed, and S. Klinbunga. 1999. Mitochondrial DNA diversity and population structure of the honeybee, Apis cerana, in Thailand. Journal of Apiculture Research 38 (3-4): 211-219.
Tuda, M., T. Fukatsu, and M. Shimada. 1995. Species differentiation of bruchid beetles (Coleoptera: Bruchidae) analyzed by mitochondrial DNA polymorphism. Applied Entomology and Zoology 30(2): 377-380.
Tazima, Y. 1964. The Genetic of Silkworm. Logops Press Limited, London. 253 p.