ผลของความเข้มข้นของสูตรอาหาร ระยะเวลาการเติมและไซโตไคนินต่อการพัฒนาของตายอดใหม่การสร้างใบสีม่วงแดงและแคลลัส

Main Article Content

เริ่มอรุณ รักเผือก
สมปอง เตชะโต

บทคัดย่อ

การศึกษาเกี่ยวกับพัฒนาการของใบที่ให้การสร้างแคลลัส และพัฒนาการเป็นพืชต้นใหม่ได้สูงเพื่อใช้ในการขยายพันธุ์มังคุด ได้ทำการศึกษาวิธีการเตรียมใบอ่อน โดยการเพาะเลี้ยงกลุ่มตายอดรวมมังคุดในอาหารสองชั้น ชั้นล่างเป็นสูตรอาหารเพาะเลี้ยงไม้เนื้อแข็ง (Woody Plant Medium, WPM) เติมซูโครส 3% โพลีไวนีลไพโรลิโคน (PVP) 500 มก./ล. และเบนซิลอะดีนีน (BA) 0.1 มก./ล. ชั้นบนเป็นอาหารเหลวสูตรมูราชิเกะและสกุค (MS) ที่ระดับความเข้มข้นขององค์ประกอบที่แตกต่างกันเติมลงบนอาหารชั้นล่างเป็นระยะเวลาต่างกัน และยังศึกษาถึงผลของชนิดไซโตไคนินที่มีต่อการพัฒนาของยอดใหม่ ความยาวของยอด การสร้างใบสีแดง พื้นที่ใบ และการสร้างแคลลัส  จากการศึกษาพบว่า อาหารเหลวสูตร 1/2MSNB (MS ที่ลดความเข้มข้นลงครึ่งหนึ่งของสูตรปกติ (1/2MS) เติมกรดแนปธาลีนอะซิติค (NAA) เข้มข้น 0.06 มก./ล. และ BA เข้มข้น 0.03 มล./ล.) ให้การเพิ่มยอดใหม่และการสร้างใบอ่อนสีแดงได้ดีที่สุด ระยะเวลาการเติมอาหารนี้ลงบนอาหาร WPM หลังการเพาะเลี้ยงกลุ่มตายอดรวมไปแล้วเป็นเวลา 2 สัปดาห์ ให้ผลดีที่สุดทั้งการเพิ่มปริมาณยอดใหม่ ความยาวยอด และการสร้างใบอ่อนสีม่วงแดง สำหรับชนิดของไซโตไคนินนั้นพบว่า 1/2MSNBT (การเติมทั้ง BA และไธไดอะซูรอน (TDZ) ความเข้มข้น 0.03 มก./ล. เท่ากัน) ให้ใบอ่อนสีม่วงแดงและการสร้างแคลลัสจากใบดังกล่าวได้สูงที่สุด

Article Details

บท
บทความวิจัย

References

สมปอง เตชะโต และ วันทนา เอ้งย่อง. 2531. การขายพันธุ์มังคุดจำนวนมาก โดยวิธีการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. ว. สงขลานครินทร์ 10: 7-11.
สมปอง เตชะโต, มงคล แซ่หลิม และอรุณี ม่วงแก้วงาม. 2535. การเพิ่มประสิทธิภาพวิธีการเพาะเลี้ยงใบอ่อนมังคุดในหลอดทดสอบเพื่อการขยายพันธุ์ ว. สงขลานครินทร์ 14: 353-359.
Bach, A. and A. Cecot. 1988. Micropropagation of Hyacinthus orientalis cv. Carnegie in doublephase culture medium. I Effect of cytokinins on growth and development. Acta-Horticulturae 226: 607-610.
Chauvin, J.E. and G. Salesses. 1988. Some aspects of the in vitro culture of chestnuts (Castanea sp.). Septieme Colloque sur les Recherches Fruitierse, 2-3 december 1987, Bordeaux.
de Riek, J., A. Piqueras and P.C. Debergh. 1996. Sucrose uptake and metabolism in double layer system for micropropagation of Rosa multiflora. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 47: 269-278.
Diaz-Sala, C., M. Rey and R. Rodriguez. 1990. In vitro establishment of cycloclonal chain from nodal seg ments and apical buds of adult hazel (Corylus avellana L.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture 23: 151-157.
Gavidia, I. and P. Perez-Bermudez. 1997. Digitalis obscura cardenolides. Effect of macronutrient concentration and N source on growth and productivity of shoot-tip cultures. Phytochemistry 46: 273-278.
Goh, C.J., P. Lakshmanan and C.S. Loh. 1994. High frequency direct shoot bud regeneration from excited leaves of mangosteen (Garcinia mangostana L.). Plant Science 101: 173-180.
Goh, H.K.L, A.N. Rao and C.S. Loh. 1988. In vitro plantlet formation in mangosteen (Garcinia mangostana L.). Ann. Bot. 62: 87-93.
Goh, H.K.L., A.N. Rao and C.S. Loh. 1990. Direct shoot bud formation from leaf explants of seedlings and mature mangosteen (Garcinia mangostana L.) trees. Plant Science 68: 113-121.
Huetteman, C.A. and J.E. Preece. 1993. Thidiazuron: A potent cytokinin for woody plant tissue culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 33: 105-119.
Komamine, A., R. Kawahara, M. Matsumoto, S. Sunabori, T. Toya, A.Fujiwara, M. Tsukahara, J. Smith, M. Ito, H. Fukuda, K. Nomura and T. Fujimura. 1992. Mechanisms of somatic embryo-genesis in cell cultures: physiology, biochemistry and molecular biology. In vitro Cell Dev. Biol. 28: 11-14.
Lopes, L., F. Ribas and F. Zanette. 1992. Propagation of apple cv. Gala by meristem culture. Revista Brasileira de Fisiologia Vegetal 4: 39-43.
Normah, M.N., A.B. Nor-Azza, and R. Aliudin. 1995, Factors affecting in vitro shoot proliferation and ex vitro establishment of mangosteen. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 43: 291-294.
Omura, M. and T. Hidaka. 1992. Shoot tip culture of citrus. I. Culture conditions. Bulletin of the Fruit Tree Research Station 22: 23-26.
Pawlicki, N. and M. Welander. 1994. Adventitious shoot regeneration from leaf segments of in vitro cultured shoots of apple rootstock Jork 9. Journal of Horticultural Science 69: 687-696.
Rodriguez, R., C. Diaz-Sala, L. Coluozzo and G. Ancora. 1991. Pear in vitro propagation using double-phase culture system. Hort Science 26: 62-64.
Romano, A., C. Noronha and M.A. Martins-Loucao. 1992. Influence of growth regulators on shoot proliferation in Quercus suber L. Ann. Bot. 70: 531-536.
Te-chato,S. and M. Lim. 1996. Micropropagation of mangosteen through young leaf culture. Proceeding of the 13th Conference on Methodological Techniques in Biological Sciences. Central Laboratory and Greenhouse Comple. pp. 55-64.
Te-chato, S., M. Lim and P. Suranilpong. 1995a. Plantlet formation from leaf-derived embryogenic callus of mangosteen. Songklanakarin J. Sci. Technol. 17: 129-136.
Te-chato, S., M. Lim and P. Suranilpong. 1995b. Type of medium and cytokinins in relation with purple leaf and callus formation of mangosteen. Songklanakarin J. Sci. Technol. 17: 121-127.
Vinterhalter, B. and M. Neskovic. 1992. Factors affecting in vitro propagation of quince (Cydonia oblonga Mill). J. Hort. Sci. 67: 39-43.