ชีวภัณฑ์จากน้ำกรองเลี้ยงเชื้อแบบไบโอฟิล์มและสปอร์ของ <I>Streptomyces albus</I> สายพันธุ์ CEN26 ในการยับยั้ง เชื้อรา <I>Phytophthora infestans</I> สาเหตุโรคใบไหม้มะเขือเท
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การทดสอบประสิทธิภาพน้ำกรองเลี้ยงเชื้อแบบไบโอฟิล์มของ Streptomyces albus สายพันธุ์ CEN26 ในการควบคุมรา Phytophthora infestans สาเหตุโรคใบไหม้ของมะเขือเทศ และประเมินการยับยั้งการเจริญของเส้นใย การงอกและความมีชีวิตของ sporangia พบว่า น้ำกรองความเข้มข้น 60 เปอร์เซ็นต์ เป็นความเข้มข้นต่ำสุด ที่สามารถยับยั้งการเจริญของรา P. infestans ได้ที่ 100 เปอร์เซ็นต์ อย่างไรก็ตาม ที่ความเข้มข้น 40 เปอร์เซ็นต์ แม้จะสามารถยับยั้งการเจริญของเส้นใยและความมีชีวิตของ sporangia ได้ต่ำกว่าความเข้มข้น 60 เปอร์เซ็นต์ อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ แต่ยังคงยับยั้งการงอกของ sporangia ได้ดีมากในทุกระยะการบ่มเชื้อ และที่ความเข้มข้น 20 เปอร์เซ็นต์ แม้ไม่สามารถยับยั้งความมีชีวิตของ sporangia ได้ แต่สามารถชะลอการงอกได้อย่างชัดเจน ส่วนการใช้ชีวภัณฑ์ควบคุมโรคใบไหม้ของมะเขือเทศในสภาพโรงเรือน พบว่า ชีวภัณฑ์ที่ผลิตจากน้ำกรองเลี้ยงเชื้อแบบไบโอฟิล์มรวมกับสปอร์แห้ง ลดการเกิดโรคและมีดัชนีความรุนแรงของโรคต่ำกว่าการใช้ชีวภัณฑ์ที่ผลิตจากสปอร์แห้งเพียงอย่างเดียว และเมื่อนำชีวภัณฑ์ที่ผลิตจากน้ำกรองเลี้ยงเชื้อแบบไบโอฟิล์มรวมกับสปอร์แห้ง ไปทดสอบในแปลงปลูกของเกษตรกร โดยฉีดพ่นชีวภัณฑ์ 0.3 กรัมต่อลิตร สัปดาห์ละ 1 ครั้ง เป็นเวลา 4 เดือน พบว่า สามารถลดการเกิดโรคได้ดี โดยมีการเกิดโรคและดัชนีความรุนแรงของโรคเท่ากับ 25.45 และ 45.63 เปอร์เซ็นต์ ขณะที่แปลงที่ไม่ได้ฉีดพ่นชีวภัณฑ์มีค่าเท่ากับ 52.30 และ 75.45 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
Abbasi, S., A., Spor, A. Sadeghi and N. Safaie. 2021. Streptomyces strains modulate dynamics of soil bacterial communities and their efficacy in disease suppression caused by Phytophthora capsici. Scientific Reports 11: 9317, doi: 1.1038/S41598-021-88495-y.
Brent, K.J. and D.W. Hollomon. 1995. Fungicide resistance in crop pathogens: How can it be managed? (Online). Available: https://www.frac.info/docs/default-source/publications/monographs/monograph-1.pdf (December 31, 2021).
Costa, L.C.B., J.E.B.P. Pinto, S.K.V. Bertolucci, J.C.D.B. Costa, P.B. Alves and E.D.S Niculau. 2015. In vitro antifungal activity of Ocimum selloi essential oil and methylchavicol against phytopathogenic fungi. Revista Ciencia Agronomica 46(2): 428-435.
FAO. 2017. The future of food and agriculture: Trends and challenges. (Online). Available: http://www.fao.org/3/i6583e/i6583e.pdf (December 20, 2021).
Glendinning, D., J.A. Macdonald and J. Grainger. 1963. Factors affecting the germination of sporangia in Phytophthora infestans. Transactions of the British Mycological Society 46(4): 595-603.
Igarashi, Y., M. Ogawa, Y. Sato, N. Saito, R. Yoshida, H. Kunoh, H. Onaka and T. Furumai. 2000. Fistupyrone, a novel inhibitor of the infection of Chinese cabbage by Alternaria brassicicola, from Streptomyces sp. TP-A0569. The Journal of Antibiotics 53(10): 1117-1122.
Kavitha, A., M. Vijayalakshmi, P. Sudhakar and G. Narasimha. 2010. Screening of actinomycetes strains for the production of antifungal metabolites. African Journal of Microbiology Research 4(1): 27-32.
Kunasakdakul, K. and S. Chaichom. 2018. Research and development of bioproducts against gray mold of roses. Final Report. Highland Research and Development Institute (Public Organization), Chiang Mai. 50 p. (in Thai)
Kunasakdakul, K., W. Jaroenueng, J. Chanthawong and P. Thayaping. 2021. Development of soluble powder bio-pesticide from Streptomyces sp. for control leaf diseases of solanaceous plant. Final Report. Royal Project Foundation, Chiang Mai. 110 p. (in Thai)
Larkin, P.J. 1976. Purification and viability determinations of plant protoplasts. Planta 128(3): 213-216.
Manteca, A., R. Alvarez, N. Salazar, P. Yague and J. Sanchez. 2008. Mycelium differentiation and antibiotic production in submerged cultures of Streptomyces coelicolor. Applied and Environmental Microbiology 74(12): 3877-3886.
Markets and Markets. 2021. Biofungicides market by type (microbial species, botanical), mode of application (soil treatment, foliar application, seed treatment), species (Bacillus, Trichoderma, Streptomyces, Pseudomonas), crop type, formulation, and region - Global forecast to 2025. (Online). Available: https://www.marketsandmarkets.com/Market-Reports/biofungicide-market-8734417.html (December 20, 2021).
McMaugh, T. 2005. Guidelines for Surveillance Plant Pests in Asia and the Pacific. ACIAR Monograph No. 119, Australia. 192 p.
Nelson, S.C. 2008. Late blight of tomato (Phytophthora infestans). (Online). Available: https://www.ctahr.hawaii.edu/oc/freepubs/pdf/PD-45.pdf (December 31, 2021).
Phuakjaiphaeo, C., C.I. Chang, O. Ruangwong and K. Kunasakdakul. 2016. Isolation and identification of an antifungal compound from endophytic Streptomyces sp. CEN26 active against Alternaria brassicicola. Letters in Applied Microbiology 63(1): 38-44.
Phuakjaiphaeo, C. 2017. Selection of endophytic actinomycetes and evaluation of their antifungal compounds for controlling Alternaria leaf spot of cabbage. Ph.D. Thesis. Chiang Mai University, Chiang Mai. 169 p.
Sellem, I., M.A. Triki, L. Elleuch, M. Cheffi, A. Chakchouk, S. Smaoui and L. Mellouli. 2017. The use of newly isolated Streptomyces strain TN258 as potential biocontrol agent of potato tubers leak caused by Pythium ultimum. Journal of Basic Microbiology 57(5): 393-401.
Shimizu, M, Y. Nakagawa, Y. Sato, T. Furumai, Y. Igarashi, H. Onaka, R. Yoshida and H. Kunoh. 2000. Studies on endophytic actinomycetes (I) Streptomyces sp. isolated from Rhododendron and its antifungal activity. Journal of General Plant Pathology 66: 360-366.
Taechowisan, T., S. Chanaphat, W. Ruensamran and W.S. Phutdhawong. 2012. Antifungal activity of 3- methylcarbazoles from Streptomyces sp. LJK109; an endophyte in Alpinia galanga. Journal of Applied Pharmaceutical Science 2(3): 124-128.
Tumwine, J., H.D. Frinking and M.J. Jeger. 2000. Isolation techniques and cultural media for Phytophthora infestans from tomatoes. Mycologist 14(3): 137-139.
Waller, J.M., J.M. Lenne and S.J. Waller. 2002. Plant Pathologist’s Pocketbook. 3rd ed. CABI Publishing, Wallingford. 516 p.
Winter, M., P.L. Samuels, L.K. Otto-Hanson, R. Dill-Macky and L.L. Kinkel. 2019. Biological control of Fusarium crown and root rot of wheat by Streptomyces isolates - it’s complicated. Phytobiomes Journal 3(1): 52-60.
Yague, P., M.T. Lopez-Garcia, B. Rioseras, J. Sanchez and A. Manteca. 2012. New insights on the development of Streptomyces and their relationships with secondary metabolite production. Current Trends in Microbiology 8: 65-73.