Screening of Curcuma sp. (Patumma) Hybrid Lines for Their Resistance to Bacterial Wilt Caused by the Ralstonia solanacearum Species Complex English

Main Article Content

Athidtaya Kumvinit
Angsana Akarapisan
Pornsuk Chaisuk
Theeraniti Puangkrit
เฉลิมศรี นนทสวัสดิ์ศรี

Abstract

      The pathogenicity of 9 strains of bacterial wilt caused by the Ralstonia solanacearum species complex were tested by inoculation on Patumma hybrid lines, and it was only the R. solanacearum strain Si16 (biovar 4, phylotype I sequevar 30) that caused disease symptoms in Patumma. The bacterial strain was isolated from bacterial wilt found on Patumma sampled from San Sai District, Chiang Mai Province. The screening of Patumma hybrid lines for their resistance to bacterial wilt was done by inoculation with various bacterial wilt strains. The varieties that showed high resistance to the bacterial wilt with 0% of disease incidence were cv. Yuki, cv. Ploytaksin, cv. Maejo Impress 01 and cv. Maejo Impress 02. The varieties cv. Chom-Phu Mali, cv. Chom-Phu Sen and cv. Ladawan were found to be resistant to the bacterial wilt strain after inoculation at the 25%, 10%, and 5% levels, respectively. On the other hand,  the varieties cv. Khao Mali (Chiang Rai), cv. Chiang Mai Pink and cv. Big Red showed highly susceptibility to  bacterial wilt, with an incidence of 100%. Furthermore, the varieties that were resistant to the bacterial wilt strain (biovar 4, phylotype I, sequevar 30) included cv. Chom-Phu Mali, cv. Chom-Phu Sen, cv. Ladawan, cv. Yuki, cv. Ploytaksin, cv. Maejo Impress 01, and cv. Maejo Impress 02. The results of this research will be of benefit in Patumma hybrid line selection for commercial cultivation and will provide more economic value in the future. 

Article Details

How to Cite
Kumvinit, A. ., Akarapisan, A. ., Chaisuk, P. ., Puangkrit, T. . ., & นนทสวัสดิ์ศรี เ. . (2022). Screening of Curcuma sp. (Patumma) Hybrid Lines for Their Resistance to Bacterial Wilt Caused by the Ralstonia solanacearum Species Complex : English. King Mongkut’s Agricultural Journal, 40(2), 160–168. retrieved from https://li01.tci-thaijo.org/index.php/agritechjournal/article/view/253273
Section
Research Articles

References

ปิยะรัตน์ ธรรมกิจวัฒน์, นิพนธ์ ทวีชัย, อำไพวรรณ ภราดร์นุวัฒน์, สุรวิช วรรณไกรโรจน์ และสุรางค์ สุธิราวุธ. 2542. โรคหัวเน่าจากแบคทีเรียของปทุมมาและการตรวจเชื้อที่ติดมากับหัวพันธุ์. ใน การประชุมวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้งที่ 37 สาขาพืช สาขาส่งเสริม นิเทศศาสตร์. น. 295-302. มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์; กระทรวงการเกษตรและสหกรณ์; กระทรวงวิทยาศาสตร์ เทคโนโลยีและสิ่งแวดล้อม; ทบวงมหาวิยาลัย, กรุงเทพฯ.

สุรชาติ คูอารัยยกุล. 2539. โรคเหี่ยวหรือหัวเน่าของไม้ดอกตระกูลกระเจียวและการป้องกันกำจัด. ใน เอกสารประกอบคำบรรยายการสัมมนาวิชาการ เรื่อง “ผลกระทบของโรคหัวเน่าของปทุมมาต่อการผลิตและการส่งออก. น.1-22. สำนักวิจัยและพัฒนาการเกษตรเขต 1 กรมวิชาการเกษตร กระทรวงเกษตรและสหกรณ์, กรุงเทพฯ.

สุรพล สว่างเนตร. 2548. การศึกษาแนวทางการแก้ไขปัญหาในการส่งออกหัวพันธุ์ปทุมมาไปต่างประเทศ. ใน ผลงานฉบับเต็ม กลุ่มวินิจฉัยศัตรูพืช ส่วนควบคุมพืชและวัสดุทางการเกษตร. น. 2-52. กรมวิชาการเกษตร, กรุงเทพฯ.

สุภาพร สัมโย และอำนวย อรรถลังรอง. 2563. สถานการณ์การผลิตปทุมมา (มิถุนายน 2563). สถาบันวิจัยพืชสวน กรมวิชาการเกษตร. หน้า 1-6.

https://www.doa.go.th/hort/wp-content/uploads/2020/10/สถานการณ์ปทุมมามิถุนายน2563.pdf (30 ธันวาคม 2564).

เสรี พิศิลป์. 2543. การตรวจสอบและคัดเลือกมะเขือเทศลูกผสมพันธุ์ต้านทานต่อโรคเหี่ยวเขียว. น.1-103. วิทยานิพนธ์ ปริญญาวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต สาขาวิชาพืชสวน มหาวิทยาลัยขอนแก่น.

Alvarez, B., Lopez, M., and Biosca, G. 2008. Survival strategies and pathogenicity of Ralstonia solanacearum phylotype II subjected to prolonged starvation in environmental water microcosms. Microbiology 154: 3590-3598.

Ailloud, F., Lowe, T., Cellier, G., Roche, D., Allen, C., and Prior, P. 2015. Comparative genomic analysis of Ralstonia solanacearum reveals candidate genes of host specificity. BMC Genomics 16(270): 1-11.

Akarapisan, A., Kumvinit, A., Thungrabeab, M., Thumdee, S., and Kositratana, W. 2021. Phylotype, sequevar and pathogenicity of Ralstonia solanaceaum species complex from Northern Thailand. Journal of Phytopathology 170: 176-184.

Charkowski, A., Sharma, K., Parker, L. M., Secor, A.G, and John, E. 2020. The potato crop. In: Bacterial diseases of potato, pp. 351-388.

Dhital, P. S., Thaveechai, N., and Shrestha, K. S. 2000. Characteristic of Ralstonia solanacearum strains of potato wilt disease from Nepal and Thailand. Nepal Agriculture Research Journal 4: 42-47.

Fegan, M., and Prior, P. 2005. Bacterial wilt disease and the Ralstonia solanacearum species complex. In: How complex is the Ralstonia solanacearum species complex, pp. 449-462.

Hayward, A. C. 1994. “The host of Pseudomonas solanacearum” in Bacterial Wilt: The disease and its Causative Agent, Pseudomonas solanacearum, eds Harward AC and Hartman (Wallingford: CAB International). 9-24.

Horita, M., and Sakai, K. Y. 2020. Specific detection and quantification of Ralstonia pseudosolanacearum race 4 strains from Zingiberaceae plant cultivation soil by MPN-PCR. Journal of General Plant Pathology 86: 393-400.

Huang, Q., Yan, X., and Wang, F. J. 2012. Improved biovar test for Ralstonia solanacearum. Journal of Microbiological Methods 88: 271-274.

Khan, M., Rafi, A., Abbas, A., Ali, T., and Hassan, A. 2015. Assessment of yield losses caused by bacterial blight of rice in upper dir, Khyber Pakhtunkhwa province. Asian Journal of Agriculture and Biology 3(2): 74-78.

Kyaw, W. W. H., Tsuchiya, K., Matsumoto, M., Iiyama, K., Aye, S. S., Zaw, M., Kurose, D., Horita, M., and Furuya, N. 2017. Genetic diversity of Ralstonia solanacearum strains causing bacterial wilt of Solanaceous crops in Myanmar. Journal of General Plant Pathology 83: 216-225.

Piyarat, T., Nophone, T., Wichai, K., Julapark, C., Frederick, D.R., and Schaad, W. N. 2001. Genetic analysis of Ralstonia solanacearum strains from different hosts in Thailand using PCR-restriction fragment length polymorphism. Kasetsart Journal 35: 397-408.

Safni, I., Cleenwerck, I., Vos, D. P., Fegan, M., Sly, L., and Kappler, U. 2014. Polyphasic taxonomic revision of the Ralstonia solanacearum species complex: proposal to emend the descriptions of Ralstonia solanacearum and Ralstonia syzygii and reclassify current R. syzygii strains as Ralstonia syzygii subsp. syzygii subsp. nov., R. solanacearum phylotype IV strains as Ralstonia syzygii subsp. indonesiensis subsp. nov., banana blood disease bacterium strains as Ralstonia syzygii subsp. celebesensis subsp. nov. and R. solanacearum phylotype I and III strains as Ralstonia pseudosolanacearum sp. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 64: 3087-3103.

Safni, I., Subandiyah, S., and Tegan, M. 2018. Ecology, epidemiology and disease management of Ralstonia syzygii in Indonesia. Frotiers in microbiology. 9: article 419.

Santana, B. G., Lopes, C. A., Alvarez, E., Barreto, C. C., Allen, C., and Quirino, B. F. 2012. Diversity of Brazilian biovar 2 strains of Ralstonia solanacearum. Journal of General Plant Pathology 78: 190-200.

She, X., Yu, L., Lan, G., Tang, Y., and He, Z. 2017. Identification and genetic characterization of Ralstonia solanacearum species complex isolates from Cucurbita maxima in China. Frontiers in Plant Science 1794(8): 1-11.

Thano, P., and Akarapisan, A. 2018. Phylotype and sequevar of Ralstonia solanacearum which causes bacterial wilt in Curcuma alismatifolia Gagnep. Letters in Applied Microbiology 66: 384-393.

Xu, J., Pan, Z. C., Prioi, P., Xu, J. S., Zhang, Z., Zhang, H., Zhang, L. Q., He, L. Y., and Feng, J. 2009. Genetic diversity of Ralstonia solanacearum strains from China. European Journal of Plant Pathology 125: 641-653.

Yang, W., Xu, Q., Liu, X. H., Wang, P. Y., Wang, M. Y., Yang, T. H., and Guo, H. J. 2012. Evaluation of biological control agents against Ralstonia wilt on ginger. Biological control 62: 144-151.