Diagnosis of Bacterial Fish Pathogens Outbreak in Tilapia Farms by PCR-RFLP
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
Bacterial fish diseases cause huge economic loss to the aquaculture business. An accurate and rapid diagnosis is essential for disease prevention and treatment. This study aimed to apply traditional and PCR-RFLP means for fish pathogen identification. It was found that the bacterial disease outbreak in cultured fish in northern Thailand were the results of mixed infections since some bacteria were simultaneously isolated from infected fish. The common bacteria were Flavobacterium columnare, Aeromonas sp. and Streptococcus sp. Clinical signs, gross morphological changes, and wet mount could be used to identify some bacterial infection. PCR-RFLP is just another molecular tool for the identification of pathogenic bacteria which is more suitable to detect a viral infection. However, disease prevention by good management practices are needed as it is extremely difficult for fish disease treatment.
Article Details
References
เกวลิน หนูฤทธิ์. 2559. สถานการณ์ปลานิลและผลิตภัณฑ์ปี 2556 และแนวโน้มปี 2557. (ระบบออนไลน์). แหล่งข้อมูล: http://fishco. fisheries.go.th/fisheconomic/Doc/fishnews_169.pdf (12 ตุลาคม 2559).
คณนา อาจสูงเนิน. 2559. การสำรวจรูปแบบการเพาะเลี้ยงปลาเชิงพาณิชย์ในหมู่บ้านปงหลวง อำเภอเวียงชัย จังหวัดเชียงราย. วารสารเกษตร 32(3): 409-419.
ชนกันต์ จิตมนัส. 2548. โรคปลา. เอกสารประกอบการสอนคณะเทคโนโลยีการประมงและทรัพยากรทางน้ำ. มหาวิทยาลัยแม่โจ้ เชียงใหม่, 156 หน้า.
ชนกันต์ จิตมนัส. 2556. โรคปลานิล. เชียงใหม่สัตวแพทยสาร 11(1): 75-86.
ชาญณรงค์ รอดคำ. 2559. โรคติดเชื้อแบคทีเรียในปลา. (ระบบออนไลน์). แหล่งข้อมูล: http://www. micro.vet.chula.ac.th/index.php/doc/doc_download/57- (13 ตุลาคม 2559).
นิลุบล กิจอันเจริญ ชุติมา หาญจวณิช และ นงนุช สุวรรณเพ็ง. 2549. ประสิทธิภาพของการให้วัคซีนที่ผลิตจากเชื้อ Streptococcus agalactiae ในการป้องกันโรคสเตรปโตคอคโคซีสในปลานิล. วารสารวิจัย มข. 11(1): 53-61.
Altinok, I., E. Capkin and S. Kayis. 2008. Development of multiplex PCR assay for simultaneous detection of five bacterial fish pathogens. Veterinary Microbiology 131(3-4): 332-338.
Angka, S.L., T.J Lam and Y.M. Sin. 1995. Some virulence characteristics of Aeromonas hydrophila in walking catfish (Clarias gariepinus). Aquaculture 130(2): 103-112.
Beaz-Hidalgo, R., A. Alperi, N. Buján, J.L. Romalde and M.J. Figueras. 2010. Comparison of phenotypical and genetic identification of Aeromonas strains isolated from diseased fish. Systematic and Applied Microbiology 33(3): 149-153.
Bullock, G.L., T.C. Hsu and E.B. Shotts Jr. 1986. Columnaris disease of fishes. Fish Disease Leaflet 72, Fish and Wildlife Service, United States Department of Interior, Washington, D.C. 9 p.
Darwish, A.M. and A.A. Ismaiel. 2005. Genetic diversity of Flavobacterium columnare examined by restriction fragment length polymorphism and sequencing of the 16S ribosomal RNA gene and the 16S-23S rDNA spacer. Molecular and Cellular Probes 19(4): 267-274.
Decostere, A., F. Haesebrouck and L.A. Devriese. 1997. Shieh medium supplemented with tobramycin for selective isolation of Flavobacterium columnare (Flexibacter columnaris) from diseased fish. Journal of Clinical Microbiology 35(1): 322-324.
Dong, H.T., V.V. Nguyen, H.D. Le, P. Sangsuriya, S. Jitrakorn, V. Saksmerprome, S. Senapin and C. Rodkhum. 2015. Naturally concurrent infections of bacterial and viral pathogens in disease outbreaks in cultured Nile tilapia (Oreochromis niloticus) farms. Aquaculture 448: 427-435.
Grabowski, L.D., S.E. LaPatra and K.D. Cain. 2004. Systemic and mucosal antibody response in tilapia, Oreochromis niloticus (L.), following immunization with Flavobacterium columnare. Journal of Fish Diseases 27(10): 573-581.
Ismail, N.I.A., M.N.A. Amal, S. Shohaimi, M.Z. Saad and S. Z. Abdullah. 2016. Associations of water quality and bacteria presence in cage cultured red hybrid tilapia, Oreochromis niloticus × O. mossambicus. Aquaculture Reports 4: 57-65.
Ji, N., B. Peng, G. Wang, S. Wang and X. Peng. 2004. Universal primer PCR with DGGE for rapid detection of bacterial pathogens. Journal of Microbiological Methods 57(3): 409-413.
