ผลของน้ำตาลซูโครส ถ่านกัมมันต์ และระยะเวลาการให้แสงต่อการสร้างเหง้าของขิงในสภาพปลอดเชื้อ
Article Sidebar
เผยแพร่แล้ว:
ก.ค. 24, 2020
คำสำคัญ:
น้ำตาลซูโครส ถ่านกัมมันต์ ระยะเวลาการให้แสง การสร้างเหง้า การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ ขิง
Main Article Content
บทคัดย่อ
การกระตุ้นให้ขิงสร้างเหง้าในสภาพปลอดเชื้อจากการเพาะเลี้ยงลำต้นเทียมบนอาหารแข็งสูตร MS ดัดแปลงที่มี BA เข้มข้น 0.5 มก./ล. พบว่าหลังเพาะเลี้ยง 3 เดือน น้ำตาลและการให้แสงส่งผลต่อการสร้างเหง้าและการเติบโตของต้น การให้น้ำตาลซูโครสเข้มข้น 10 เปอร์เซ็นต์ มีผลทำให้ค่าเฉลี่ยความสูงและจำนวนใบต่ำเมื่อเทียบกับน้ำตาลซูโครสเข้มข้น 3-8 เปอร์เซ็นต์ ระยะเวลาการให้แสง 16 และ 24 ชั่วโมง มีผลทำให้จำนวนใบเพิ่มขึ้นเมื่อเทียบกับการให้แสง 0 ชั่วโมง ทั้งนี้การให้น้ำตาลซูโครสเข้มข้น 6-10 เปอร์เซ็นต์ และระยะเวลาการให้แสง 16-24 ชั่วโมง ช่วยส่งเสริมการเกิดเหง้าได้ ซึ่งการเติมน้ำตาล 8 เปอร์เซ็นต์ ร่วมกับการให้แสง16 ชั่วโมง นั้นเป็นวิธีการที่เหมาะสมที่สุดต่อการสร้างเหง้าโดยให้อัตราส่วนของเส้นผ่าศูนย์กลางของส่วนโคนที่กว้างที่สุดต่อเส้นผ่าศูนย์กลางลำต้นเทียมมากถึง 3.0 และทำให้เกิดเหง้า 100 เปอร์เซ็นต์ ส่วนการใช้ถ่านกัมมันต์ ไม่ส่งผลต่อการสร้างเหง้า และยังทำให้การจำนวนยอดและจำนวนใบลดลง
Article Details
บท
บทความวิจัย
References
ธีรพล พรสวัสดิ์ชัย และ พิมพ์ใจ อาภาวัชรุตม์. 2550. ผลของน้ำตาลซูโครสต่อการเจริญเติบโตและการสร้างหัวในสภาพหลอดแก้วของกล้วยไม้ดินนางอั้วสาคริก. วารสารเกษตร 23(3): 197-205.
อบเชย อิ่มสบาย มณทิพย์ สิทธิพิพัฒน์ นฤวรรณ รักสกุล และ จันทร์ทิพย์ แซ่เอี้ยว. 2540. ขิง-ข่า ตำรับอาหารเพื่อสุขภาพ. สำนักพิมพ์แสงแดด จำกัด, กรุงเทพฯ. 111 หน้า.
Archana, C. P., S. P. Geetha and I. Balachandran. 2013. Microrhizome and minirhizome production in three high yielding cultivars of ginger (Zingiber officinale Rosc.). International Journal of Current Microbio- logy and Applied Sciences 2(10): 477-484.
Babu, K. N., K. Samsudeen and M. J. Ratnambal. 1992. In vitro plant regeneration from leaf-derived callus in ginger (Zingiber officinale Rosc.). Plant Cell Tissue and Organ Culture 29(2): 71-74.
Boggetti, B., J. Jasik and S. H. Mantell. 1999. In vitro multiplication of cashew (Anacardium occidentale L.) using shoot node explants of glasshouse-raised plants. Plant Cell Reports 51: 456-461.
Garner, N. and J. Blake. 1989. The Induction and development of potato microtubers in vitro on media free of growth regulating substances. Annals of Botany 63(6): 663-674.
Han, B. H., B. W. Yae, H. J. Yu and K. Y. Peak. 2005. Improvement of in vitro micropropagation of Lilium oriental hybrid ‘Casablanca’ by the formation of shoots with abnormally swollen basal plates. Scientia Horticulturae 103: 351-359.
Haq, F., Faruque, S. M., Islam, S., Ali, E., 1986. Studies on Zingiber officinale Roscoe part 1: Chemical investigation of the rhizome. Bangladesh Journal of Scientific and Industrial Research 21(1-4): 61-69.
Islam, M. A., K. Kloppstech and H. J. Jacobsen. 2004. Efficient procedure for in vitro microrhizome in Curcuma longa L. (Zingiberacea) - A medicinal plant of tropical asia. Plant Tissue Culture 14(2): 123-134.
Kackar, A., S. R. Bhat, K. P. S. Chandel and S. K. Malik.1993. Plant regeneration via somatic embryogenesis in ginger. Plant Cell Tissue and Organ Culture 32(3): 289-292.
Kavyashree, R. 2009. Efficient in vitro protocol for clonal multiplication of ginger- var. Varada. Indian Journal of Biotechnology 8: 328-331.
Lincy, A. and B. Sasikumar. 2010. Enhanced adventitious shoot regeneration from aerial stem explants of ginger using TDZ and its histological studies. Turkish Journal of Botany 34: 21-39.
Mulin, M. and A. Bellio-Spataru. 2000. Organogenesis from hypocotyl thin cell layers of Lupinus mutabilis and Lupinus albus. Plant Growth Regulation 30: 177-183.
Nayak, S. 2000. In vitro multiplication and microrhizome induction in curcuma aromatic Salisb. Plant Growth Regulation 32: 41-47.
Nayak, S. and P. K. Naik. 2006. Factors effecting in vitro micropropagation formation and growth in Curcuma longa L. and improved field performance of micropropagated plants. Science Asia. 32: 31-37.
Nissen, S. J. and E. G. Suttur. 1990. Stability of IAA and IBA in nutrient medium to several tissue culture procedures. HortScience 25: 800-802.
Pan, M. J. and J. Staden. 1998. The use of charcoal in in vitro culture - A review. Plant Growth Regulation 26: 155-163.
Pandey, Y. R., C. Sagwansupyakorn, O. Sahavacharin and N. Thaveechai. 1997. In vitro propagaton of ginger (Zingiber officinale Roscoe). Kasetsart Journal (Natural Science) 31: 81-86.
Peak, N. Y. and E. C. Yeung. 1991. The effects of 1-napthalene acetic acid and N6-benzyladenine on the growth of Cymbidium forrestii rhizomes in vitro. Plant Cell Tissue and Organ Culture 24: 65-71.
Ravindran, P. K. and N. K. Babu. 2005. Introduction. pp. 1-14. In: Ravindran, P. N. and N. K. Babu (EDs). Ginger: The Genus Zingiber. CRC Press, Florida.
Rout, G. R., S. K. Palai, S. Samamtaray and P. Das. 2001. Efficient of growth regulator and culture conditions on shoot multiplication and rhizome formation in ginger (Zingiber officinale Rosc.) in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. 37: 814-819.
Saingproa, B. and K. Kanchanapoom. 1997. Clonal propagation through multiple shoot formation from ginger (Zingiber officinale Roscoe) callus and buds. Suranaree Journal of Science and Technology 4: 1-5.
Saos, F. Le Guen-le, A. Hourmant, F. Esnault and J. E. Chauvin. 2001. In vitro bulb development in Shallot (Allium cepa L. Aggregatum Group): Effect of anti-gibberrellins, sucrose and light. Annals of Botany 89: 419-425.
Sharma, T. R. and B. M. Singh. 1995. In vitro microrhizome production in Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Reports 15(3-4): 274-277.
Sharma, T. R. and B. M. Singh. 1997. High-frequency in vitro multiplication of disease-free Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Reports 17(1): 68-72.
Sheelavantmath, S. S., H. N. Murthy, A. N. Pyati, H. G. Ashok Kumar and B. V. Ravishankar. 2000. In vitro propagation of the endangered orchid, Geodorum densiflorum (Lam.) Schltr. through rhizome section culture. Plant Cell Tissue and Organ Culture 60: 151-154.
Sultana, A., L. Hassan, S. D. Ahmad, A. H. Shah, F. Batool, M. A. Islam, R. Rahman and s. Moonmoon. 2009. In vitro regeneration of ginger using leaf, shoot tip and root explant. Pakistan Journal of Botany 41(4): 1667-1676.
Thomas, T. D. 2008. The role of activated charcoal in plant tissue culture. Biotechnology Advances 26: 618-631.
Tyagi, R. K., A. Agrawal and A. Yusuf. 2006. Conservation of Zingiber germplasm through in vitro rhizome formation. Scientia Horticulturae 108: 210-219.
อบเชย อิ่มสบาย มณทิพย์ สิทธิพิพัฒน์ นฤวรรณ รักสกุล และ จันทร์ทิพย์ แซ่เอี้ยว. 2540. ขิง-ข่า ตำรับอาหารเพื่อสุขภาพ. สำนักพิมพ์แสงแดด จำกัด, กรุงเทพฯ. 111 หน้า.
Archana, C. P., S. P. Geetha and I. Balachandran. 2013. Microrhizome and minirhizome production in three high yielding cultivars of ginger (Zingiber officinale Rosc.). International Journal of Current Microbio- logy and Applied Sciences 2(10): 477-484.
Babu, K. N., K. Samsudeen and M. J. Ratnambal. 1992. In vitro plant regeneration from leaf-derived callus in ginger (Zingiber officinale Rosc.). Plant Cell Tissue and Organ Culture 29(2): 71-74.
Boggetti, B., J. Jasik and S. H. Mantell. 1999. In vitro multiplication of cashew (Anacardium occidentale L.) using shoot node explants of glasshouse-raised plants. Plant Cell Reports 51: 456-461.
Garner, N. and J. Blake. 1989. The Induction and development of potato microtubers in vitro on media free of growth regulating substances. Annals of Botany 63(6): 663-674.
Han, B. H., B. W. Yae, H. J. Yu and K. Y. Peak. 2005. Improvement of in vitro micropropagation of Lilium oriental hybrid ‘Casablanca’ by the formation of shoots with abnormally swollen basal plates. Scientia Horticulturae 103: 351-359.
Haq, F., Faruque, S. M., Islam, S., Ali, E., 1986. Studies on Zingiber officinale Roscoe part 1: Chemical investigation of the rhizome. Bangladesh Journal of Scientific and Industrial Research 21(1-4): 61-69.
Islam, M. A., K. Kloppstech and H. J. Jacobsen. 2004. Efficient procedure for in vitro microrhizome in Curcuma longa L. (Zingiberacea) - A medicinal plant of tropical asia. Plant Tissue Culture 14(2): 123-134.
Kackar, A., S. R. Bhat, K. P. S. Chandel and S. K. Malik.1993. Plant regeneration via somatic embryogenesis in ginger. Plant Cell Tissue and Organ Culture 32(3): 289-292.
Kavyashree, R. 2009. Efficient in vitro protocol for clonal multiplication of ginger- var. Varada. Indian Journal of Biotechnology 8: 328-331.
Lincy, A. and B. Sasikumar. 2010. Enhanced adventitious shoot regeneration from aerial stem explants of ginger using TDZ and its histological studies. Turkish Journal of Botany 34: 21-39.
Mulin, M. and A. Bellio-Spataru. 2000. Organogenesis from hypocotyl thin cell layers of Lupinus mutabilis and Lupinus albus. Plant Growth Regulation 30: 177-183.
Nayak, S. 2000. In vitro multiplication and microrhizome induction in curcuma aromatic Salisb. Plant Growth Regulation 32: 41-47.
Nayak, S. and P. K. Naik. 2006. Factors effecting in vitro micropropagation formation and growth in Curcuma longa L. and improved field performance of micropropagated plants. Science Asia. 32: 31-37.
Nissen, S. J. and E. G. Suttur. 1990. Stability of IAA and IBA in nutrient medium to several tissue culture procedures. HortScience 25: 800-802.
Pan, M. J. and J. Staden. 1998. The use of charcoal in in vitro culture - A review. Plant Growth Regulation 26: 155-163.
Pandey, Y. R., C. Sagwansupyakorn, O. Sahavacharin and N. Thaveechai. 1997. In vitro propagaton of ginger (Zingiber officinale Roscoe). Kasetsart Journal (Natural Science) 31: 81-86.
Peak, N. Y. and E. C. Yeung. 1991. The effects of 1-napthalene acetic acid and N6-benzyladenine on the growth of Cymbidium forrestii rhizomes in vitro. Plant Cell Tissue and Organ Culture 24: 65-71.
Ravindran, P. K. and N. K. Babu. 2005. Introduction. pp. 1-14. In: Ravindran, P. N. and N. K. Babu (EDs). Ginger: The Genus Zingiber. CRC Press, Florida.
Rout, G. R., S. K. Palai, S. Samamtaray and P. Das. 2001. Efficient of growth regulator and culture conditions on shoot multiplication and rhizome formation in ginger (Zingiber officinale Rosc.) in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. 37: 814-819.
Saingproa, B. and K. Kanchanapoom. 1997. Clonal propagation through multiple shoot formation from ginger (Zingiber officinale Roscoe) callus and buds. Suranaree Journal of Science and Technology 4: 1-5.
Saos, F. Le Guen-le, A. Hourmant, F. Esnault and J. E. Chauvin. 2001. In vitro bulb development in Shallot (Allium cepa L. Aggregatum Group): Effect of anti-gibberrellins, sucrose and light. Annals of Botany 89: 419-425.
Sharma, T. R. and B. M. Singh. 1995. In vitro microrhizome production in Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Reports 15(3-4): 274-277.
Sharma, T. R. and B. M. Singh. 1997. High-frequency in vitro multiplication of disease-free Zingiber officinale Rosc. Plant Cell Reports 17(1): 68-72.
Sheelavantmath, S. S., H. N. Murthy, A. N. Pyati, H. G. Ashok Kumar and B. V. Ravishankar. 2000. In vitro propagation of the endangered orchid, Geodorum densiflorum (Lam.) Schltr. through rhizome section culture. Plant Cell Tissue and Organ Culture 60: 151-154.
Sultana, A., L. Hassan, S. D. Ahmad, A. H. Shah, F. Batool, M. A. Islam, R. Rahman and s. Moonmoon. 2009. In vitro regeneration of ginger using leaf, shoot tip and root explant. Pakistan Journal of Botany 41(4): 1667-1676.
Thomas, T. D. 2008. The role of activated charcoal in plant tissue culture. Biotechnology Advances 26: 618-631.
Tyagi, R. K., A. Agrawal and A. Yusuf. 2006. Conservation of Zingiber germplasm through in vitro rhizome formation. Scientia Horticulturae 108: 210-219.